Pewarna Oftalmik

Poin Penting Sekilas

Intisari Artikel Ini

• Pewarna oftalmologi adalah alat penting yang digunakan secara luas mulai dari diagnosis rawat jalan hingga bantuan operasi.
• Fluoresein sangat penting untuk deteksi kerusakan epitel kornea dan konjungtiva, evaluasi lapisan air mata, pengukuran tekanan intraokular, dan angiografi fluoresein.
• Hijau lissamin unggul dalam menggambarkan kerusakan epitel konjungtiva dan semakin populer sebagai pengganti rose bengal.
• Rose bengal unggul dalam deteksi dini penyakit permukaan mata, namun memiliki iritasi dan fototoksisitas yang kuat, sehingga penggunaan sehari-hari cenderung menurun.
• Biru tripan (kapsul anterior), ICG (ILM), triamsinolon (vitreus), dan biru brilliant G (ILM) digunakan untuk visualisasi jaringan selama operasi.
• Dengan menggunakan filter biru bebas, kerusakan epitel konjungtiva dapat diamati dengan jelas bahkan dengan pewarnaan fluoresein.
• Pada angiografi fluoresein, jarang terjadi efek samping serius seperti anafilaksis.

1. Apa itu Pewarna Oftalmologi?

Pewarna oftalmologi (dyes in ophthalmology) adalah obat yang digunakan untuk memvisualisasikan jaringan mata atau lapisan air mata secara selektif. Digunakan di semua aspek praktik oftalmologi, dari diagnosis rawat jalan hingga identifikasi jaringan di ruang operasi.

Berdasarkan penggunaannya, dapat diklasifikasikan menjadi dua kategori utama:

Pewarna diagnostik segmen anterior: Fluoresein, hijau lissamin, dan rose bengal adalah tiga yang representatif. Penting untuk deteksi kerusakan epitel kornea dan konjungtiva, evaluasi lapisan air mata, dan diagnosis mata kering.

Pewarna segmen posterior dan bedah: Biru tripan, indosianin hijau (ICG), triamsinolon asetonid, dan biru brilliant G. Digunakan untuk pewarnaan kapsul anterior pada operasi katarak, pewarnaan membran limitans interna (ILM) pada operasi vitreus, dan angiografi fluoresein (FFA/ICGA).

Setiap zat pewarna memiliki karakteristik pewarnaan, panjang gelombang fluoresensi, dan afinitas jaringan yang unik. Penting untuk memilih sesuai dengan tujuan.

2. Jenis dan Karakteristik Zat Pewarna Utama

Fluoresein

Zat pewarna yang paling banyak digunakan dalam praktik klinis. Pigmen larut air berwarna oranye, mudah didapat, aman, dan tidak terlalu mengiritasi.

Karakteristik fluoresensi: Panjang gelombang serapan maksimum sekitar 490 nm (cahaya biru). Saat tereksitasi, memancarkan fluoresensi kuning-hijau pada 520-530 nm. Diamati dengan cahaya biru dari filter biru kobalt.

Prinsip pewarnaan: Fluoresein tidak mewarnai sel itu sendiri, tetapi mewarnai celah antar sel yang rusak. Epitel kornea normal dengan tight junction yang berkembang hampir tidak ternoda. Area defek epitel atau peningkatan permeabilitas air akan ternoda.

Bentuk sediaan dan konsentrasi:

Bentuk sediaan	Konsentrasi	Penggunaan utama
Kertas uji	0,6-1 mg	Pewarnaan permukaan mata
Tetes mata	0,5-2%	Pewarnaan permukaan mata
Larutan injeksi	10-20%	Angiografi fluoresensi fundus

Aplikasi klinis utama:

• Deteksi kerusakan epitel kornea (ulkus, erosi, infeksi, keratopati epitel punctata)
• Pengukuran waktu pecah lapisan air mata (BUT)
• Evaluasi meniskus air mata
• Pengukuran tekanan intraokular dengan tonometri aplanasi (Goldmann)
• Tes Seidel (konfirmasi kebocoran aqueous humor pada trauma tembus bola mata)
• Tes hilangnya pewarnaan Jones (memeriksa patensi duktus nasolakrimalis)
• Angiografi fluoresensi fundus (FFA)
• Evaluasi kesesuaian lensa kontak

Konsentrasi di bawah 3% tidak menyebabkan iritasi mata. Tidak toksik pada penggunaan topikal, dan merupakan pilihan pertama untuk pemeriksaan segmen anterior.

Lissamine hijau

Pewarna makanan sintetis asam. Menunjukkan afinitas pewarnaan tinggi terhadap sel mati, sel degenerasi, dan benang mukus, terlokalisasi di inti. Pewarnaan meningkat di area di mana adhesi antar sel rusak.

Karakteristik Penyerapan: Memiliki puncak penyerapan pada ujung merah spektrum tampak (630 nm). Dengan menggunakan filter red-free, panjang gelombang yang ditransmisikan diserap dan area yang diwarnai tampak hitam.

Unggul dalam menggambarkan kerusakan epitel konjungtiva, dan lebih disukai untuk pewarnaan konjungtiva bulbar. Juga berguna untuk evaluasi lid wiper epitheliopathy (LWE) dan pengamatan garis Marx.

Kurang iritatif dan lebih sedikit sitotoksik dibandingkan rose bengal. Dalam beberapa tahun terakhir, semakin populer sebagai pengganti rose bengal. Namun, konsentrasi di atas 2% menyebabkan ketidaknyamanan. Tidak kompatibel dengan lensa kontak, sehingga harus dibilas dengan larutan garam setelah digunakan.

Rose Bengal

Turunan halogen dari fluorescein. Mewarnai epitel kornea dan konjungtiva yang kekurangan lapisan musin serta sel-sel yang mengalami degenerasi. Diserap di area yang kekurangan perlindungan lapisan air mata preokular.

Dianggap lebih unggul dari pewarna lain dalam deteksi dini penyakit permukaan mata, dan telah digunakan untuk evaluasi mata kering, konjungtivitis limbik superior, dan herpes epitel. Memiliki aktivitas antivirus terhadap herpes simpleks tipe-1 sampai batas tertentu, tetapi bukan untuk tujuan terapi mata.

Namun memiliki banyak kekurangan. Memiliki fototoksisitas, dan bahkan larutan 1% menyebabkan nyeri perih dan sensasi terbakar segera setelah diteteskan. Anestesi topikal diperlukan sebelum pewarnaan. Pewarna mudah tertinggal di konjungtiva dan kulit periokular, dan mata harus segera dibilas setelah pemeriksaan. Keberadaan air mata buatan saja sudah menghambat penyerapan pewarna.

Di Jepang, tidak ada kertas uji yang tersedia secara komersial, dan digunakan larutan buatan sendiri 1%. Karena lebih banyak kekurangan daripada kelebihan, penggunaan sehari-hari menurun, dan secara bertahap digantikan oleh pewarnaan lissamine green atau fluorescein dengan filter biru bebas.

Fluorescein

Target: Kerusakan epitel kornea & lapisan air mata

Panjang gelombang fluoresensi: Absorpsi 490nm → Emisi 520-530nm

Kelebihan: Serbaguna dan aman. Dapat digunakan dengan mudah menggunakan kertas uji

Filter: Biru kobalt + filter biru bebas

Lissamine Green

Target: Kerusakan epitel konjungtiva, LWE, garis Marx

Panjang gelombang serapan: 630 nm

Keuntungan: Optimal untuk pewarnaan konjungtiva. Kurang iritasi dibandingkan rose bengal

Filter: Filter bebas merah

Rose Bengal

Target: Area defisiensi musin dan epitel yang berubah

Karakteristik: Turunan halogen dari fluorescein

Keuntungan: Unggul dalam deteksi dini penyakit permukaan mata

Kekurangan: Fototoksik. Iritasi kuat sehingga penggunaannya menurun

Q Bagaimana membedakan penggunaan fluorescein dan lissamine green?

A

Fluorescein optimal untuk mendeteksi defek epitel kornea dan mengevaluasi lapisan air mata. Lissamine green unggul dalam menggambarkan defek epitel konjungtiva, berguna untuk mengevaluasi lid wiper epitheliopathy dan garis Marx. Dalam evaluasi presisi mata kering, keduanya dapat digunakan bersama dalam “pewarnaan biologi ganda”, dengan mengaplikasikan satu strip fluorescein dan dua strip lissamine green secara bersamaan.

Pewarna Bedah

Dalam bedah segmen posterior dan anterior, digunakan pewarna yang membantu visualisasi jaringan yang sulit dilihat untuk memfasilitasi prosedur bedah.

Trypan blue: Pewarna yang disetujui FDA untuk pewarnaan kapsul anterior (0,06%). Tidak menembus kapsul, sehingga kapsul anterior dapat divisualisasikan kontras dengan korteks lensa yang tidak terwarnai. Sangat berguna pada mata dengan refleks merah yang berkurang atau zonula lemah. Tidak toksik terhadap endotel kornea dan aman pada bedah katarak anak. Juga digunakan pada DSEK dan DALK. Perlu perhatian karena kemungkinan pewarnaan permanen pada IOL hidrofilik akrilik.

Indocyanine green (ICG): Menunjukkan afinitas tinggi terhadap kolagen tipe IV dan laminin, digunakan untuk pewarnaan ILM (0,05-0,5%). Saat injeksi intravena, 98% terikat protein plasma sehingga tidak menyebar ke ekstravaskular, digunakan dalam angiografi fluoresensi ICG untuk pencitraan pembuluh koroid. Toksisitas retina akibat dekomposisi menjadi masalah, diperburuk oleh paparan cahaya. Penggunaan intraokular tidak disetujui FDA. Infracyanine green (IFCG) bebas yodium dianggap sebagai alternatif dengan toksisitas lebih rendah.

Triamcinolone acetonide: Steroid sintetis tidak larut air (40 mg/ml), berikatan sebagai kristal putih pada jaringan aseluler seperti vitreus dan membran limitans interna. Digunakan selama vitrektomi untuk memfasilitasi visualisasi dan pelepasan vitreus posterior. Juga dapat digunakan untuk mengonfirmasi untaian vitreus di bilik mata depan saat ruptur kapsul posterior pada bedah katarak. Tidak ada laporan toksisitas retina, namun ada risiko perkembangan katarak dan peningkatan tekanan intraokular.

Brilian Blue G: Pewarna (0,025%) yang menunjukkan afinitas selektif terhadap ILM, disetujui FDA untuk pewarnaan ILM. Tidak mewarnai ERM, sehingga memungkinkan “pewarnaan negatif” di mana ERM menonjol dengan latar belakang biru ILM saat ERM ada. Juga digunakan dalam “pewarnaan ganda” dengan menyuntikkan kembali setelah pengangkatan ERM untuk mewarnai ILM. Lebih aman dibandingkan ICG.

Trypan Blue

Konsentrasi: Kapsul anterior 0,06%, Segmen posterior 0,15%

Target: Kapsul anterior, Kapsula Tenon, ERM

FDA: Disetujui

Perhatian: Pewarnaan permanen pada IOL hidrofilik

ICG

Konsentrasi: Intravena 40 mg/2 ml, ILM 0,05–0,5%

Target: ILM, Pembuluh koroid (ICGA)

FDA: Tidak disetujui untuk penggunaan intraokular

Perhatian: Toksisitas retina akibat degradasi

Brilian Blue G

Konsentrasi: Pewarnaan ILM 0,025%

Target: ILM (selektif)

FDA: Disetujui

Karakteristik: Pewarnaan negatif, pewarnaan ganda

Selain itu, Bromophenol Blue (0,13-0,2%, pewarnaan ILM/ERM, belum disetujui FDA) dan Patent Blue (0,25%, afinitas sedang untuk ERM, rendah untuk ILM, belum disetujui FDA) kadang digunakan dalam vitrektomi dengan pewarna. Keduanya dianggap kurang toksik terhadap retina dibandingkan ICG, namun data masih terbatas.

3. Aplikasi Klinis dan Penggunaan Pewarna

Evaluasi Gangguan Epitel Kornea dan Konjungtiva

Pewarnaan fluoresein adalah metode pemeriksaan paling dasar dalam evaluasi penyakit segmen anterior.

Tips Prosedur Pewarnaan: Pada pewarnaan fluoresein sebagai tes air mata, penting untuk tidak mengubah volume air mata sebanyak mungkin. Teteskan 1-2 tetes larutan salin ke kertas fluoresein, kocok baik-baik untuk membuang kelebihan air. Lakukan pewarnaan dengan menyentuhkan kertas secara ringan ke tepi meniskus air mata bawah. Hindari menyentuh bola mata secara langsung. Dengan memegang kertas secara vertikal, jumlah tetes dapat diminimalkan. Anestesi tetes mata sebaiknya tidak digunakan karena dapat menyebabkan kerusakan epitel halus.

Observasi Segera Setelah Pewarnaan: Area defek epitel atau pelepasan lapisan epitel superfisial akan terwarnai. Pada ulkus kornea, batas ulkus menjadi jelas, berguna untuk menilai keparahan penyakit dan respons terapi. Pada infeksi kornea, lesi dendritik herpes simpleks dan lesi pseudodendritik akantamoeba dapat diamati dengan jelas.

Delayed Staining: Fenomena yang terjadi 1 menit atau lebih setelah pewarnaan. Meskipun tidak ada defek epitel, jika tight junction menurun akibat toksisitas obat, fluoresein akan berdifusi ke dalam epitel dan mewarnainya. Area adhesi yang buruk pada erosi kornea rekuren, area invasi epitel konjungtiva ke kornea, dan area gangguan fungsi barier pada keratopati toksik dapat terdeteksi.

Observasi Gangguan Epitel Konjungtiva: Pada konjungtiva, latar belakang putih mengurangi kontras fluoresein. Masalah ini dapat diatasi dengan menggunakan filter biru (filter yang mentransmisikan cahaya dengan panjang gelombang 520-530 nm atau lebih). Dengan filter biru, gangguan epitel konjungtiva dapat dideteksi setara atau lebih baik dibandingkan pewarnaan rose bengal, sehingga rose bengal tidak perlu digunakan.

Pemanfaatan Filter Biru

Pada mata kering, gangguan epitel konjungtiva mendahului gangguan epitel kornea. Untuk tidak melewatkan gangguan epitel konjungtiva pada mata kering ringan hingga sedang, gunakan filter biru bersamaan dengan pewarnaan fluoresein. Sebagian besar slit lamp yang dijual saat ini dilengkapi secara standar atau opsional.

Skoring: Dalam diagnosis dan penilaian keparahan mata kering, berdasarkan kriteria diagnosis mata kering 2006, derajat pewarnaan dinilai pada tiga kuadran (konjungtiva temporal, kornea, konjungtiva nasal) dengan skala 0-3, dan total skor 3 atau lebih dari 9 dianggap abnormal. Pada skala NEI (National Eye Institute), penilaian dilakukan pada 5 zona kornea dengan skor 0-15.

Evaluasi Lapisan Air Mata

Waktu Pecah Lapisan Air Mata (BUT): Dilakukan pewarnaan fluoresein, lalu diukur waktu (dalam detik) sejak membuka kelopak mata hingga lapisan air mata pecah. Nilai ≤5 detik dianggap abnormal. Pasien diminta menutup mata perlahan lalu membuka dengan cepat, diukur 3 kali dan diambil rata-rata. Hindari menutup mata dengan kuat karena menekan kelenjar meibom dan mengubah lapisan minyak.

Pola Pecah Lapisan Air Mata: Akhir-akhir ini, konsep TFOD (diagnosis berorientasi lapisan air mata) semakin populer. Pola pecah lapisan air mata saat pengukuran BUT diklasifikasikan menjadi 6 tipe, dan digunakan untuk diagnosis subtipe mata kering serta pemilihan terapi (TFOT).

Pola	Karakteristik	Kondisi Patologis yang Disarankan
area break	Pecah area luas	Tipe defisiensi air mata
line break	Garis vertikal di kornea bawah	Volume air mata rendah
spot break	Pecah titik	Kelainan permukaan kornea

Area break menunjukkan penurunan volume air mata yang ekstrem, memerlukan pemasangan sumbat punctum. Line break mencerminkan penipisan lapisan air mata, sedangkan spot break mencerminkan kelainan kebasahan permukaan kornea.

Pengukuran Tekanan Intraokular Aplanasi

Pada tonometer aplanasi Goldmann, pewarnaan fluoresein sangat penting. Dengan memasukkan filter biru dan menyentuhkan prisma aplanasi ke kornea, akan terlihat setengah lingkaran fluoresein di atas dan bawah. Drum disesuaikan sehingga tepi dalam kedua setengah lingkaran saling bersentuhan untuk membaca tekanan intraokular. Lebar setengah lingkaran yang tepat adalah sekitar 1/10 dari diameter 3,06 mm (sekitar 0,2 mm). Pewarnaan berlebihan membuat lebar bertambah dan tekanan terbaca lebih tinggi, sedangkan pewarnaan kurang membuat tekanan terbaca lebih rendah.

Angiografi Fundus Fluoresein

Angiografi Fundus Fluoresein (FFA): Fluoresein 10% atau 20% diberikan secara intravena. Sekitar 70% fluoresein terikat pada protein plasma, sisanya dalam bentuk bebas. Dengan filter eksitasi biru kobalt, fluoresein di retina dan koroid dieksitasi, dan cahaya biru yang dipantulkan diserap oleh filter penghalang kuning-hijau untuk memotret hanya fluoresensi. Digunakan untuk mengevaluasi banyak penyakit seperti retinopati diabetik, oklusi vena retina, degenerasi makula terkait usia, dan iskemia makula. Pada pasien dengan penurunan fungsi ginjal, dosis dikurangi menjadi setengah atau kurang.

Angiografi Fundus ICG (ICGA): ICG terikat 98% pada protein plasma sehingga sulit menyebar ke luar pembuluh darah. Karena dieksitasi dengan cahaya inframerah (dekat inframerah), gambar yang lebih jelas daripada FFA dapat diperoleh bahkan pada mata dengan kekeruhan media. Unggul dalam pencitraan pembuluh darah koroid, digunakan untuk mengevaluasi polipoidal koroidal vaskulopati (PCV), neovaskularisasi koroid, dan uveitis posterior. ICG diekskresikan melalui hati ke dalam empedu, sehingga dapat dilakukan pada pasien dialisis.

4. Perhatian Penggunaan dan Efek Samping

Perhatian Pewarnaan Segmen Anterior

Urutan Pewarnaan: Karena pewarnaan rose bengal sendiri dapat memperburuk kerusakan epitel kornea dan konjungtiva, selalu lakukan pewarnaan fluoresein terlebih dahulu dan amati dengan cukup sebelum beralih ke pewarnaan rose bengal.

Fluoresein: Pada penggunaan topikal, konsentrasi di bawah 3% aman tanpa iritasi atau toksisitas mata. Namun, hindari penggunaan saat memakai lensa kontak lunak karena dapat mewarnai lensa.

Hijau Lissamin: Karena tidak kompatibel dengan lensa kontak, bilas dengan larutan garam fisiologis setelah penggunaan.

Rose Bengal: Memiliki fototoksisitas dan pewarnaan cenderung bertahan, jadi segera bilas mata setelah pemeriksaan. Lakukan anestesi tetes mata yang cukup sebelum pewarnaan.

Efek Samping Angiografi Fundus Fluoresein

Pada angiografi fundus fluoresein (FFA), karena fluoresein diberikan secara intravena, dapat timbul efek samping sistemik.

Efek Samping Angiografi Fundus Fluoresein dan Penanganannya

Pada FFA, sekitar 10% mengalami efek samping ringan seperti mual, muntah, gatal, urtikaria, dan bersin. Syok anafilaksis berat terjadi sekitar 1 dari 10.000 orang, namun ada laporan kematian, sehingga kereta darurat harus selalu tersedia saat pemeriksaan dan tindakan antisyok harus disiapkan. Pada pasien dengan gagal ginjal, asma berat, atau kehamilan, diperlukan pertimbangan hati-hati.

Setelah pemeriksaan, urine menjadi kuning cerah, dan kulit menguning selama 2-3 jam. Jelaskan sebelumnya bahwa urine berwarna berlangsung hingga hari berikutnya. Jarang, fluorescein meresap ke seluruh kulit tubuh menyebabkan pseudojaundice ²⁾. Dalam literatur medis, total 11 kasus kematian terkait fluorescein telah dilaporkan ²⁾. Mekanisme efek samping yang diusulkan meliputi refleks vagal, alergi obat, pelepasan histamin, pelepasan simpatis meduler terkait kecemasan, dan efek toksik vasospasme langsung ²⁾.

Q Apa saja efek samping dari angiografi fluorescein (FFA)?

A

Efek samping ringan meliputi mual, muntah, urtikaria, dan gatal, terjadi pada sekitar 10% kasus. Efek serius termasuk syok anafilaksis (sekitar 1 dari 10.000 orang), dan kasus kematian telah dilaporkan. Setelah pemeriksaan, kulit menguning dan urine berwarna terlihat sementara tetapi tidak berbahaya. Jarang, pseudojaundice di mana seluruh kulit tubuh berpendar telah dilaporkan. Pasien dengan riwayat alergi perlu perhatian khusus.

Catatan tentang pewarna bedah

Trypan blue: Jika tidak segera dibilas, akan mewarnai vitreus anterior dan kapsul posterior. Biasanya hilang dalam 1-2 minggu. Ada risiko pewarnaan permanen pada IOL akrilik hidrofilik, dan FDA tidak merekomendasikannya.

ICG: Perlu filtrasi untuk menghilangkan partikel yang tidak larut. Paparan cahaya memperburuk toksisitas retina. Dapat menembus lubang makula dan merusak RPE. Telah dilaporkan deposisi permanen pada diskus optikus. Suntikkan ke segmen posterior mata yang terisi cairan untuk meminimalkan kontak dengan makula.

Triamcinolone: Menetap di vitreus hingga 40 hari. Ada risiko perkembangan katarak dan peningkatan tekanan intraokular. Telah dilaporkan endoftalmitis, hifema, dan pseudohifema.

5. Prinsip pewarnaan dan karakteristik fluoresensi

Mekanisme fluoresensi fluorescein

Fluoresensi adalah fenomena di mana molekul menyerap cahaya dengan panjang gelombang rendah dan memancarkan cahaya dengan panjang gelombang lebih tinggi. Fluorescein menyerap cahaya biru sekitar 490 nm dan memancarkan fluoresensi kuning-hijau pada 520-530 nm.

Secara klinis, eksitasi dilakukan dengan cahaya biru melalui filter biru kobalt. Namun, panjang gelombang transmisi maksimum filter biru kobalt adalah 390-410 nm, tidak sesuai dengan panjang gelombang serapan maksimum fluorescein (490 nm), sehingga eksitasi tidak optimal ¹⁾. Dengan memasang filter bebas biru (mentransmisikan di atas 520-530 nm) pada sistem observasi, cahaya biru yang dipantulkan dipotong dan kontras fluoresensi meningkat.

Prinsip pewarnaan masing-masing pewarna

Fluoresein: Koefisien partisi minyak/air adalah 0,5-0,6, dan secara prinsip dapat melewati membran sel sampai batas tertentu. Namun, sel permukaan epitel kornea normal memiliki tight junction yang berkembang baik sehingga tidak melewati antar sel. Selain itu, dilapisi oleh musin, sehingga kornea normal hampir tidak ternoda. Pada defek epitel, ia menempel pada membran basal dan memendarkan fluoresensi, dan pada area dengan fungsi sawar yang menurun, ia meresap seiring waktu sebagai pewarnaan tertunda.

Epitel konjungtiva memiliki fungsi sawar yang lebih lemah daripada epitel kornea, dan seiring waktu, fluoresein menembus dan menodai seluruhnya. Oleh karena itu, temuan harus diambil segera setelah pewarnaan. Perbedaan permeabilitas ini dapat digunakan untuk membedakan epitel kornea dan epitel konjungtiva (penggambaran garis Marx, identifikasi luas invasi epitel konjungtiva).

Rose Bengal dan Lisamin Hijau: Keduanya menodai epitel kornea dan konjungtiva yang kekurangan lapisan musin serta sel-sel yang mengalami degenerasi. Kemampuan pewarnaan rose bengal dan lisamin hijau hampir setara, tetapi secara klinis, lisamin hijau lebih tidak mengiritasi dan lebih cocok untuk deteksi gangguan epitel konjungtiva.

ICG: Menunjukkan afinitas tinggi terhadap kolagen tipe IV dan laminin. Zat-zat ini terdapat dalam konsentrasi tinggi di ILM retina, sehingga ILM ternoda secara selektif. Saat injeksi intravena, 98% terikat pada protein plasma dan tidak menyebar ke luar pembuluh darah, yang merupakan prinsip ICGA. Namun, dekomposisi menyebabkan oksidasi auto-sensitisasi, yang menjadi penyebab toksisitas retina.

Brilian Biru G: Diambil secara selektif oleh ILM tetapi tidak oleh ERM. Sifat ini dapat digunakan untuk pewarnaan negatif (menonjolkan ERM dengan latar belakang biru ILM).

6. Penelitian Terbaru dan Prospek Masa Depan

Fluorescein Corneography (FCG)

Evaluasi pewarnaan fluoresein konvensional dengan slit lamp memiliki tantangan seperti keterbatasan karakteristik eksitasi filter biru kobalt, keterbatasan kedalaman fokus akibat kelengkungan kornea, pengaruh warna iris, dan ketergantungan pada pengamat ¹⁾.

Soifer dkk. mengembangkan “Fluorescein Corneography (FCG)” dengan mengalihfungsikan mode angiografi fluoresein (FA) pada Optical Coherence Tomography (OCT, Heidelberg Spectralis II) untuk pencitraan kornea ¹⁾. Spectralis II menggunakan laser 490 nm untuk eksitasi optimal, dan filter penghalang sekitar 525 nm untuk mencitrakan fluoresensi secara selektif ¹⁾. Dengan lensa 55°, seluruh kornea (dari limbus ke limbus) dapat difokuskan dalam satu gambar ¹⁾.

Dalam studi yang melibatkan 50 pasien mata kering dan 10 subjek sehat, FCG menunjukkan kesesuaian antar-penilai yang tinggi dibandingkan dengan gambar slit lamp. Koefisien korelasi intraclass (ICC) untuk skor pewarnaan kornea menurut skala NEI adalah 0,96 untuk FCG dan 0,86 untuk slit lamp (p<0,001) ¹⁾.

Pada pasien dengan iris terang, skor gambar slit-lamp secara signifikan lebih rendah daripada FCG (6,11 vs 8,94; p=0,026), tetapi pada iris gelap tidak ada perbedaan (8,16 vs 8,25; p=0,961)¹⁾. Pada slit-lamp, refleksi cahaya biru bercampur dengan iris terang dan mengganggu deteksi PEE, sedangkan FCG tidak bergantung pada warna iris¹⁾.

Karena FCG menggunakan perangkat OCT-FA yang tersedia luas, FCG berpotensi untuk menstandarisasi, mendigitalkan, dan mengotomatiskan pewarnaan kornea baik dalam penelitian klinis maupun praktik sehari-hari¹⁾.

Penyangkalan

Artikel ini bertujuan menyediakan informasi edukatif untuk tenaga medis dan bukan merupakan panduan diagnosis atau pengobatan individual. Konsultasikan dengan dokter Anda mengenai pemilihan zat pewarna atau indikasi angiografi fluorescein.

Q Apa perbedaan Fluorescein Corneography (FCG) dengan metode observasi konvensional?

A

FCG adalah teknik baru yang menggunakan mode angiografi fluorescein pada perangkat OCT untuk pencitraan kornea. Dengan laser 490 nm untuk mengeksitasi fluorescein secara optimal dan filter penghalang untuk menghilangkan cahaya pantul, FCG dapat mendeteksi kerusakan epitel kornea dengan sensitivitas dan kontras yang lebih tinggi daripada slit-lamp. Keuntungan utamanya adalah tidak terpengaruh oleh warna iris dan memiliki kesesuaian antar-penilai yang tinggi (ICC 0,96 vs 0,86).

7. Referensi

1. Soifer M, Azar NS, Blanco R, et al. Fluorescein CorneoGraphy (FCG): Use of a Repurposed Fluorescein Imaging Technique to Objectively Standardize Corneal Staining. Ocul Surf. 2023;27:77-79.
2. Bertani R, Ferrarez CE, Perret CM, et al. The Fluorescent Patient: An Unusual Effect of Fluorescein Angiography. Cureus. 2021;13(5):e15011.
3. Wolffsohn JS, Arita R, Chalmers R, Djalilian A, Dogru M, Dumbleton K, et al. TFOS DEWS II Diagnostic Methodology report. Ocul Surf. 2017;15(3):539-574. PMID: 28736342.