Die Vitalfärbung von Hornhaut und Bindehaut (ocular surface vital staining) ist eine grundlegende augenärztliche Untersuchung, bei der Schäden des Hornhaut- und Bindehautepithels der Augenoberfläche mit Farbstoffen sichtbar gemacht und Verteilung sowie Ausmaß der Schäden quantitativ erfasst werden.
Die wichtigsten verwendeten Farbstoffe sind die folgenden drei.
Fluorescein (fluorescein): ein fluoreszierender Farbstoff, der bei Anregung mit blauem Licht grüne Fluoreszenz aussendet. Er wird am häufigsten verwendet
Rose Bengal (rose bengal): ein Farbstoff, der tote Zellen, degenerierte Zellen und Schleim rot färbt
Lissamingrün (lissamine green): ein Ersatzfarbstoff mit ähnlichen Färbeeigenschaften wie Rose Bengal, aber weniger reizend
Die wichtigsten Ziele dieser Untersuchung sind:
Erkennen und Quantifizieren von epithelialen Schäden an Hornhaut und Bindehaut beim trockenen Auge
Beurteilung des Ausmaßes von Infiltration und Hornhautulzera bei infektiöser Keratitis2)
Beurteilung epithelialer Schäden durch Arzneimitteltoxizität, Kontaktlinsenschäden, Lidfehlbildungen und ähnliche Ursachen
Unterstützung der Diagnose des Sjögren-Syndroms (van-Bijsterveld-Scoring)3)
In der klinischen Leitlinie zum trockenen Auge von 2016 wird die Bewertung, die die Messung der Tränenfilmaufrisszeit (BUT) mit der Fluorescein-Färbung kombiniert, als Kernbestandteil der Diagnose des trockenen Auges empfohlen1). In der Ausgabe von 2006 waren epitheliale Schäden an Hornhaut und Bindehaut für die Diagnose des trockenen Auges zwingend erforderlich, aber in der Ausgabe von 2016 sind epitheliale Schäden keine Pflicht mehr; die Diagnose stützt sich nun auf eine verkürzte BUT und subjektive Symptome. Dennoch bleibt die Vitalfärbung eine wichtige Methode, um Ausmaß und Muster epithelialer Schäden objektiv zu dokumentieren1).
Auch in der Erstbeurteilung der infektiösen Keratitis ist die Fluorescein-Färbung ein Standardverfahren, um Ausdehnung und Form von epithelialen Hornhautdefekten zu erfassen; sie ist in die Versorgung nach der klinischen Leitlinie zur infektiösen Keratitis (3. Auflage)2) eingebunden.
QWas kann eine Vitalfärbung zeigen?
A
Verteilung und Ausmaß der epithelialen Schäden an Hornhaut und Bindehaut werden sichtbar. Mit Fluorescein erscheinen punktförmige oberflächliche Keratopathie (SPK) sowie Erosionen und Ulzera des Hornhautepithels als Fluoreszenz, und mit Rose Bengal oder Lissamingrün werden tote und degenerierte Zellen angefärbt. Das Verteilungsmuster der SPK kann die zugrunde liegende Ursache vermuten lassen (trockenes Auge, Arzneimitteltoxizität, kontaktlinsenbedingte Schäden usw.). Mit Scoring-Verfahren lässt sich der Schaden auch quantifizieren und der Behandlungserfolg im Verlauf verfolgen.
2. Eigenschaften und Vorgehen der einzelnen Farbstoffe
Epitheliale Hornhautläsionen beider Augen bei Fluorescein-Färbung (Spaltlampenbefund)
Tagmouti A, Lazaar H, Benchekroun M, Boutaj T, Benchekroun S, Amazouzi A, et al. Association Between Thygeson Superficial Punctate Keratitis and Celiac Disease. Cureus. 2025;17(3):e80252. doi:10.7759/cureus.80252. PMID:40196095; PMCID:PMC11975144. Figure 2. PMID: 40196095; PMCID: PMC11975144; DOI: 10.7759/cureus.80252. License: CC BY.
Bei der Fluorescein-Färbung an der Spaltlampe werden die epithelialen Hornhautläsionen des rechten Auges (A) und des linken Auges (B) unter blauem Licht als grüne Fluoreszenz dargestellt. Dies entspricht der im Abschnitt Eigenschaften und Vorgehen der einzelnen Farbstoffe behandelten Beobachtungsmethode der Fluorescein-Färbung.
Fluorescein ist der am häufigsten verwendete Vitalfarbstoff. Es wird häufig eingesetzt, weil es leicht erhältlich, sicher und wenig reizend ist. Fluorescein ist ein Farbstoff, der bei Anregung mit blauem Licht (maximale Absorptionswellenlänge 494 nm) grüne Fluoreszenz (521 nm) aussendet. Es kann schon mit einem Kobaltblaufilter beobachtet werden, aber Läsionen werden deutlicher dargestellt, wenn dem Beobachtungssystem ein Blaulicht-Sperrfilter hinzugefügt wird.
Färbeprinzip und Beobachtungspunkte:
Dringt in Bereiche ein und färbt sie, in denen die Tight Junctions zwischen Epithelzellen gestört sind
Die klarste Beobachtung ist mit der Kombination aus Kobaltblaufilter (Anregung 494 nm) und Blaulicht-Sperrfilter (Barrierfilter) möglich
Hauptziele der Färbung: punktförmige oberflächliche Keratopathie (SPK), Hornhauterosion, Hornhautulkus
Färbeverfahren (Mindestmengen-Methode):
Geben Sie 1–2 Tropfen Kochsalzlösung auf den Fluorescein-Teststreifen und schütteln Sie ihn gut, um überschüssige Feuchtigkeit zu entfernen
Berühren Sie mit dem feuchten Ende des Teststreifens leicht den Tränenmeniskus am unteren Lidrand, um zu färben
Achten Sie darauf, dass der Teststreifen den Augapfel nicht direkt berührt (um falsch negative Ergebnisse durch Überfärbung zu vermeiden)
Beobachten Sie Verteilung, Dichte und Form der SPK unter dem Kobaltblaufilter
QWas ist der Unterschied zwischen Rose Bengal und Lissamingrün?
A
Beide färben abgestorbene und degenerierte Zellen an, aber Lissamingrün reizt weniger und ist für Patienten angenehmer. Rose Bengal kann beim Eintropfen Schmerzen verursachen, sodass in manchen Fällen eine Lokalanästhesie nötig sein kann. Lissamingrün hat sich in den letzten Jahren als alternatives Farbstoff, das diese Nachteile ausgleicht, immer weiter verbreitet. Für die Beobachtung lässt sich mit einem roten Filter (560 nm oder mehr) die gefärbten Bereiche klarer erkennen.
Beispiel eines 5-Felder-Rasters der Hornhaut und der Fluorescein-Anfärbungsbeurteilung nach der NEI-Scoring-Methode
Kim S, Park D, Shin Y, et al. Deep learning-based fully automated grading system for dry eye disease severity. PLoS One. 2024;19(3):e0299776. Figure 1. PMID: 38483911; PMCID: PMC10939279; DOI: 10.1371/journal.pone.0299776. License: CC BY 4.0.
Beurteilungsraster, das die Hornhaut anhand des NEI-Scores in fünf Bereiche unterteilt — zentral, nasal oben, temporal oben, nasal unten und temporal unten — sowie ein Beispiel einer Beurteilung anhand echter Fluorescein-Anfärbungsfotos. Entspricht dem NEI/Industry-Workshop-Score, der im Abschnitt „Scoring-Methoden und Beurteilungskriterien“ des Haupttextes behandelt wird.
Zur Quantifizierung von Schäden des Hornhaut-Bindehaut-Epithels wurden mehrere Scoring-Systeme etabliert.
Bewerten Sie die drei Bereiche Hornhaut, nasale bulbäre Bindehaut und temporale bulbäre Bindehaut jeweils auf einer Skala von 0 bis 3 (0: keine Anfärbung, 1: wenige punktförmige Anfärbungen, 2: zur Verschmelzung neigende Anfärbung, 3: ausgedehnte Anfärbung). Eine Gesamtpunktzahl von 3,5 oder mehr gilt als auffällig und wird international als diagnostisches Kriterium für das Sjögren-Syndrom verwendet3).
Die drei Bereiche Hornhaut sowie bulbäre Bindehaut (nasal und temporal) werden jeweils mit 0 bis 4 Punkten (5 Stufen) bewertet, insgesamt mit 15 Punkten. Jede Stufe wird semiquantitativ durch Vergleich mit Tafelabbildungen beurteilt. Es wird zur Bewertung des Schweregrads des trockenen Auges und des Therapieerfolgs verwendet.
Die Hornhaut wird in fünf Zonen eingeteilt: zentral, superonasal, superotemporal, inferonasal und inferotemporal; jede Zone wird mit 0 bis 3 Punkten bewertet, insgesamt 15 Punkte. Es wird häufig in klinischer Forschung und multizentrischen Studien eingesetzt.
Kriterien für epitheliale Schäden an Hornhaut und Bindehaut in den Leitlinien zur Behandlung des trockenen Auges (Ausgabe 2006)1):
Fluorescein-Anfärbungsscore von 3 oder mehr
oder Rose-Bengal-Anfärbungsscore von 3 oder mehr
oder Lissamingrün-Anfärbungsscore von 3 oder mehr
In den Diagnosekriterien für das trockene Auge von 2016 ist der epitheliale Schaden nicht mehr Voraussetzung für die Diagnose, doch die Beurteilung des epithelialen Schadens spielt weiterhin eine wichtige Rolle bei der Einschätzung des Schweregrads des trockenen Auges und des Therapieerfolgs1).
4. Klinische Bedeutung und das Lesen von Anfärbemustern
Die punktförmige oberflächliche Keratopathie (superficial punctate keratopathy: SPK) ist der häufigste Augenbefund bei Patienten, die über ein Fremdkörpergefühl klagen. SPK ist das „Ergebnis“ einer Schädigung des Hornhautepithels durch eine zugrunde liegende Ursache und keine Diagnose der Ursache. Die Fluoreszein-Vitalfärbung ist für den Nachweis von SPK und das Erkennen ihres Verteilungsmusters unverzichtbar und kann feine SPK sichtbar machen, die mit der Spaltlampenmikroskopie allein nicht erkennbar sind.
Wenn SPK festgestellt wird, ist es wichtig, anhand des Verteilungsmusters aktiv auf die Ursache zu schließen.
Bei der medikamenteninduzierten toxischen Keratopathie ist die Schädigung des konjunktivalen Epithels geringer als die des Hornhautepithels. Dieser Befund lässt sich mit der Fluoreszeinfärbung deutlich bestätigen und ist hilfreich bei der Abgrenzung zu anderen ursächlichen Erkrankungen. Wenn eine diffuse SPK über die gesamte Hornhaut vorliegt, sollte der Einfluss der verwendeten Augentropfen (Konservierungsmittel, hochkonzentrierte Medikamente, Aminoglykosid-Antibiotika usw.) berücksichtigt werden2).
Bei infektiöser Keratitis ermöglicht die Fluoreszeinfärbung eine objektive Beurteilung von Form, Ausdehnung und Tiefe (beurteilt anhand der Intensität der Färbung) von Defekten des Hornhautepithels. Ausmaß und Form des Ulkus dienen als Indikatoren für die Wahl der Therapie und für die Verlaufskontrolle2). Außerdem können antibakterielle Augentropfen (hochkonzentrierte Präparate, Aminoglykoside) leicht eine Toxizität des Hornhautepithels verursachen, daher ist es wichtig, während der Behandlung mit Vitalfärbung zu überprüfen, ob sich die epithelialen Schäden verschlechtern2).
QWas lässt sich aus dem Färbemuster erkennen?
A
Anhand des Verteilungsmusters von SPK lässt sich die zugrunde liegende Erkrankung vermuten. SPK, das sich auf den unteren Hornhautbereich konzentriert, spricht für trockenes Auge oder Entropium, oberes SPK für SLK oder Trachom, und diffus über die gesamte Hornhaut verteiltes SPK für Medikamententoxizität oder virale Keratitis. SPK in der 3- bis 9-Uhr-Position ist typisch für Kontaktlinsenschäden, und SPK im zentralen Hornhautbereich ist charakteristisch für Lagophthalmus und neuroparalytische Keratitis. SPK ist letztlich nur das “Ergebnis” einer epithelialen Schädigung; das Verteilungsmuster als Hinweis für die Ursachensuche zu nutzen, ist der entscheidende Punkt der Versorgung.
5. Verwandte Behandlungsleitlinien (Vorgehen je nach Ursache der epithelialen Schädigung)
Die Ursache wird anhand der durch Vitalfärbung bestätigten Verteilung und Ausprägung der epithelialen Schädigung identifiziert, und die Behandlung entsprechend der Ursache gewählt.
Die Standardtherapie auf Grundlage der Leitlinie zum Trockenauge (Ausgabe 2016) lautet wie folgt1).
3% Diquafosol-Natrium-Augentropfen (Diquas®): 6-mal täglich eintropfen. Sie haben vielfältige Wirkungen: Sie fördern die wässrige Sekretion, fördern die Sekretion von sekretorischem Mucin (MUC5AC) und erhöhen die Expression von Membranmuzinen (MUC1, MUC4, MUC16). Sie verbessern die Stabilität des Tränenfilms, die korneokonjunktivale Epithelschädigung und subjektive Beschwerden
2% Rebamipid-Augentropfen als Suspension (Mucosta®): 4-mal täglich eintropfen. Sie erhöhen die Zahl der Becherzellen und fördern dadurch die Sekretion von sekretorischem Mucin sowie die Expression von Membranmuzinen. Sie verbessern die korneokonjunktivale Epithelschädigung und subjektive Beschwerden
0,1% Hyaluronsäure-Augentropfen: verbessern die korneokonjunktivale Epithelschädigung und subjektive Beschwerden. Kann bei vielen Subtypen verwendet werden
Einsetzen eines Punctum-Plugs: hemmt den Tränenabfluss. Bei dem area-break-Muster (Tränendefizit-Typ) ist es die erste Wahl
Auf Grundlage der Leitlinie zur infektiösen Keratitis (3. Auflage) wird nach Identifizierung des Erregers das geeignete antimikrobielle Mittel ausgewählt2).
Initiale Behandlung der bakteriellen Keratitis: Breitband-Fluorchinolon-Augentropfen wie Levofloxacin 1,5%
Beachten Sie, dass hochkonzentrierte Augentropfen und Aminoglykoside leicht eine Hornhautepithelschädigung verursachen können2).
Überprüfen Sie während der Behandlung regelmäßig mit Vitalfärbung die Besserung der Epithelschädigung
Fluorescein ist ein fluoreszierender Farbstoff, der kobaltblaues Licht (494 nm) absorbiert und grüne Fluoreszenz (521 nm) aussendet. Das Prinzip der Fluoreszenz ist die Photolumineszenz, bei der aufgenommene Energie wieder als Licht abgegeben wird.
Ein Filter, der blaues Licht blockiert (Barrierfilter), blockiert das Anregungslicht (etwa 494 nm) und lässt nur die Fluoreszenzwellenlänge (521 nm) durch. Dadurch wird das Hintergrundlicht ausgeblendet und die Fluorescein-Färbung von SPK lässt sich besser erkennen. Mit einem solchen Filter am Spaltlampenmikroskop ist die Nachweisempfindlichkeit für SPK deutlich höher als bei Verwendung des Kobaltblaufilters allein.
Wenn die Tight Junctions des Hornhautepithels zerstört sind, dringt Fluorescein in die Zwischenzellräume ein und fluoresziert. Bereiche mit intakten Tight Junctions lassen kein Fluorescein eindringen und färben sich nicht.
Rose Bengal färbt gezielt Zellen, die nicht durch Muzin geschützt sind. Gesunde Zellen der Augenoberfläche sind von einer Muzinschicht (vor allem sekretorisches Muzin MUC5AC) bedeckt, die eine Rose-Bengal-Färbung verhindert. Tote und entartete Zellen verlieren diesen Muzinschutz und werden daher gefärbt. Anders als Fluorescein färbt es die toten Zellen selbst und kann daher als Hinweis auf die Zellvitalität der Augenoberfläche gelten.
Lissamingrün färbt tote und entartete Zellen nach einem ähnlichen Mechanismus wie Rose Bengal. Die Färbung ist bei der Betrachtung mit einem Rotfilter (560 nm oder höher) am deutlichsten zu sehen. Man nimmt an, dass es die Augenoberfläche weniger reizt als Rose Bengal, weil es unterschiedlich in lebendes Gewebe eindringt.
Der Blaufilter ist bei der Fluorescein-Beobachtung besonders wichtig. Auch mit Kobaltblau-Licht ohne Filter sind Läsionen sichtbar, aber durch einen zusätzlichen Blaufilter:
wird Hintergrundlicht (gestreutes Kobaltblau-Licht) entfernt
erreichen nur die Fluoreszenzwellenlängen die Netzhaut, was den Kontrast deutlich verbessert
werden feine SPK leichter erkannt
verbessert sich auch die Genauigkeit der BUT-Messung (Beurteilung des Tränenfilmabbruchs)
Nichtinvasive Kartierung der Hornhautepitheldicke mit dem vorderen Augenabschnitts-OCT: Die tomografische Kartierung der Hornhautepitheldicke mithilfe der optischen Kohärenztomografie des vorderen Augenabschnitts (AS-OCT) entwickelt sich weiter. Damit könnte sich die Ausdünnung und unregelmäßige Verteilung des Hornhautepithels ohne Vitalfärbung beurteilen lassen, und es wird als Ergänzung oder Alternative zur Vitalfärbung geforscht4)
Objektivierung von Färbewerten durch automatische Bildanalyse: Die Färbe-Bewertung (Oxford-Score, van-Bijsterveld-Score usw.) hängt derzeit vom subjektiven Urteil des Beobachters ab. Die Entwicklung automatischer Bewertungssysteme mit KI und maschinellem Lernen schreitet voran, und eine bessere Reproduzierbarkeit und Objektivität werden erwartet5)
Forschung zur Präzisierung von Sensitivität und Spezifität der Färbung: Es laufen Studien zur Bewertung von Sensitivität und Spezifität der einzelnen Farbstoffe nach Subtyp des trockenen Auges und Krankheitsstadium. Insbesondere wird die Gleichwertigkeit und Austauschbarkeit von Lissamingrün und Rose Bengal untersucht
Kombination mit der Konfokalmikroskopie: Durch die Kombination der In-vivo-Konfokalmikroskopie (IVCM) mit der Vitalfärbung wird eine Beurteilung der epithelialen Schädigung auf Zellebene zunehmend möglich. Auch die Anwendung zur Identifizierung von Erregern bei infektiöser Keratitis wird untersucht4)
Vitali C, Bombardieri S, Jonsson R, Moutsopoulos HM, Alexander EL, Carsons SE, Daniels TE, Fox PC, Fox RI, Kassan SS, Pillemer SR, Talal N, Weisman MH, European Study Group on Classification Criteria for Sjögren’s Syndrome. Classification criteria for Sjögren’s syndrome: a revised version of the European criteria proposed by the American-European Consensus Group. Ann Rheum Dis. 2002;61(6):554-558. doi:10.1136/ard.61.6.554. PMID:12006334; PMCID:PMC1754137.
Palakkamanil MM, Nichols KK. Comparison of lissamine green and rose bengal staining. Optom Vis Sci. 2015;92(5):566-571.
Bron AJ, Evans VE, Smith JA. Grading of corneal and conjunctival staining in the context of other dry eye tests. Cornea. 2003;22(7):640-50. doi:10.1097/00003226-200310000-00008. PMID:14508260.
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