Lewati ke konten
Lainnya

Pemeriksaan pewarnaan vital kornea dan konjungtiva (fluorescein, rose bengal, dll.) (Ocular Surface Vital Staining)

1. Apa itu pemeriksaan vital staining kornea dan konjungtiva?

Section titled “1. Apa itu pemeriksaan vital staining kornea dan konjungtiva?”

Pemeriksaan vital staining kornea dan konjungtiva (ocular surface vital staining) adalah pemeriksaan dasar mata yang memvisualisasikan kerusakan epitel kornea dan konjungtiva pada permukaan mata dengan zat pewarna, lalu mengukur distribusi dan tingkat kerusakan tersebut.

Zat pewarna utama yang digunakan adalah tiga berikut.

  • Fluorescein (fluorescein): zat pewarna fluoresen yang memancarkan fluoresensi hijau saat dieksitasi dengan cahaya biru. Ini yang paling banyak digunakan
  • Rose bengal (rose bengal): zat pewarna yang mewarnai merah sel mati, sel degeneratif, dan mukus
  • Lissamine green (lissamine green): zat pewarna pengganti dengan sifat pewarnaan yang mirip rose bengal, tetapi lebih tidak mengiritasi

Tujuan utama pemeriksaan ini adalah sebagai berikut:

  • Mendeteksi dan mengukur kerusakan epitel kornea dan konjungtiva pada mata kering
  • Menilai luas infiltrasi dan ulkus kornea pada keratitis infeksi2)
  • Menilai kerusakan epitel akibat toksisitas obat, gangguan akibat lensa kontak, kelainan kelopak mata, dan sejenisnya
  • Membantu diagnosis sindrom Sjögren (skoring van Bijsterveld)3)

Dalam Pedoman Praktik Klinis Mata Kering edisi 2016, penilaian yang menggabungkan pengukuran tear film breakup time (BUT) dan pewarnaan fluorescein direkomendasikan sebagai inti diagnosis mata kering1). Pada edisi 2006, kerusakan epitel kornea dan konjungtiva merupakan syarat wajib untuk diagnosis mata kering, tetapi pada edisi 2016 kerusakan epitel tidak lagi menjadi syarat wajib, dan diagnosis beralih pada BUT yang lebih pendek dan gejala yang dirasakan pasien. Meski begitu, pewarnaan vital tetap menjadi cara penting untuk mencatat secara objektif tingkat dan pola kerusakan epitel1).

Pada penilaian awal keratitis infeksi, pewarnaan fluorescein juga merupakan prosedur standar untuk mengetahui luas dan bentuk defek epitel kornea, dan dimasukkan ke dalam tata laksana berdasarkan Pedoman Praktik Klinis Keratitis Infeksi (edisi ke-3)2).

Q Apa yang dapat diketahui dari pemeriksaan vital staining?
A

Distribusi dan derajat kerusakan epitel kornea dan konjungtiva dapat divisualisasikan. Dengan fluorescein, keratopati superfisial punctata (SPK) serta erosi dan ulkus epitel kornea tampak sebagai fluoresensi, sedangkan dengan rose bengal atau lissamine green, distribusi sel mati dan sel degeneratif akan terwarnai. Pola distribusi SPK dapat membantu memperkirakan penyakit penyebab (mata kering, toksisitas obat, gangguan terkait lensa kontak, dan sebagainya). Metode skoring juga dapat digunakan untuk mengukur kerusakan dan menilai efek pengobatan dari waktu ke waktu.

2. Karakteristik dan prosedur masing-masing pewarna

Section titled “2. Karakteristik dan prosedur masing-masing pewarna”
Lesi epitel kornea pada kedua mata dengan pewarnaan fluorescein (temuan slit-lamp)
Lesi epitel kornea pada kedua mata dengan pewarnaan fluorescein (temuan slit-lamp)
Tagmouti A, Lazaar H, Benchekroun M, Boutaj T, Benchekroun S, Amazouzi A, et al. Association Between Thygeson Superficial Punctate Keratitis and Celiac Disease. Cureus. 2025;17(3):e80252. doi:10.7759/cureus.80252. PMID:40196095; PMCID:PMC11975144. Figure 2. PMID: 40196095; PMCID: PMC11975144; DOI: 10.7759/cureus.80252. License: CC BY.
Dengan pewarnaan fluorescein pada slit-lamp, lesi epitel kornea pada mata kanan (A) dan mata kiri (B) tampak sebagai fluoresensi hijau di bawah cahaya biru. Ini sesuai dengan metode pengamatan pewarnaan fluorescein yang dibahas pada bagian karakteristik dan prosedur masing-masing pewarna dalam teks.

Fluorescein adalah zat pewarna vital yang paling banyak digunakan. Zat ini banyak dipakai karena mudah didapat, aman, dan sedikit menimbulkan iritasi. Fluorescein adalah zat warna yang memancarkan fluoresensi hijau (521 nm) ketika dieksitasi oleh cahaya biru (panjang gelombang serapan maksimum 494 nm). Zat ini masih dapat diamati hanya dengan filter biru kobalt, tetapi lesi akan terlihat lebih jelas jika filter bebas biru dipasang pada sistem pengamatan.

Prinsip pewarnaan dan poin pengamatan:

  • Menembus dan mewarnai area yang mengalami kerusakan tight junction antarsel epitel
  • Pengamatan paling jelas dapat dilakukan dengan kombinasi filter biru kobalt (eksitasi 494 nm) dan filter bebas biru (filter penghalang)
  • Sasaran pewarnaan utama: keratopati superfisial titik (SPK), erosi kornea, ulkus kornea

Prosedur pewarnaan (metode jumlah minimal):

  1. Teteskan 1–2 tetes larutan salin ke kertas uji fluorescein, lalu kocok baik untuk membuang kelebihan cairan
  2. Sentuhkan ujung kertas uji yang basah secara ringan ke meniskus air mata di tepi kelopak bawah untuk mewarnai
  3. Pastikan kertas uji tidak menyentuh bola mata secara langsung (untuk mencegah hasil negatif palsu akibat pewarnaan berlebihan)
  4. Amati distribusi, kepadatan, dan bentuk SPK di bawah filter biru kobalt

Rose bengal mewarnai permukaan mata dengan mekanisme yang berbeda dari fluorescein.

Karakteristik pewarnaan:

  • Mewarnai sel mati, sel yang mengalami degenerasi, dan area yang kehilangan perlindungan mukin menjadi merah
  • Permukaan sel normal dilapisi mukin yang disekresikan, sehingga mencegah rose bengal menembus
  • Diamati dengan cahaya putih atau filter merah
  • Lebih iritatif daripada fluorescein dan dapat menimbulkan nyeri saat diteteskan

Skor van Bijsterveld (digunakan untuk rose bengal dan lissamine green):

  • Tiga area—kornea, konjungtiva bulbi nasal, dan konjungtiva bulbi temporal—masing-masing dinilai 0–3
  • Skor total 3,5 atau lebih dianggap positif (digunakan dalam kriteria diagnosis sindrom Sjögren)3)

Lissamine green adalah pewarna alternatif dengan sifat pewarnaan yang mirip dengan rose bengal, tetapi lebih tidak mengiritasi pasien.

Sifat pewarnaan:

  • Mewarnai sel mati dan sel degeneratif menjadi hijau (mekanismenya sama seperti rose bengal)
  • Dapat diamati dengan jelas dengan filter merah (560 nm atau lebih)
  • Saat diteteskan ke mata, iritasinya lebih ringan daripada rose bengal, sehingga lebih nyaman bagi pasien
  • Dalam beberapa tahun terakhir, penggunaannya dalam praktik klinis cenderung meningkat sebagai pengganti rose bengal

Fluorescein (fluorescein)

Panjang gelombang serapan: 494 nm (cahaya biru) → fluoresensi 521 nm (hijau)

Target pewarnaan: area tempat hubungan rapat antar sel epitel terputus (ruang antarsel)

Kegunaan utama: deteksi SPK, pengukuran BUT, dan penilaian ulkus/erosi kornea

Iritasi: rendah (paling mudah digunakan)

Filter pengamatan: biru kobalt + filter pemblokir biru (barrier)

rose bengal

Warna pewarnaan: merah

Target pewarnaan: sel mati, sel degeneratif, area yang kehilangan perlindungan musin

Kegunaan utama: diagnosis sindrom Sjögren (skor van Bijsterveld), penilaian mata kering

Iritasi: berat (nyeri saat diteteskan)

Filter pengamatan: cahaya putih atau filter merah

lissamine green

Warna pewarnaan: hijau

Target pewarnaan: sel mati, sel degeneratif (mekanisme yang sama dengan rose bengal)

Kegunaan utama: alternatif rose bengal. Penilaian mata kering dan sindrom Sjögren

Iritasi: rendah (beban bagi pasien lebih ringan daripada rose bengal)

Filter pengamatan: terlihat jelas dengan filter merah (560 nm atau lebih)

KarakteristikFluoresceinRose bengalLissamine green
Warna pewarnaanFluoresensi hijauMerahHijau
Target pewarnaanRuang antarsel (area dengan rusaknya tight junction)Sel mati, sel degeneratif, dan area kekurangan mukinSel mati dan sel degeneratif
IritasiRendahTinggi (dengan nyeri)Rendah
Filter observasiBiru kobalt + tanpa biruCahaya putih · filter merahFilter merah (560 nm atau lebih)
Kegunaan utamaSPK · pengukuran BUT · ulkus korneaDiagnosis Sjögren · mata keringAlternatif rose bengal
Skor representatifSkor Oxford dan NEISkor van BijsterveldSkor van Bijsterveld
Q Apa perbedaan antara rose bengal dan lissamine green?
A

Keduanya mewarnai sel yang mati dan berubah degenerasi, tetapi lissamine green lebih sedikit mengiritasi dan lebih nyaman bagi pasien. Rose bengal dapat menimbulkan nyeri saat diteteskan, sehingga pada بعض kasus mungkin diperlukan anestesi topikal. Lissamine green dalam beberapa tahun terakhir semakin banyak digunakan sebagai pewarna alternatif yang mengatasi kekurangan tersebut. Untuk pengamatan, penggunaan filter merah (560 nm atau lebih) memudahkan melihat area yang terwarnai dengan jelas.

3. Metode penskoran dan kriteria penilaian

Section titled “3. Metode penskoran dan kriteria penilaian”
Contoh grid kornea 5 bagian dan penilaian pewarnaan fluorescein dengan metode skor NEI
Contoh grid kornea 5 bagian dan penilaian pewarnaan fluorescein dengan metode skor NEI
Kim S, Park D, Shin Y, et al. Deep learning-based fully automated grading system for dry eye disease severity. PLoS One. 2024;19(3):e0299776. Figure 1. PMID: 38483911; PMCID: PMC10939279; DOI: 10.1371/journal.pone.0299776. License: CC BY 4.0.
Grid penilaian yang membagi kornea menjadi lima bagian—sentral, nasal atas, temporal atas, nasal bawah, dan temporal bawah—berdasarkan skor NEI, serta contoh penilaian dengan foto pewarnaan fluorescein asli. Ini sesuai dengan skor NEI/Industry Workshop yang dibahas pada bagian “Metode penskoran dan kriteria penilaian” di teks utama.

Beberapa sistem penskoran telah ditetapkan untuk mengukur secara kuantitatif kerusakan epitel korneokonjungtiva.

Metode skorArea penilaianRentang skorTotalKegunaan utama
skor van Bijsterveldkornea, konjungtiva bulbar nasal, konjungtiva bulbar temporal (3 area)masing-masing 0–3 poinmaksimum 9 poin (abnormal bila 3,5 poin atau lebih)kriteria diagnosis sindrom Sjögren
skor Oxfordkornea, konjungtiva bulbar (nasal dan temporal) (3 area)masing-masing 0–4 poin (5 tingkat)maksimum 15 poinpenilaian tingkat keparahan mata kering
skor NEI/Industry Workshopkornea (5 bagian)masing-masing 0–3 poinmaksimum 15 poinpenelitian klinis mata kering

Masing-masing dari tiga area—kornea, konjungtiva bulbar nasal, dan konjungtiva bulbar temporal—dinilai pada skala 0 hingga 3 (0: tidak ada pewarnaan, 1: beberapa pewarnaan titik, 2: pewarnaan yang cenderung menyatu, 3: pewarnaan yang luas). Skor total 3,5 atau lebih dianggap abnormal dan telah diadopsi secara internasional sebagai kriteria diagnosis sindrom Sjögren3).

Ketiga area—kornea dan konjungtiva bulbar (nasal dan temporal)—dinilai masing-masing 0 hingga 4 poin (5 tingkat), dengan total 15 poin. Setiap tingkat dinilai secara semikualitatif dengan membandingkannya dengan diagram panel. Digunakan untuk menilai tingkat keparahan mata kering dan menilai respons terhadap pengobatan.

Kornea dibagi menjadi lima zona: sentral, superonasal, superotemporal, inferonasal, dan inferotemporal, dan setiap zona dinilai 0 hingga 3 poin sehingga total 15 poin. Ini banyak digunakan dalam penelitian klinis dan uji multicenter.

Kriteria kerusakan epitel kornea dan konjungtiva dalam Pedoman Tata Laksana Mata Kering (edisi 2006)1)

  • Skor pewarnaan fluorescein 3 atau lebih
  • atau skor pewarnaan rose bengal 3 atau lebih
  • atau skor pewarnaan lissamine green 3 atau lebih

Dalam kriteria diagnosis mata kering edisi 2016, kerusakan epitel tidak lagi menjadi syarat diagnosis yang wajib, tetapi pengamatan kerusakan epitel tetap berperan penting dalam menilai tingkat keparahan mata kering dan menilai efektivitas pengobatan1).

4. Makna klinis dan cara membaca pola pewarnaan

Section titled “4. Makna klinis dan cara membaca pola pewarnaan”

Penilaian keratopati punctate superfisial (SPK)

Section titled “Penilaian keratopati punctate superfisial (SPK)”

Keratopati punctate superfisial (superficial punctate keratopathy: SPK) adalah temuan mata yang paling sering pada pasien yang mengeluh sensasi benda asing. SPK merupakan “akibat” dari kerusakan epitel kornea oleh suatu penyebab, bukan diagnosis penyebabnya. Pewarnaan vital fluorescein sangat penting untuk mendeteksi SPK dan memahami pola penyebarannya, serta dapat memperlihatkan SPK halus yang tidak terlihat hanya dengan mikroskopi slit-lamp.

Jika SPK ditemukan, penting untuk secara aktif memperkirakan penyakit penyebab dari pola penyebarannya.

Pola distribusiPenyakit penyebab utama
Terkonsentrasi di sepertiga bawah korneaMata kering (tipe kekurangan air mata), entropion
Terkonsentrasi di sepertiga atas korneaKeratokonjungtivitis limbal superior (SLK), trakoma
Seluruh kornea (difus)Keratopati toksik akibat obat, keratitis virus
Arah jam 3 hingga 9 (pita horizontal)Lensa kontak (pewarnaan 3-9 o’clock)
Kornea sentralLagophthalmos, keratitis neuroparalitik

SPK eksogen:

SPK endogen:

Pola pewarnaan khas pada keratopati toksik akibat obat

Section titled “Pola pewarnaan khas pada keratopati toksik akibat obat”

Pada keratopati toksik akibat obat, kerusakan epitel konjungtiva lebih ringan dibandingkan kerusakan epitel kornea. Temuan ini dapat dikonfirmasi dengan jelas melalui pewarnaan fluorescein dan berguna untuk membedakannya dari penyakit penyebab lain. Jika SPK difus terlihat di seluruh kornea, perlu mempertimbangkan pengaruh obat tetes mata yang digunakan (pengawet, obat konsentrasi tinggi, antibiotik aminoglikosida, dll.)2).

Pada keratitis infeksius, pewarnaan fluorescein memungkinkan penilaian objektif terhadap bentuk, luas, dan kedalaman (dinilai dari intensitas pewarnaan) defek epitel kornea. Luas dan bentuk ulkus digunakan sebagai indikator untuk memilih terapi dan untuk pemantauan perjalanan penyakit2). Selain itu, obat tetes mata antibakteri (sediaan konsentrasi tinggi dan aminoglikosida) mudah menimbulkan toksisitas epitel kornea, sehingga penting untuk memeriksa dengan pewarnaan vital apakah ada perburukan kerusakan epitel selama pengobatan2).

Q Apa yang dapat diketahui dari pola pewarnaan?
A

Dengan mengamati pola distribusi SPK, penyakit penyebab dapat diperkirakan. SPK yang terkonsentrasi di bagian bawah kornea mengarah pada mata kering atau entropion, SPK di bagian atas mengarah pada SLK dan trakhoma, sedangkan SPK difus di seluruh kornea mengarah pada toksisitas obat atau keratitis virus. SPK pada arah jam 3 sampai 9 khas untuk cedera lensa kontak, dan SPK di kornea sentral khas untuk lagoftalmos dan keratitis neuroparalitik. SPK pada dasarnya hanyalah “hasil” dari kerusakan epitel, dan menggunakan pola distribusinya sebagai petunjuk untuk mencari penyebab merupakan poin utama dalam praktik klinis.

5. Pedoman terapi terkait (penanganan berdasarkan penyebab kerusakan epitel)

Section titled “5. Pedoman terapi terkait (penanganan berdasarkan penyebab kerusakan epitel)”

Tentukan penyebab dari distribusi dan tingkat kerusakan epitel yang dikonfirmasi dengan pewarnaan vital, lalu pilih pengobatan sesuai penyebabnya.

Terapi standar berdasarkan Pedoman Penatalaksanaan Mata Kering edisi 2016 adalah sebagai berikut1).

  • Tetes mata natrium diquafosol 3% (Diquas®): ditetes 6 kali sehari. Memiliki efek multipel: meningkatkan sekresi air, meningkatkan sekresi musin sekretorik (MUC5AC), dan meningkatkan ekspresi musin membran (MUC1, MUC4, MUC16). Memperbaiki stabilitas lapisan air mata, kerusakan epitel korneokonjungtiva, dan gejala subjektif
  • Tetes mata suspensi rebamipide 2% (Mucosta®): ditetes 4 kali sehari. Meningkatkan jumlah sel goblet sehingga merangsang sekresi musin sekretorik dan meningkatkan ekspresi musin membran. Memperbaiki kerusakan epitel korneokonjungtiva dan gejala subjektif
  • Tetes mata asam hialuronat 0,1%: memperbaiki kerusakan epitel korneokonjungtiva dan gejala subjektif. Dapat digunakan untuk berbagai subtipe
  • Pemasangan sumbat punctum: menghambat drainase air mata. Menjadi pilihan pertama pada pola area break (tipe kekurangan air mata)

Kerusakan epitel akibat keratitis infeksius

Section titled “Kerusakan epitel akibat keratitis infeksius”

Berdasarkan Pedoman Penatalaksanaan Keratitis Infeksius edisi ke-3, pilih obat antimikroba yang sesuai setelah identifikasi kuman penyebab2).

  • Terapi awal keratitis bakterial: tetes mata fluoroquinolon spektrum luas seperti levofloxacin 1,5%
  • Perlu diperhatikan bahwa tetes mata berkonsentrasi tinggi dan obat golongan aminoglikosida mudah menimbulkan kerusakan epitel kornea2)
  • Selama pengobatan, perbaikan kerusakan epitel dikonfirmasi secara berkala dengan pewarnaan vital
  • Menghentikan atau mengganti obat tetes mata yang diduga menjadi penyebabnya (misalnya sediaan yang mengandung pengawet) adalah penanganan dasar
  • Pertimbangkan beralih ke sediaan bebas pengawet
  • Setelah dihentikan, konfirmasi perbaikan gangguan epitel dengan pewarnaan vital
  • Hentikan sementara pemakaian lensa kontak
  • Tinjau kembali bahan lensa, kadar air, dan lama pemakaian
  • Jika ada mata kering, lakukan pengobatan tetes mata secara bersamaan

6. Prinsip pengukuran (prinsip optik dan mekanisme pewarnaan)

Section titled “6. Prinsip pengukuran (prinsip optik dan mekanisme pewarnaan)”

Fluorescein adalah pewarna fluoresen yang menyerap cahaya biru kobalt (494 nm) dan memancarkan fluoresensi hijau (521 nm). Prinsip emisi fluoresensi adalah fotoluminesensi, yaitu energi yang diserap dipancarkan kembali sebagai cahaya.

Filter yang menghalangi cahaya biru (barrier filter) menghalangi cahaya eksitasi (sekitar 494 nm) dan hanya meneruskan panjang gelombang fluoresensi (521 nm). Dengan demikian, cahaya latar dihilangkan dan fluoresensi pewarnaan SPK lebih mudah terlihat. Saat filter yang menghalangi cahaya biru dipasang pada mikroskop slit lamp, sensitivitas deteksi SPK meningkat jauh dibandingkan hanya menggunakan filter biru kobalt.

Saat tight junction pada epitel kornea rusak, fluorescein masuk ke celah antarsel dan berfluoresensi. Area yang masih mempertahankan tight junction normal tidak dapat dimasuki fluorescein dan tidak terwarnai.

Rose bengal secara selektif mewarnai sel yang tidak dilindungi oleh musin. Sel permukaan mata yang sehat dilapisi lapisan musin (terutama musin sekretori MUC5AC), yang mencegah pewarnaan rose bengal. Sel mati dan sel yang mengalami degenerasi kehilangan perlindungan musin ini, sehingga akan terwarnai. Tidak seperti fluorescein, zat ini mewarnai sel mati itu sendiri, sehingga dapat dianggap sebagai penanda yang mencerminkan viabilitas sel permukaan mata.

Lissamine green mewarnai sel mati dan sel yang mengalami degenerasi dengan mekanisme yang mirip dengan rose bengal. Pewarnaan paling jelas terlihat saat diperiksa dengan filter merah (560 nm atau lebih). Dibandingkan rose bengal, zat ini diduga lebih sedikit mengiritasi permukaan mata karena perbedaan daya tembusnya ke jaringan hidup.

Filter biru sangat penting dalam pengamatan fluorescein. Bahkan tanpa filter, lesi masih bisa terlihat dengan cahaya biru kobalt, tetapi dengan menambahkan filter biru:

  • cahaya latar (hamburan cahaya biru kobalt) dihilangkan
  • hanya panjang gelombang fluoresen yang mencapai retina, sehingga kontras meningkat jauh
  • SPK kecil lebih mudah terdeteksi
  • ketepatan pengukuran BUT (penilaian pecahnya lapisan air mata) juga meningkat

7. Penelitian terbaru dan prospek ke depan

Section titled “7. Penelitian terbaru dan prospek ke depan”
  • Pemetaan ketebalan epitel kornea noninvasif dengan OCT segmen anterior: Teknologi pemetaan tomografis ketebalan epitel kornea dengan optical coherence tomography segmen anterior (AS-OCT) terus berkembang. Ini mungkin memungkinkan penilaian penipisan dan distribusi epitel kornea yang tidak merata tanpa pewarnaan vital, dan sedang diteliti sebagai pelengkap atau alternatif untuk pewarnaan vital4)
  • Menjadikan skor pewarnaan lebih objektif dengan analisis gambar otomatis: Skoring pewarnaan (skor Oxford, skor van Bijsterveld, dan lain-lain) saat ini bergantung pada penilaian subjektif pengamat. Pengembangan sistem skoring otomatis dengan AI dan machine learning sedang berlangsung, dan diharapkan meningkatkan reprodusibilitas serta objektivitas5)
  • Penelitian untuk menyempurnakan sensitivitas dan spesifisitas pewarnaan: Studi terus dilakukan untuk menilai sensitivitas dan spesifisitas masing-masing zat pewarna berdasarkan subtipe mata kering dan tahap penyakit. Secara khusus, sedang dilakukan kajian mengenai kesetaraan dan saling dapat ditukarnya lissamine green dan rose bengal
  • Kombinasi dengan mikroskopi konfokal: Dengan menggabungkan mikroskopi konfokal in vivo (IVCM) dengan pewarnaan vital, penilaian kerusakan epitel pada tingkat sel kini semakin memungkinkan. Penerapannya untuk mengidentifikasi patogen pada keratitis infeksi juga sedang diteliti4)
  1. ドライアイ研究会診療ガイドライン作成委員会(島﨑潤, 横井則彦, 渡辺仁, 他). ドライアイ診療ガイドライン. 日本眼科学会雑誌. 2019;123(5):489-592.
  2. 日本眼感染症学会感染性角膜炎診療ガイドライン第3版作成委員会. 感染性角膜炎診療ガイドライン(第3版). 日眼会誌. 2023;127(10):859-895.
  3. Vitali C, Bombardieri S, Jonsson R, Moutsopoulos HM, Alexander EL, Carsons SE, Daniels TE, Fox PC, Fox RI, Kassan SS, Pillemer SR, Talal N, Weisman MH, European Study Group on Classification Criteria for Sjögren’s Syndrome. Classification criteria for Sjögren’s syndrome: a revised version of the European criteria proposed by the American-European Consensus Group. Ann Rheum Dis. 2002;61(6):554-558. doi:10.1136/ard.61.6.554. PMID:12006334; PMCID:PMC1754137.
  4. Palakkamanil MM, Nichols KK. Comparison of lissamine green and rose bengal staining. Optom Vis Sci. 2015;92(5):566-571.
  5. Bron AJ, Evans VE, Smith JA. Grading of corneal and conjunctival staining in the context of other dry eye tests. Cornea. 2003;22(7):640-50. doi:10.1097/00003226-200310000-00008. PMID:14508260.

Salin teks artikel dan tempelkan ke asisten AI pilihan Anda.