La tinción vital de la córnea y la conjuntiva (ocular surface vital staining) es una prueba oftalmológica básica que visualiza el daño del epitelio corneal y conjuntival de la superficie ocular mediante colorantes y cuantifica la distribución y el grado del daño.
Los principales colorantes utilizados son los tres siguientes.
Fluoresceína (fluorescein): colorante fluorescente que emite fluorescencia verde cuando se excita con luz azul. Es el más utilizado
Rosa de Bengala (rose bengal): colorante que tiñe de rojo las células muertas, las células degeneradas y el moco
Verde lisamina (lissamine green): colorante alternativo con propiedades de tinción similares a las de la rosa de Bengala, pero menos irritante
Los principales objetivos de esta prueba son los siguientes:
Detectar y cuantificar el daño epitelial de la córnea y la conjuntiva en el ojo seco
Valorar la extensión de la infiltración y las úlceras corneales en la queratitis infecciosa2)
Evaluar el daño epitelial causado por toxicidad de medicamentos, lesiones por lentes de contacto, anomalías palpebrales y situaciones similares
Apoyar el diagnóstico del síndrome de Sjögren (puntuación de van Bijsterveld)3)
En la Guía de práctica clínica del ojo seco de 2016, se recomienda como parte central del diagnóstico del ojo seco la evaluación que combina la medición del tiempo de ruptura de la película lagrimal (BUT) con la tinción con fluoresceína1). En la edición de 2006, el daño epitelial de la córnea y la conjuntiva era indispensable para diagnosticar el ojo seco, pero en la edición de 2016 el daño epitelial dejó de ser un requisito obligatorio, y el diagnóstico pasó a basarse en el acortamiento del BUT y los síntomas. Aun así, la tinción vital sigue siendo una forma importante de registrar de manera objetiva el grado y el patrón del daño epitelial1).
En la evaluación inicial de la queratitis infecciosa, la tinción con fluoresceína también es un procedimiento estándar para conocer la extensión y la forma de los defectos epiteliales corneales, e integra la atención basada en la Guía de práctica clínica de queratitis infecciosa (3.ª edición)2).
Q¿Qué puede mostrar una prueba de tinción vital?
A
Se visualizan la distribución y la gravedad del daño epitelial de la córnea y la conjuntiva. Con fluoresceína, la queratopatía superficial punteada (SPK) y las erosiones o úlceras del epitelio corneal aparecen como fluorescencia, y con rosa de Bengala o verde de lisamina se tiñe la distribución de las células muertas y degeneradas. El patrón de distribución de la SPK puede ayudar a sugerir la enfermedad de base (ojo seco, toxicidad por medicamentos, lesión relacionada con lentes de contacto, etc.). También pueden usarse métodos de puntuación para cuantificar el daño y seguir la evolución del tratamiento con el tiempo.
Lesiones epiteliales corneales en ambos ojos con tinción con fluoresceína (hallazgo en lámpara de hendidura)
Tagmouti A, Lazaar H, Benchekroun M, Boutaj T, Benchekroun S, Amazouzi A, et al. Association Between Thygeson Superficial Punctate Keratitis and Celiac Disease. Cureus. 2025;17(3):e80252. doi:10.7759/cureus.80252. PMID:40196095; PMCID:PMC11975144. Figure 2. PMID: 40196095; PMCID: PMC11975144; DOI: 10.7759/cureus.80252. License: CC BY.
Con la tinción con fluoresceína en lámpara de hendidura, las lesiones epiteliales corneales del ojo derecho (A) y del ojo izquierdo (B) se muestran como fluorescencia verde bajo luz azul. Esto corresponde al método de observación de la tinción con fluoresceína tratado en la sección de características y técnica de cada colorante del texto.
La fluoresceína es el colorante vital más utilizado. Se usa ampliamente porque es fácil de conseguir, segura y causa poca irritación. La fluoresceína es un colorante que emite fluorescencia verde (521 nm) cuando se excita con luz azul (longitud de onda de absorción máxima 494 nm). Puede observarse incluso solo con un filtro azul cobalto, pero las lesiones se ven con más claridad si se añade un filtro libre de azul al sistema de observación.
Principio de la tinción y puntos de observación:
Penetra y tiñe las zonas donde se ha roto la unión estrecha (tight junction) entre las células epiteliales
La observación más clara es posible con la combinación de un filtro azul cobalto (excitación 494 nm) y un filtro libre de azul (filtro barrera)
Principales objetivos de tinción: queratopatía superficial punteada (SPK), erosión corneal, úlcera corneal
Procedimiento de tinción (método de mínima cantidad):
Coloque 1–2 gotas de solución salina en la tira de prueba de fluoresceína y sacúdala bien para eliminar el exceso de humedad
Tocar suavemente con el extremo húmedo de la tira el menisco lagrimal del borde del párpado inferior para teñir
Tenga cuidado de que la tira no toque directamente el globo ocular (para evitar falsos negativos por tinción excesiva)
Observe la distribución, densidad y morfología de la SPK bajo un filtro azul cobalto
El verde de lisamina es un colorante alternativo con propiedades de tinción similares a las del rosa de Bengala, pero menos irritante para los pacientes.
Propiedades de tinción:
Tiñe de verde las células muertas y degeneradas (el mecanismo es el mismo que el del rosa de Bengala)
Puede observarse con claridad con un filtro rojo (560 nm o superior)
Al aplicarlo en gotas, irrita menos que el rosa de Bengala, por lo que resulta más cómodo para el paciente
En los últimos años, su uso clínico ha ido en aumento como alternativa al rosa de Bengala
Fluoresceína (fluorescein)
Longitud de onda de absorción: 494 nm (luz azul) → fluorescencia 521 nm (verde)
Objetivo de tinción: zonas donde se rompen las uniones estrechas entre las células epiteliales (espacios intercelulares)
Uso principal: detección de SPK, medición de BUT y evaluación de úlceras/erosiones corneales
Irritación: baja (la más fácil de usar)
Filtro de observación: azul cobalto + filtro bloqueador de azul (barrera)
rosa de Bengala
Color de tinción: rojo
Objetivos de tinción: células muertas, células degeneradas, zonas sin protección de mucina
Uso principal: diagnóstico del síndrome de Sjögren (puntuación de van Bijsterveld), evaluación del ojo seco
Irritación: intensa (dolor al aplicar las gotas)
Filtro de observación: luz blanca o filtro rojo
verde de lissamina
Color de tinción: verde
Objetivos de tinción: células muertas, células degeneradas (mismo mecanismo que la rosa de Bengala)
Uso principal: alternativa a la rosa de Bengala. Evaluación de ojo seco y síndrome de Sjögren
Irritación: baja (menos carga para el paciente que la rosa de Bengala)
Filtro de observación: más claro con filtro rojo (560 nm o más)
Características
Fluoresceína
Rosa de Bengala
Verde de lisamina
Color de tinción
Fluorescencia verde
Rojo
Verde
Objetivo de la tinción
Espacios intercelulares (zonas con ruptura de las uniones estrechas)
Células muertas, células degeneradas y zonas sin mucina
Q¿Cuál es la diferencia entre el rosa de bengala y el verde lisamina?
A
Ambos tiñen las células muertas y degeneradas, pero el verde lisamina es menos irritante y más cómodo para el paciente. El rosa de bengala puede causar dolor al instilarlo, por lo que en algunos casos puede ser necesaria anestesia tópica. El verde lisamina se ha ido extendiendo en los últimos años como un colorante alternativo que soluciona estas desventajas. Para la observación, el uso de un filtro rojo (560 nm o más) permite ver con más claridad las zonas teñidas.
3. Métodos de puntuación y criterios de valoración
Ejemplo de una cuadrícula corneal de cinco divisiones y de la evaluación de tinción con fluoresceína mediante el método de puntuación NEI
Kim S, Park D, Shin Y, et al. Deep learning-based fully automated grading system for dry eye disease severity. PLoS One. 2024;19(3):e0299776. Figure 1. PMID: 38483911; PMCID: PMC10939279; DOI: 10.1371/journal.pone.0299776. License: CC BY 4.0.
Cuadrícula de evaluación que divide la córnea en cinco áreas: central, nasal superior, temporal superior, nasal inferior y temporal inferior, basada en la puntuación NEI (ambos ojos), junto con un ejemplo de evaluación mediante fotografías reales de tinción con fluoresceína. Corresponde a la puntuación NEI/Industry Workshop tratada en la sección «Métodos de puntuación y criterios de valoración» del texto.
Se han establecido varios sistemas de puntuación para cuantificar el daño epitelial corneoconjuntival.
Evalúe cada una de las tres áreas: córnea, conjuntiva bulbar nasal y conjuntiva bulbar temporal, en una escala de 0 a 3 (0: sin tinción, 1: pocas tinciones puntiformes, 2: tinción con tendencia a confluir, 3: tinción extensa). Una puntuación total de 3,5 o más se considera anormal y se ha adoptado internacionalmente como criterio diagnóstico del síndrome de Sjögren3).
Las tres áreas de la córnea y la conjuntiva bulbar (nasal y temporal) se evalúan por separado de 0 a 4 puntos (5 niveles), para un total de 15 puntos. Cada nivel se valora de forma semicuantitativa comparándolo con diagramas de referencia. Se utiliza para evaluar la gravedad del ojo seco y la respuesta al tratamiento.
La córnea se divide en cinco zonas: central, superonasal, superotemporal, inferonasal e inferotemporal, y cada zona se valora de 0 a 3 puntos para un total de 15 puntos. Se utiliza ampliamente en investigación clínica y ensayos multicéntricos.
Criterios de daño epitelial corneoconjuntival en las Guías de práctica clínica del ojo seco (edición 2006)1):
Puntuación de tinción con fluoresceína de 3 o más
o puntuación de tinción con rosa de Bengala de 3 o más
o puntuación de tinción con verde de lisamina de 3 o más
En los criterios diagnósticos de ojo seco de 2016, el daño epitelial dejó de ser un requisito diagnóstico esencial, pero la observación del daño epitelial sigue desempeñando un papel importante en la evaluación de la gravedad del ojo seco y de la respuesta al tratamiento1).
4. Significado clínico y cómo interpretar los patrones de tinción
La queratopatía punteada superficial (queratopatía punteada superficial: SPK) es el hallazgo ocular más frecuente en los pacientes que refieren sensación de cuerpo extraño. La SPK es el “resultado” de una lesión del epitelio corneal causada por algún factor subyacente, no un diagnóstico de la causa. La tinción vital con fluoresceína es esencial para detectar la SPK y conocer su patrón de distribución, y puede mostrar SPK sutil que no se ve solo con la microscopía de lámpara de hendidura.
Cuando se detecta SPK, es importante inferir activamente la enfermedad causal a partir de su patrón de distribución.
Patrones de distribución de la SPK y enfermedades causales
En la queratopatía tóxica por fármacos, el daño del epitelio conjuntival es menor que el del epitelio corneal. Este hallazgo puede confirmarse claramente con tinción con fluoresceína y es útil para diferenciarla de otras enfermedades causales. Si se observa SPK difuso en toda la córnea, debe considerarse el efecto de las gotas oftálmicas utilizadas (conservantes, medicamentos de alta concentración, antibióticos aminoglucósidos, etc.)2).
Significado de la tinción en la queratitis infecciosa
En la queratitis infecciosa, la tinción con fluoresceína permite evaluar de forma objetiva la forma, el área y la profundidad (según la intensidad de la tinción) de los defectos del epitelio corneal. La extensión y la forma de la úlcera se utilizan como indicadores para elegir el tratamiento y para el seguimiento2). Además, las gotas oftálmicas antibacterianas (formulaciones de alta concentración y aminoglucósidos) pueden causar toxicidad del epitelio corneal con facilidad, por lo que es importante comprobar con tinción vital si hay empeoramiento del daño epitelial durante el tratamiento2).
Q¿Qué puede indicar el patrón de tinción?
A
Al observar el patrón de distribución de SPK, puede inferirse la enfermedad causante. El SPK concentrado en la parte inferior de la córnea sugiere ojo seco o entropión, el SPK superior sugiere SLK o tracoma, y el SPK difuso en toda la córnea sugiere toxicidad por fármacos o queratitis viral. El SPK entre las posiciones de las 3 y las 9 es característico de la lesión por lentes de contacto, y el SPK en la córnea central es típico de lagoftalmos y queratitis neuroparalítica. El SPK es solo el “resultado” del daño epitelial, y utilizar su patrón de distribución como pista para buscar la causa es el punto clave de la atención.
5. Guías de tratamiento relacionadas (manejo según la causa del daño epitelial)
Identifique la causa a partir de la distribución y la gravedad del daño epitelial confirmados por tinción vital, y elija el tratamiento según la causa.
El tratamiento estándar basado en la Guía de práctica clínica de ojo seco (edición 2016) es el siguiente1).
Colirio de diquafosol sódico al 3% (Diquas®): instilar 6 veces al día. Tiene efectos multifacéticos: promueve la secreción acuosa, promueve la secreción de mucina secretora (MUC5AC) y aumenta la expresión de mucinas de membrana (MUC1, MUC4, MUC16). Mejora la estabilidad de la película lagrimal, el daño epitelial corneoconjuntival y los síntomas subjetivos
Suspensión oftálmica de rebamipida al 2% (Mucosta®): instilar 4 veces al día. Aumenta el número de células caliciformes, favoreciendo la secreción de mucina secretora y aumentando la expresión de mucina de membrana. Mejora el daño epitelial corneoconjuntival y los síntomas subjetivos
Colirio de ácido hialurónico al 0,1%: mejora el daño epitelial corneoconjuntival y los síntomas subjetivos. Puede usarse para una amplia gama de subtipos
Inserción de tapón punctal: suprime el drenaje lagrimal. Es la primera opción en el patrón area break (tipo de déficit lagrimal)
Según la Guía de práctica clínica de queratitis infecciosa (3.ª edición), se selecciona el antimicrobiano adecuado después de identificar el microorganismo causal2).
Tratamiento inicial de la queratitis bacteriana: colirios de fluoroquinolonas de amplio espectro, como levofloxacino al 1,5%
Tenga en cuenta que los colirios de alta concentración y los aminoglucósidos tienden a producir daño epitelial corneal2).
Durante el tratamiento, confirme periódicamente la mejoría del daño epitelial mediante tinción vital
La fluoresceína es un colorante fluorescente que absorbe luz azul cobalto (494 nm) y emite fluorescencia verde (521 nm). El principio de emisión fluorescente es la fotoluminiscencia, en la que la energía absorbida se reemite como luz.
El filtro que bloquea la luz azul (filtro de barrera) bloquea la luz de excitación (alrededor de 494 nm) y deja pasar solo la longitud de onda de la fluorescencia (521 nm). Así se elimina la luz de fondo y la tinción con fluoresceína del SPK se observa con mayor claridad. Cuando se coloca un filtro que bloquea la luz azul en el microscopio de lámpara de hendidura, la sensibilidad para detectar SPK mejora mucho en comparación con usar solo el filtro azul cobalto.
Cuando se rompen las uniones estrechas del epitelio corneal, la fluoresceína penetra en los espacios entre las células y fluoresce. Las zonas en las que las uniones estrechas normales se mantienen no permiten la entrada de la fluoresceína y no se tiñen.
La rosa de Bengala tiñe de forma selectiva las células que no están protegidas por mucina. Las células sanas de la superficie ocular están cubiertas por una capa de mucina (principalmente mucina secretora MUC5AC), que evita la tinción con rosa de Bengala. Las células muertas o degeneradas han perdido esta protección de mucina, por lo que se tiñen. A diferencia de la fluoresceína, tiñe las propias células muertas, por lo que puede considerarse un indicador de la viabilidad celular de la superficie ocular.
El verde de lisamina tiñe las células muertas y degeneradas mediante un mecanismo similar al de la rosa de Bengala. La tinción se observa con mayor claridad bajo observación con filtro rojo (560 nm o más). Se cree que irrita menos la superficie ocular que la rosa de Bengala debido a diferencias en su penetración en el tejido vivo.
El filtro azul es especialmente importante en la observación con fluoresceína. Incluso con luz azul cobalto sin filtro, las lesiones pueden verse, pero al añadir un filtro azul:
se elimina la luz de fondo (luz azul cobalto dispersada)
solo las longitudes de onda fluorescentes llegan a la retina, mejorando mucho el contraste
se detectan con mayor facilidad los SPK pequeños
también mejora la precisión de la medición del BUT (evaluación de la rotura de la película lagrimal)
Mapeo no invasivo del grosor del epitelio corneal con OCT de segmento anterior: Se están produciendo avances en la cartografía tomográfica del grosor del epitelio corneal mediante tomografía de coherencia óptica de segmento anterior (AS-OCT). Puede permitir evaluar el adelgazamiento y la distribución irregular del epitelio corneal sin tinción vital, y se investiga como complemento o alternativa a la tinción vital4)
Objetivación de las puntuaciones de tinción mediante análisis automático de imágenes: La puntuación de la tinción (puntuación de Oxford, puntuación de van Bijsterveld, etc.) depende actualmente del juicio subjetivo del observador. Está avanzando el desarrollo de sistemas automáticos de puntuación mediante IA y aprendizaje automático, y se espera mejorar la reproducibilidad y la objetividad5)
Investigación para refinar la sensibilidad y la especificidad de la tinción: Se están realizando estudios para evaluar la sensibilidad y la especificidad de cada colorante según el subtipo de ojo seco y la etapa de la enfermedad. En particular, se están comparando la equivalencia y la intercambiabilidad del lissamine green y la rose bengal
Combinación con microscopía confocal: Al combinar la microscopía confocal in vivo (IVCM) con la tinción vital, se está haciendo posible evaluar el daño epitelial a nivel celular. También se está investigando su aplicación a la identificación de patógenos en la queratitis infecciosa4)
Vitali C, Bombardieri S, Jonsson R, Moutsopoulos HM, Alexander EL, Carsons SE, Daniels TE, Fox PC, Fox RI, Kassan SS, Pillemer SR, Talal N, Weisman MH, European Study Group on Classification Criteria for Sjögren’s Syndrome. Classification criteria for Sjögren’s syndrome: a revised version of the European criteria proposed by the American-European Consensus Group. Ann Rheum Dis. 2002;61(6):554-558. doi:10.1136/ard.61.6.554. PMID:12006334; PMCID:PMC1754137.
Palakkamanil MM, Nichols KK. Comparison of lissamine green and rose bengal staining. Optom Vis Sci. 2015;92(5):566-571.
Bron AJ, Evans VE, Smith JA. Grading of corneal and conjunctival staining in the context of other dry eye tests. Cornea. 2003;22(7):640-50. doi:10.1097/00003226-200310000-00008. PMID:14508260.
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