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Sonstiges

Vitalfärbungsuntersuchung von Hornhaut und Bindehaut (Fluorescein, Rose Bengale usw.) (Ocular Surface Vital Staining)

1. Was ist die Vitalfärbung von Hornhaut und Bindehaut?

Abschnitt betitelt „1. Was ist die Vitalfärbung von Hornhaut und Bindehaut?“

Die Vitalfärbung von Hornhaut und Bindehaut (ocular surface vital staining) ist eine grundlegende augenärztliche Untersuchung, bei der Schäden des Hornhaut- und Bindehautepithels der Augenoberfläche mit Farbstoffen sichtbar gemacht und Verteilung sowie Ausmaß der Schäden quantitativ erfasst werden.

Die wichtigsten verwendeten Farbstoffe sind die folgenden drei.

  • Fluorescein (fluorescein): ein fluoreszierender Farbstoff, der bei Anregung mit blauem Licht grüne Fluoreszenz aussendet. Er wird am häufigsten verwendet
  • Rose Bengal (rose bengal): ein Farbstoff, der tote Zellen, degenerierte Zellen und Schleim rot färbt
  • Lissamingrün (lissamine green): ein Ersatzfarbstoff mit ähnlichen Färbeeigenschaften wie Rose Bengal, aber weniger reizend

Die wichtigsten Ziele dieser Untersuchung sind:

  • Erkennen und Quantifizieren von epithelialen Schäden an Hornhaut und Bindehaut beim trockenen Auge
  • Beurteilung des Ausmaßes von Infiltration und Hornhautulzera bei infektiöser Keratitis2)
  • Beurteilung epithelialer Schäden durch Arzneimitteltoxizität, Kontaktlinsenschäden, Lidfehlbildungen und ähnliche Ursachen
  • Unterstützung der Diagnose des Sjögren-Syndroms (van-Bijsterveld-Scoring)3)

In der klinischen Leitlinie zum trockenen Auge von 2016 wird die Bewertung, die die Messung der Tränenfilmaufrisszeit (BUT) mit der Fluorescein-Färbung kombiniert, als Kernbestandteil der Diagnose des trockenen Auges empfohlen1). In der Ausgabe von 2006 waren epitheliale Schäden an Hornhaut und Bindehaut für die Diagnose des trockenen Auges zwingend erforderlich, aber in der Ausgabe von 2016 sind epitheliale Schäden keine Pflicht mehr; die Diagnose stützt sich nun auf eine verkürzte BUT und subjektive Symptome. Dennoch bleibt die Vitalfärbung eine wichtige Methode, um Ausmaß und Muster epithelialer Schäden objektiv zu dokumentieren1).

Auch in der Erstbeurteilung der infektiösen Keratitis ist die Fluorescein-Färbung ein Standardverfahren, um Ausdehnung und Form von epithelialen Hornhautdefekten zu erfassen; sie ist in die Versorgung nach der klinischen Leitlinie zur infektiösen Keratitis (3. Auflage)2) eingebunden.

Q Was kann eine Vitalfärbung zeigen?
A

Verteilung und Ausmaß der epithelialen Schäden an Hornhaut und Bindehaut werden sichtbar. Mit Fluorescein erscheinen punktförmige oberflächliche Keratopathie (SPK) sowie Erosionen und Ulzera des Hornhautepithels als Fluoreszenz, und mit Rose Bengal oder Lissamingrün werden tote und degenerierte Zellen angefärbt. Das Verteilungsmuster der SPK kann die zugrunde liegende Ursache vermuten lassen (trockenes Auge, Arzneimitteltoxizität, kontaktlinsenbedingte Schäden usw.). Mit Scoring-Verfahren lässt sich der Schaden auch quantifizieren und der Behandlungserfolg im Verlauf verfolgen.

2. Eigenschaften und Vorgehen der einzelnen Farbstoffe

Abschnitt betitelt „2. Eigenschaften und Vorgehen der einzelnen Farbstoffe“
Epitheliale Hornhautläsionen beider Augen bei Fluorescein-Färbung (Spaltlampenbefund)
Epitheliale Hornhautläsionen beider Augen bei Fluorescein-Färbung (Spaltlampenbefund)
Tagmouti A, Lazaar H, Benchekroun M, Boutaj T, Benchekroun S, Amazouzi A, et al. Association Between Thygeson Superficial Punctate Keratitis and Celiac Disease. Cureus. 2025;17(3):e80252. doi:10.7759/cureus.80252. PMID:40196095; PMCID:PMC11975144. Figure 2. PMID: 40196095; PMCID: PMC11975144; DOI: 10.7759/cureus.80252. License: CC BY.
Bei der Fluorescein-Färbung an der Spaltlampe werden die epithelialen Hornhautläsionen des rechten Auges (A) und des linken Auges (B) unter blauem Licht als grüne Fluoreszenz dargestellt. Dies entspricht der im Abschnitt Eigenschaften und Vorgehen der einzelnen Farbstoffe behandelten Beobachtungsmethode der Fluorescein-Färbung.

Fluorescein ist der am häufigsten verwendete Vitalfarbstoff. Es wird häufig eingesetzt, weil es leicht erhältlich, sicher und wenig reizend ist. Fluorescein ist ein Farbstoff, der bei Anregung mit blauem Licht (maximale Absorptionswellenlänge 494 nm) grüne Fluoreszenz (521 nm) aussendet. Es kann schon mit einem Kobaltblaufilter beobachtet werden, aber Läsionen werden deutlicher dargestellt, wenn dem Beobachtungssystem ein Blaulicht-Sperrfilter hinzugefügt wird.

Färbeprinzip und Beobachtungspunkte:

  • Dringt in Bereiche ein und färbt sie, in denen die Tight Junctions zwischen Epithelzellen gestört sind
  • Die klarste Beobachtung ist mit der Kombination aus Kobaltblaufilter (Anregung 494 nm) und Blaulicht-Sperrfilter (Barrierfilter) möglich
  • Hauptziele der Färbung: punktförmige oberflächliche Keratopathie (SPK), Hornhauterosion, Hornhautulkus

Färbeverfahren (Mindestmengen-Methode):

  1. Geben Sie 1–2 Tropfen Kochsalzlösung auf den Fluorescein-Teststreifen und schütteln Sie ihn gut, um überschüssige Feuchtigkeit zu entfernen
  2. Berühren Sie mit dem feuchten Ende des Teststreifens leicht den Tränenmeniskus am unteren Lidrand, um zu färben
  3. Achten Sie darauf, dass der Teststreifen den Augapfel nicht direkt berührt (um falsch negative Ergebnisse durch Überfärbung zu vermeiden)
  4. Beobachten Sie Verteilung, Dichte und Form der SPK unter dem Kobaltblaufilter

Rose Bengal färbt die Augenoberfläche auf einem anderen Mechanismus als Fluorescein.

Färbeeigenschaften:

  • Färbt tote Zellen, degenerierte Zellen und Bereiche, in denen der Mucinschutz verloren gegangen ist, rot
  • Die Oberfläche normaler Zellen ist von sekretiertem Mucin bedeckt, das das Eindringen von Rose Bengal verhindert
  • Unter weißem Licht oder mit einem Rotfilter beobachten
  • Sie ist reizender als Fluorescein und kann beim Eintropfen Schmerzen verursachen

van-Bijsterveld-Score (für Rose Bengal und Lissamine Green):

  • Die drei Bereiche – Hornhaut, nasale bulbäre Bindehaut und temporale bulbäre Bindehaut – werden jeweils mit 0 bis 3 Punkten bewertet
  • Eine Gesamtpunktzahl von 3,5 oder mehr ist positiv (wird in den Diagnosekriterien für das Sjögren-Syndrom verwendet)3)

Lissamingrün ist ein alternatives Farbstoff mit ähnlichen Färbeeigenschaften wie Rose Bengal, aber es reizt die Patienten weniger.

Färbeeigenschaften:

  • Färbt abgestorbene und degenerierte Zellen grün (Mechanismus wie bei Rose Bengal)
  • Kann mit einem Rotfilter (560 nm oder höher) klar beobachtet werden
  • Bei der Augentropfenanwendung reizt es weniger als Rose Bengal und ist für Patienten angenehmer
  • In den letzten Jahren nimmt die klinische Anwendung als Alternative zu Rose Bengal zu

Fluorescein (fluorescein)

Absorptionswellenlänge: 494 nm (blaues Licht) → Fluoreszenz 521 nm (grün)

Färbeziel: Bereiche, in denen die Tight Junctions zwischen Epithelzellen unterbrochen sind (Interzellularräume)

Hauptanwendungen: Nachweis von SPK, Messung von BUT, Beurteilung von Hornhautulzera/-erosionen

Reizung: gering (am einfachsten anzuwenden)

Beobachtungsfilter: Kobaltblau + blau blockierender (Barrier-)Filter

Rose Bengal

Färbefarbe: rot

Färbeziel: tote Zellen, degenerierte Zellen, Bereiche ohne Muzinschutz

Haupteinsatz: Diagnose des Sjögren-Syndroms (van-Bijsterveld-Score), Beurteilung des trockenen Auges

Reizung: stark (Schmerzen beim Eintropfen)

Beobachtungsfilter: weißes Licht oder Rotfilter

Lissamingrün

Färbefarbe: grün

Färbeziel: tote Zellen, degenerierte Zellen (gleicher Mechanismus wie bei Rose Bengal)

Haupteinsatz: Alternative zu Rose Bengal. Beurteilung des trockenen Auges und des Sjögren-Syndroms

Reizung: gering (geringere Belastung für Patienten als Rose Bengal)

Beobachtungsfilter: mit Rotfilter (560 nm oder höher) klarer

EigenschaftenFluoresceinRose BengalLissamingrün
FärbefarbeGrüne FluoreszenzRotGrün
FärbezielInterzelluläre Räume (Bereiche mit aufgebrochenen Tight Junctions)Abgestorbene Zellen, degenerierte Zellen und mukinfreie BereicheAbgestorbene Zellen und degenerierte Zellen
ReizungGeringHoch (mit Schmerzen)Gering
BeobachtungsfilterKobaltblau + blau freiWeißlicht · RotfilterRotfilter (560 nm oder höher)
HauptanwendungenSPK · BUT-Messung · HornhautulkusSjögren-Diagnose · trockenes AugeAlternative zu Rose Bengal
Repräsentativer ScoreOxford- und NEI-Scorevan-Bijsterveld-Scorevan-Bijsterveld-Score
Q Was ist der Unterschied zwischen Rose Bengal und Lissamingrün?
A

Beide färben abgestorbene und degenerierte Zellen an, aber Lissamingrün reizt weniger und ist für Patienten angenehmer. Rose Bengal kann beim Eintropfen Schmerzen verursachen, sodass in manchen Fällen eine Lokalanästhesie nötig sein kann. Lissamingrün hat sich in den letzten Jahren als alternatives Farbstoff, das diese Nachteile ausgleicht, immer weiter verbreitet. Für die Beobachtung lässt sich mit einem roten Filter (560 nm oder mehr) die gefärbten Bereiche klarer erkennen.

Beispiel eines 5-Felder-Rasters der Hornhaut und der Fluorescein-Anfärbungsbeurteilung nach der NEI-Scoring-Methode
Beispiel eines 5-Felder-Rasters der Hornhaut und der Fluorescein-Anfärbungsbeurteilung nach der NEI-Scoring-Methode
Kim S, Park D, Shin Y, et al. Deep learning-based fully automated grading system for dry eye disease severity. PLoS One. 2024;19(3):e0299776. Figure 1. PMID: 38483911; PMCID: PMC10939279; DOI: 10.1371/journal.pone.0299776. License: CC BY 4.0.
Beurteilungsraster, das die Hornhaut anhand des NEI-Scores in fünf Bereiche unterteilt — zentral, nasal oben, temporal oben, nasal unten und temporal unten — sowie ein Beispiel einer Beurteilung anhand echter Fluorescein-Anfärbungsfotos. Entspricht dem NEI/Industry-Workshop-Score, der im Abschnitt „Scoring-Methoden und Beurteilungskriterien“ des Haupttextes behandelt wird.

Zur Quantifizierung von Schäden des Hornhaut-Bindehaut-Epithels wurden mehrere Scoring-Systeme etabliert.

Scoring-MethodeBewertungsbereichScore-BereichGesamtHauptanwendung
van-Bijsterveld-ScoreHornhaut, nasale bulbäre Bindehaut, temporale bulbäre Bindehaut (3 Bereiche)je 0–3 Punktemaximal 9 Punkte (auffällig ab 3,5 Punkten)diagnostische Kriterien des Sjögren-Syndroms
Oxford-ScoreHornhaut, bulbäre Bindehaut (nasal und temporal) (3 Bereiche)je 0–4 Punkte (5 Stufen)maximal 15 PunkteBeurteilung der Schwere des trockenen Auges
NEI/Industry-Workshop-ScoreHornhaut (5 Abschnitte)je 0–3 Punktemaximal 15 Punkteklinische Forschung zum trockenen Auge

Bewerten Sie die drei Bereiche Hornhaut, nasale bulbäre Bindehaut und temporale bulbäre Bindehaut jeweils auf einer Skala von 0 bis 3 (0: keine Anfärbung, 1: wenige punktförmige Anfärbungen, 2: zur Verschmelzung neigende Anfärbung, 3: ausgedehnte Anfärbung). Eine Gesamtpunktzahl von 3,5 oder mehr gilt als auffällig und wird international als diagnostisches Kriterium für das Sjögren-Syndrom verwendet3).

Die drei Bereiche Hornhaut sowie bulbäre Bindehaut (nasal und temporal) werden jeweils mit 0 bis 4 Punkten (5 Stufen) bewertet, insgesamt mit 15 Punkten. Jede Stufe wird semiquantitativ durch Vergleich mit Tafelabbildungen beurteilt. Es wird zur Bewertung des Schweregrads des trockenen Auges und des Therapieerfolgs verwendet.

Die Hornhaut wird in fünf Zonen eingeteilt: zentral, superonasal, superotemporal, inferonasal und inferotemporal; jede Zone wird mit 0 bis 3 Punkten bewertet, insgesamt 15 Punkte. Es wird häufig in klinischer Forschung und multizentrischen Studien eingesetzt.

Kriterien für epitheliale Schäden an Hornhaut und Bindehaut in den Leitlinien zur Behandlung des trockenen Auges (Ausgabe 2006)1)

  • Fluorescein-Anfärbungsscore von 3 oder mehr
  • oder Rose-Bengal-Anfärbungsscore von 3 oder mehr
  • oder Lissamingrün-Anfärbungsscore von 3 oder mehr

In den Diagnosekriterien für das trockene Auge von 2016 ist der epitheliale Schaden nicht mehr Voraussetzung für die Diagnose, doch die Beurteilung des epithelialen Schadens spielt weiterhin eine wichtige Rolle bei der Einschätzung des Schweregrads des trockenen Auges und des Therapieerfolgs1).

4. Klinische Bedeutung und das Lesen von Anfärbemustern

Abschnitt betitelt „4. Klinische Bedeutung und das Lesen von Anfärbemustern“

Beurteilung der punktförmigen oberflächlichen Keratopathie (SPK)

Abschnitt betitelt „Beurteilung der punktförmigen oberflächlichen Keratopathie (SPK)“

Die punktförmige oberflächliche Keratopathie (superficial punctate keratopathy: SPK) ist der häufigste Augenbefund bei Patienten, die über ein Fremdkörpergefühl klagen. SPK ist das „Ergebnis“ einer Schädigung des Hornhautepithels durch eine zugrunde liegende Ursache und keine Diagnose der Ursache. Die Fluoreszein-Vitalfärbung ist für den Nachweis von SPK und das Erkennen ihres Verteilungsmusters unverzichtbar und kann feine SPK sichtbar machen, die mit der Spaltlampenmikroskopie allein nicht erkennbar sind.

Wenn SPK festgestellt wird, ist es wichtig, anhand des Verteilungsmusters aktiv auf die Ursache zu schließen.

VerteilungsmusterHauptursache
Im unteren Drittel der Hornhaut konzentriertTrockenes Auge (Tränenmangeltyp), Entropium
Im oberen Drittel der Hornhaut konzentriertSuperior limbische Keratokonjunktivitis (SLK), Trachom
Ganze Hornhaut (diffus)Medikamenteninduzierte toxische Keratopathie, virale Keratitis
3- bis 9-Uhr-Richtung (horizontales Band)Kontaktlinse (3-9-Uhr-Färbung)
Zentrale HornhautLagoftalmus, neuroparalytische Keratitis

Exogenes SPK:

  • Trauma (Hornhautfremdkörper, Bindehautfremdkörper)
  • Chemische Verletzung (Spritzer von Reinigungsmitteln oder Arzneilösungen)
  • UV-Exposition (UV-Keratitis, Schneeblindheit, elektrische Ophthalmie)
  • Kontaktlinsenbedingt (übermäßiges Tragen, 3-9-Uhr-Färbung)
  • Durch Augentropfen verursachte medikamenteninduzierte Hornhautschädigung

Endogenes SPK:

Charakteristisches Färbemuster der medikamenteninduzierten toxischen Keratopathie

Abschnitt betitelt „Charakteristisches Färbemuster der medikamenteninduzierten toxischen Keratopathie“

Bei der medikamenteninduzierten toxischen Keratopathie ist die Schädigung des konjunktivalen Epithels geringer als die des Hornhautepithels. Dieser Befund lässt sich mit der Fluoreszeinfärbung deutlich bestätigen und ist hilfreich bei der Abgrenzung zu anderen ursächlichen Erkrankungen. Wenn eine diffuse SPK über die gesamte Hornhaut vorliegt, sollte der Einfluss der verwendeten Augentropfen (Konservierungsmittel, hochkonzentrierte Medikamente, Aminoglykosid-Antibiotika usw.) berücksichtigt werden2).

Bei infektiöser Keratitis ermöglicht die Fluoreszeinfärbung eine objektive Beurteilung von Form, Ausdehnung und Tiefe (beurteilt anhand der Intensität der Färbung) von Defekten des Hornhautepithels. Ausmaß und Form des Ulkus dienen als Indikatoren für die Wahl der Therapie und für die Verlaufskontrolle2). Außerdem können antibakterielle Augentropfen (hochkonzentrierte Präparate, Aminoglykoside) leicht eine Toxizität des Hornhautepithels verursachen, daher ist es wichtig, während der Behandlung mit Vitalfärbung zu überprüfen, ob sich die epithelialen Schäden verschlechtern2).

Q Was lässt sich aus dem Färbemuster erkennen?
A

Anhand des Verteilungsmusters von SPK lässt sich die zugrunde liegende Erkrankung vermuten. SPK, das sich auf den unteren Hornhautbereich konzentriert, spricht für trockenes Auge oder Entropium, oberes SPK für SLK oder Trachom, und diffus über die gesamte Hornhaut verteiltes SPK für Medikamententoxizität oder virale Keratitis. SPK in der 3- bis 9-Uhr-Position ist typisch für Kontaktlinsenschäden, und SPK im zentralen Hornhautbereich ist charakteristisch für Lagophthalmus und neuroparalytische Keratitis. SPK ist letztlich nur das “Ergebnis” einer epithelialen Schädigung; das Verteilungsmuster als Hinweis für die Ursachensuche zu nutzen, ist der entscheidende Punkt der Versorgung.

5. Verwandte Behandlungsleitlinien (Vorgehen je nach Ursache der epithelialen Schädigung)

Abschnitt betitelt „5. Verwandte Behandlungsleitlinien (Vorgehen je nach Ursache der epithelialen Schädigung)“

Die Ursache wird anhand der durch Vitalfärbung bestätigten Verteilung und Ausprägung der epithelialen Schädigung identifiziert, und die Behandlung entsprechend der Ursache gewählt.

Die Standardtherapie auf Grundlage der Leitlinie zum Trockenauge (Ausgabe 2016) lautet wie folgt1).

  • 3% Diquafosol-Natrium-Augentropfen (Diquas®): 6-mal täglich eintropfen. Sie haben vielfältige Wirkungen: Sie fördern die wässrige Sekretion, fördern die Sekretion von sekretorischem Mucin (MUC5AC) und erhöhen die Expression von Membranmuzinen (MUC1, MUC4, MUC16). Sie verbessern die Stabilität des Tränenfilms, die korneokonjunktivale Epithelschädigung und subjektive Beschwerden
  • 2% Rebamipid-Augentropfen als Suspension (Mucosta®): 4-mal täglich eintropfen. Sie erhöhen die Zahl der Becherzellen und fördern dadurch die Sekretion von sekretorischem Mucin sowie die Expression von Membranmuzinen. Sie verbessern die korneokonjunktivale Epithelschädigung und subjektive Beschwerden
  • 0,1% Hyaluronsäure-Augentropfen: verbessern die korneokonjunktivale Epithelschädigung und subjektive Beschwerden. Kann bei vielen Subtypen verwendet werden
  • Einsetzen eines Punctum-Plugs: hemmt den Tränenabfluss. Bei dem area-break-Muster (Tränendefizit-Typ) ist es die erste Wahl

Auf Grundlage der Leitlinie zur infektiösen Keratitis (3. Auflage) wird nach Identifizierung des Erregers das geeignete antimikrobielle Mittel ausgewählt2).

  • Initiale Behandlung der bakteriellen Keratitis: Breitband-Fluorchinolon-Augentropfen wie Levofloxacin 1,5%
  • Beachten Sie, dass hochkonzentrierte Augentropfen und Aminoglykoside leicht eine Hornhautepithelschädigung verursachen können2).
  • Überprüfen Sie während der Behandlung regelmäßig mit Vitalfärbung die Besserung der Epithelschädigung
  • Das Absetzen oder Umstellen der als Ursache vermuteten Augentropfen (z. B. konservierungsmittelhaltige Präparate) ist die Grundmaßnahme
  • Ein Wechsel zu konservierungsmittelfreien Präparaten sollte erwogen werden
  • Nach dem Absetzen die Besserung der epithelialen Störung mit Vitalfärbung bestätigen
  • Das Tragen von Kontaktlinsen vorübergehend unterbrechen
  • Linsenmaterial, Wassergehalt und Tragedauer überdenken
  • Bei trockenen Augen die Tropfentherapie parallel durchführen

6. Messprinzipien (optische Prinzipien und Färbemechanismen)

Abschnitt betitelt „6. Messprinzipien (optische Prinzipien und Färbemechanismen)“

Fluorescein ist ein fluoreszierender Farbstoff, der kobaltblaues Licht (494 nm) absorbiert und grüne Fluoreszenz (521 nm) aussendet. Das Prinzip der Fluoreszenz ist die Photolumineszenz, bei der aufgenommene Energie wieder als Licht abgegeben wird.

Ein Filter, der blaues Licht blockiert (Barrierfilter), blockiert das Anregungslicht (etwa 494 nm) und lässt nur die Fluoreszenzwellenlänge (521 nm) durch. Dadurch wird das Hintergrundlicht ausgeblendet und die Fluorescein-Färbung von SPK lässt sich besser erkennen. Mit einem solchen Filter am Spaltlampenmikroskop ist die Nachweisempfindlichkeit für SPK deutlich höher als bei Verwendung des Kobaltblaufilters allein.

Wenn die Tight Junctions des Hornhautepithels zerstört sind, dringt Fluorescein in die Zwischenzellräume ein und fluoresziert. Bereiche mit intakten Tight Junctions lassen kein Fluorescein eindringen und färben sich nicht.

Rose Bengal färbt gezielt Zellen, die nicht durch Muzin geschützt sind. Gesunde Zellen der Augenoberfläche sind von einer Muzinschicht (vor allem sekretorisches Muzin MUC5AC) bedeckt, die eine Rose-Bengal-Färbung verhindert. Tote und entartete Zellen verlieren diesen Muzinschutz und werden daher gefärbt. Anders als Fluorescein färbt es die toten Zellen selbst und kann daher als Hinweis auf die Zellvitalität der Augenoberfläche gelten.

Lissamingrün färbt tote und entartete Zellen nach einem ähnlichen Mechanismus wie Rose Bengal. Die Färbung ist bei der Betrachtung mit einem Rotfilter (560 nm oder höher) am deutlichsten zu sehen. Man nimmt an, dass es die Augenoberfläche weniger reizt als Rose Bengal, weil es unterschiedlich in lebendes Gewebe eindringt.

Der Blaufilter ist bei der Fluorescein-Beobachtung besonders wichtig. Auch mit Kobaltblau-Licht ohne Filter sind Läsionen sichtbar, aber durch einen zusätzlichen Blaufilter:

  • wird Hintergrundlicht (gestreutes Kobaltblau-Licht) entfernt
  • erreichen nur die Fluoreszenzwellenlängen die Netzhaut, was den Kontrast deutlich verbessert
  • werden feine SPK leichter erkannt
  • verbessert sich auch die Genauigkeit der BUT-Messung (Beurteilung des Tränenfilmabbruchs)
  • Nichtinvasive Kartierung der Hornhautepitheldicke mit dem vorderen Augenabschnitts-OCT: Die tomografische Kartierung der Hornhautepitheldicke mithilfe der optischen Kohärenztomografie des vorderen Augenabschnitts (AS-OCT) entwickelt sich weiter. Damit könnte sich die Ausdünnung und unregelmäßige Verteilung des Hornhautepithels ohne Vitalfärbung beurteilen lassen, und es wird als Ergänzung oder Alternative zur Vitalfärbung geforscht4)
  • Objektivierung von Färbewerten durch automatische Bildanalyse: Die Färbe-Bewertung (Oxford-Score, van-Bijsterveld-Score usw.) hängt derzeit vom subjektiven Urteil des Beobachters ab. Die Entwicklung automatischer Bewertungssysteme mit KI und maschinellem Lernen schreitet voran, und eine bessere Reproduzierbarkeit und Objektivität werden erwartet5)
  • Forschung zur Präzisierung von Sensitivität und Spezifität der Färbung: Es laufen Studien zur Bewertung von Sensitivität und Spezifität der einzelnen Farbstoffe nach Subtyp des trockenen Auges und Krankheitsstadium. Insbesondere wird die Gleichwertigkeit und Austauschbarkeit von Lissamingrün und Rose Bengal untersucht
  • Kombination mit der Konfokalmikroskopie: Durch die Kombination der In-vivo-Konfokalmikroskopie (IVCM) mit der Vitalfärbung wird eine Beurteilung der epithelialen Schädigung auf Zellebene zunehmend möglich. Auch die Anwendung zur Identifizierung von Erregern bei infektiöser Keratitis wird untersucht4)
  1. ドライアイ研究会診療ガイドライン作成委員会(島﨑潤, 横井則彦, 渡辺仁, 他). ドライアイ診療ガイドライン. 日本眼科学会雑誌. 2019;123(5):489-592.
  2. 日本眼感染症学会感染性角膜炎診療ガイドライン第3版作成委員会. 感染性角膜炎診療ガイドライン(第3版). 日眼会誌. 2023;127(10):859-895.
  3. Vitali C, Bombardieri S, Jonsson R, Moutsopoulos HM, Alexander EL, Carsons SE, Daniels TE, Fox PC, Fox RI, Kassan SS, Pillemer SR, Talal N, Weisman MH, European Study Group on Classification Criteria for Sjögren’s Syndrome. Classification criteria for Sjögren’s syndrome: a revised version of the European criteria proposed by the American-European Consensus Group. Ann Rheum Dis. 2002;61(6):554-558. doi:10.1136/ard.61.6.554. PMID:12006334; PMCID:PMC1754137.
  4. Palakkamanil MM, Nichols KK. Comparison of lissamine green and rose bengal staining. Optom Vis Sci. 2015;92(5):566-571.
  5. Bron AJ, Evans VE, Smith JA. Grading of corneal and conjunctival staining in the context of other dry eye tests. Cornea. 2003;22(7):640-50. doi:10.1097/00003226-200310000-00008. PMID:14508260.

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