ข้ามไปยังเนื้อหา
กระจกตาและตาส่วนนอก

สีย้อมทางจักษุวิทยา

สีย้อมทางจักษุวิทยา (dyes in ophthalmology) คือยาที่ใช้ในการมองเห็นเนื้อเยื่อตาหรือชั้นน้ำตาอย่างเฉพาะเจาะจง ใช้ในทุกด้านของการปฏิบัติงานจักษุวิทยา ตั้งแต่การวินิจฉัยผู้ป่วยนอกไปจนถึงการระบุเนื้อเยื่อในห้องผ่าตัด

สามารถจำแนกได้เป็นสองประเภทหลักตามการใช้งาน:

สีย้อมวินิจฉัยส่วนหน้า: ฟลูออเรสซีน ลิสซามีนกรีน และโรสบengal เป็นสามชนิดที่เป็นตัวแทน จำเป็นสำหรับการตรวจหารอยโรคของเยื่อบุกระจกตาและเยื่อบุตา การประเมินชั้นน้ำตา และการวินิจฉัยโรคตาแห้ง

สีย้อมส่วนหลังและผ่าตัด: ทริปันบลู อินโดไซยานีนกรีน (ICG) ไตรแอมซิโนโลนอะซีโทไนด์ และบริลเลียนท์บลู G ใช้สำหรับย้อมแคปซูลหน้าในการผ่าตัดต้อกระจก ย้อมเยื่อจำกัดชั้นใน (ILM) ในการผ่าตัดวุ้นตา และการถ่ายภาพหลอดเลือดด้วยฟลูออเรสซีน (FFA/ICGA)

สีย้อมแต่ละชนิดมีคุณสมบัติการย้อมสี ความยาวคลื่นฟลูออเรสเซนซ์ และความสัมพันธ์กับเนื้อเยื่อเฉพาะ การเลือกใช้ให้เหมาะสมกับวัตถุประสงค์เป็นสิ่งสำคัญ

เป็นสีย้อมที่ใช้กันอย่างแพร่หลายที่สุดในทางคลินิก เป็นสีย้อมที่ละลายน้ำได้สีส้ม หาได้ง่าย ปลอดภัย และระคายเคืองน้อย

คุณสมบัติฟลูออเรสเซนซ์: ความยาวคลื่นดูดกลืนสูงสุดประมาณ 490 นาโนเมตร (แสงสีน้ำเงิน) เมื่อถูกกระตุ้นจะปล่อยฟลูออเรสเซนซ์สีเหลือง-เขียวที่ 520-530 นาโนเมตร สังเกตด้วยแสงสีน้ำเงินจากฟิลเตอร์สีน้ำเงินโคบอลต์

หลักการย้อมสี: ฟลูออเรสซีนไม่ได้ย้อมสีเซลล์เอง แต่ย้อมช่องว่างระหว่างเซลล์ที่แตก เยื่อบุกระจกตาปกติที่มีรอยต่อแน่นจะไม่ติดสี พื้นที่ที่มีข้อบกพร่องของเยื่อบุหรือการซึมผ่านของน้ำเพิ่มขึ้นจะติดสี

รูปแบบและความเข้มข้น:

รูปแบบความเข้มข้นการใช้หลัก
แถบทดสอบ0.6-1 มก.ย้อมสีผิวตา
ยาหยอดตา0.5-2%ย้อมสีผิวตา
สารละลายสำหรับฉีด10-20%การถ่ายภาพหลอดเลือดจอประสาทตาด้วยฟลูออเรสซีน

การประยุกต์ใช้ทางคลินิกหลัก:

  • การตรวจหาความเสียหายของเยื่อบุกระจกตา (แผล, การสึกกร่อน, การติดเชื้อ, โรคเยื่อบุกระจกตาชนิดจุดตื้น)
  • การวัดระยะเวลาการแตกตัวของฟิล์มน้ำตา (BUT)
  • การประเมินวงเดือนน้ำตา
  • การวัดความดันลูกตาด้วยเครื่องวัดความดันชนิดแบนราบ (Goldmann)
  • การทดสอบ Seidel (ยืนยันการรั่วของอารมณ์ขันในน้ำในบาดแผลทะลุลูกตา)
  • การทดสอบการหายไปของสี Jones (ตรวจสอบความแจ้งของท่อน้ำตาจมูก)
  • การถ่ายภาพหลอดเลือดจอประสาทตาด้วยฟลูออเรสซีน (FFA)
  • การประเมินความพอดีของคอนแทคเลนส์

ความเข้มข้นต่ำกว่า 3% ไม่ก่อให้เกิดการระคายเคืองตา ไม่เป็นพิษเมื่อใช้เฉพาะที่ และเป็นตัวเลือกแรกสำหรับการตรวจส่วนหน้าของตา

สีผสมอาหารสังเคราะห์ชนิดกรด มีความสัมพันธ์ในการย้อมสูงต่อเซลล์ที่ตายแล้ว เซลล์เสื่อม และเส้นเมือก อยู่ที่นิวเคลียส การย้อมสีจะเพิ่มขึ้นในบริเวณที่การยึดเกาะระหว่างเซลล์ถูกทำลาย

คุณสมบัติการดูดซับ: มีจุดสูงสุดการดูดซับที่ปลายสีแดงของสเปกตรัมที่มองเห็นได้ (630 นาโนเมตร) การใช้ฟิลเตอร์แบบไม่มีสีแดงจะทำให้ความยาวคลื่นที่ผ่านถูกดูดซับ และบริเวณที่ย้อมจะปรากฏเป็นสีดำ

ดีเยี่ยมในการแสดงภาพความเสียหายของเยื่อบุตา และเป็นที่นิยมสำหรับการย้อมเยื่อบุตาส่วนลูกตา นอกจากนี้ยังมีประโยชน์ในการประเมิน lid wiper epitheliopathy (LWE) และการสังเกตเส้น Marx

ระคายเคืองน้อยกว่าและเป็นพิษต่อเซลล์น้อยกว่าโรสเบงกอล ในช่วงไม่กี่ปีที่ผ่านมา ได้รับความนิยมมากขึ้นในฐานะสารทดแทนโรสเบงกอล อย่างไรก็ตาม ความเข้มข้นที่มากกว่า 2% ทำให้เกิดความรู้สึกไม่สบาย ไม่เข้ากันได้กับคอนแทคเลนส์ ดังนั้นควรล้างด้วยน้ำเกลือหลังการใช้

อนุพันธ์ฮาโลเจนของฟลูออเรสซีน ย้อมเยื่อบุกระจกตาและเยื่อบุตาที่ขาดชั้นเมือกและเซลล์ที่เสื่อมสภาพ ถูกดูดซึมในบริเวณที่ขาดการปกป้องจากชั้นน้ำตาส่วนหน้า

ถือว่าเหนือกว่าสีย้อมอื่นในการตรวจหาโรคผิวตาตั้งแต่ระยะแรก และถูกใช้ในการประเมินภาวะตาแห้ง เยื่อบุตาอักเสบที่ขอบตาส่วนบน และเริมชนิดเยื่อบุผิว มีฤทธิ์ต้านไวรัสต่อไวรัสเริมชนิดที่ 1 ในระดับหนึ่ง แต่ไม่ใช่เพื่อการรักษาทางจักษุ

อย่างไรก็ตาม มีข้อเสียมากมาย มีพิษต่อแสง และแม้แต่สารละลาย 1% ก็ทำให้เกิดอาการปวดแสบและแสบร้อนทันทีหลังหยอด จำเป็นต้องใช้ยาชาเฉพาะที่ก่อนย้อม สีย้อมติดอยู่ที่เยื่อบุตาและผิวหนังรอบดวงตาได้ง่าย และต้องล้างตาทันทีหลังการตรวจ การมีน้ำตาเทียมเพียงอย่างเดียวก็ขัดขวางการดูดซึมสีย้อม

ในญี่ปุ่น ไม่มีแผ่นทดสอบจำหน่าย และใช้สารละลายที่เตรียมเองที่ความเข้มข้น 1% เนื่องจากข้อเสียมากกว่าข้อดี การใช้ในชีวิตประจำวันจึงลดลง และค่อยๆ ถูกแทนที่ด้วยการย้อมลิสซามีนกรีนหรือฟลูออเรสซีนร่วมกับฟิลเตอร์สีน้ำเงินอิสระ

ฟลูออเรสซีน

เป้าหมาย: ความเสียหายของเยื่อบุกระจกตาและชั้นน้ำตา

ความยาวคลื่นเรืองแสง: การดูดซับ 490nm → การปล่อย 520-530nm

ข้อดี: ใช้งานได้หลากหลายและปลอดภัย สามารถใช้ได้ง่ายด้วยแผ่นทดสอบ

ฟิลเตอร์: โคบอลต์บลู + ฟิลเตอร์สีน้ำเงินอิสระ

ลิสซามีนกรีน

เป้าหมาย: ความเสียหายของเยื่อบุตา, LWE, เส้น Marx

ความยาวคลื่นดูดกลืน: 630 นาโนเมตร

ข้อดี: เหมาะที่สุดสำหรับการย้อมเยื่อบุตา ระคายเคืองน้อยกว่าโรสเบงกอล

ฟิลเตอร์: ฟิลเตอร์ไร้สีแดง

โรสเบงกอล

เป้าหมาย: บริเวณที่ขาดมิวซินและเยื่อบุผิวที่เปลี่ยนแปลง

ลักษณะ: อนุพันธ์ฮาโลเจนของฟลูออเรสซีน

ข้อดี: ยอดเยี่ยมในการตรวจหาโรคผิวตาตั้งแต่ระยะแรก

ข้อเสีย: เป็นพิษต่อแสง ระคายเคืองรุนแรง ทำให้การใช้ลดลง

Q จะแยกการใช้ฟลูออเรสซีนและลิสซามีนกรีนอย่างไร?
A

ฟลูออเรสซีนเหมาะที่สุดในการตรวจหาข้อบกพร่องของเยื่อบุกระจกตาและประเมินชั้นน้ำตา ลิสซามีนกรีนยอดเยี่ยมในการแสดงภาพข้อบกพร่องของเยื่อบุตา มีประโยชน์ในการประเมิน lid wiper epitheliopathy และเส้น Marx ในการประเมินตาแห้งอย่างแม่นยำ อาจใช้ทั้งสองร่วมกันใน “การย้อมสีชีวภาพคู่” โดยใช้ฟลูออเรสซีน 1 แถบและลิสซามีนกรีน 2 แถบพร้อมกัน

ในการผ่าตัดส่วนหลังและส่วนหน้าของตา มีการใช้สีย้อมที่ช่วยให้เห็นเนื้อเยื่อที่มองเห็นได้ยากเพื่อช่วยในการผ่าตัด

ทริปแพนบลู: สีย้อมที่ได้รับการรับรองจาก FDA สำหรับการย้อมแคปซูลด้านหน้า (0.06%) ไม่ซึมผ่านแคปซูล จึงทำให้เห็นแคปซูลด้านหน้าแตกต่างจากคอร์เทกซ์เลนส์ที่ไม่ถูกย้อม มีประโยชน์โดยเฉพาะในตาที่มีรีเฟล็กซ์แดงลดลงหรือโซนูลอ่อนแอ ไม่เป็นพิษต่อเอนโดทีเลียมกระจกตาและปลอดภัยในการผ่าตัดต้อกระจกในเด็ก ใช้ใน DSEK และ DALK ด้วย ต้องระวังการย้อมสีถาวรของ IOL ชนิดไฮโดรฟิลิกอะคริลิก

อินโดไซยานีนกรีน (ICG): แสดงความสัมพันธ์สูงกับคอลลาเจนชนิดที่ 4 และลามินิน ใช้ย้อม ILM (0.05-0.5%) เมื่อฉีดเข้าหลอดเลือดดำ 98% จับกับโปรตีนในพลาสมาจึงไม่แพร่กระจายออกนอกหลอดเลือด ใช้ในการถ่ายภาพหลอดเลือดคอรอยด์ด้วย ICG fluorescein angiography พิษต่อจอประสาทตาจากการสลายตัวเป็นปัญหา และแย่ลงเมื่อได้รับแสง การใช้ภายในตาไม่ได้รับการรับรองจาก FDA อินฟราไซยานีนกรีน (IFCG) ที่ไม่มีไอโอดีนถือเป็นทางเลือกที่มีพิษน้อยกว่า

ไตรแอมซิโนโลน อะซีโทไนด์: สเตียรอยด์สังเคราะห์ที่ไม่ละลายน้ำ (40 มก./มล.) จับเป็นผลึกสีขาวกับเนื้อเยื่อไร้เซลล์ เช่น วุ้นตาและเมมเบรนลิมิตันส์ภายใน ใช้ระหว่างการตัดวุ้นตาเพื่อช่วยให้เห็นและลอกวุ้นตาส่วนหลัง นอกจากนี้ยังใช้ยืนยันเส้นใยวุ้นตาในช่องหน้าม่านตาเมื่อเกิดการแตกของแคปซูลหลังระหว่างการผ่าตัดต้อกระจก ไม่มีรายงานพิษต่อจอประสาทตา แต่มีความเสี่ยงต่อการเกิดต้อกระจกและความดันลูกตาเพิ่มขึ้น

บริลเลียนท์บลู G: สีย้อม (0.025%) ที่มีความสัมพันธ์เฉพาะกับ ILM ได้รับการรับรองจาก FDA สำหรับการย้อม ILM ไม่ย้อม ERM ทำให้เกิด “การย้อมแบบลบ” ซึ่ง ERM จะเด่นขึ้นบนพื้นหลังสีน้ำเงินของ ILM เมื่อมี ERM นอกจากนี้ยังใช้ใน “การย้อมสองครั้ง” โดยฉีดซ้ำหลังจากลอก ERM เพื่อย้อม ILM ปลอดภัยกว่าเมื่อเทียบกับ ICG

ทริปแพนบลู

ความเข้มข้น: แคปซูลหน้า 0.06%, ส่วนหลังตา 0.15%

เป้าหมาย: แคปซูลหน้า, แคปซูลเทนอน, ERM

FDA: รับรองแล้ว

ข้อควรระวัง: การย้อมถาวรของ IOL ที่ชอบน้ำ

ICG

ความเข้มข้น: ฉีดเข้าเส้น 40 มก./2 มล., ILM 0.05–0.5%

เป้าหมาย: ILM, หลอดเลือดคอรอยด์ (ICGA)

FDA: ยังไม่รับรองการใช้ภายในตา

ข้อควรระวัง: พิษต่อจอประสาทตาจากการสลายตัว

บริลเลียนท์บลู G

ความเข้มข้น: ย้อม ILM 0.025%

เป้าหมาย: ILM (เฉพาะ)

FDA: รับรองแล้ว

ลักษณะ: การย้อมสีแบบลบ, การย้อมสีแบบคู่

นอกจากนี้ โบรโมฟีนอลบลู (0.13-0.2%, ย้อม ILM/ERM, ยังไม่ได้รับการอนุมัติจาก FDA) และ แพทเทนท์บลู (0.25%, ความสัมพันธ์ปานกลางกับ ERM และต่ำกับ ILM, ยังไม่ได้รับการอนุมัติจาก FDA) อาจใช้ในการผ่าตัดวุ้นตาร่วมกับการย้อมสี ทั้งสองชนิดถือว่ามีพิษต่อจอประสาทตาน้อยกว่า ICG แต่ข้อมูลยังมีจำกัด

3. การประยุกต์ใช้ทางคลินิกและการใช้สารย้อมสี

หัวข้อที่มีชื่อว่า “3. การประยุกต์ใช้ทางคลินิกและการใช้สารย้อมสี”

การประเมินความผิดปกติของเยื่อบุกระจกตาและเยื่อบุตา

หัวข้อที่มีชื่อว่า “การประเมินความผิดปกติของเยื่อบุกระจกตาและเยื่อบุตา”

การย้อมด้วยฟลูออเรสซีนเป็นวิธีการตรวจพื้นฐานที่สุดในการประเมินโรคของส่วนหน้าของตา

เคล็ดลับขั้นตอนการย้อม: ในการย้อมฟลูออเรสซีนเพื่อทดสอบน้ำตา สิ่งสำคัญคือต้องไม่เปลี่ยนแปลงปริมาณน้ำตาให้มากที่สุด หยดน้ำเกลือ 1-2 หยดลงบนแผ่นทดสอบฟลูออเรสซีน เขย่าให้เข้ากันเพื่อเอาน้ำส่วนเกินออก ทำการย้อมโดยแตะแผ่นทดสอบเบาๆ ที่ขอบของเมนิสคัสน้ำตาส่วนล่าง หลีกเลี่ยงการสัมผัสลูกตาโดยตรง การถือแผ่นทดสอบในแนวตั้งสามารถลดปริมาณหยดได้ ไม่ควรใช้ยาชาหยอดตาเพราะอาจทำให้เกิดความเสียหายต่อเยื่อบุผิวเล็กน้อย

การสังเกตทันทีหลังการย้อม: บริเวณที่เยื่อบุผิวบกพร่องหรือหลุดลอกของชั้นเยื่อบุผิวผิวเผินจะติดสี ในแผลที่กระจกตา ขอบเขตของแผลจะชัดเจน มีประโยชน์ในการประเมินความรุนแรงของโรคและการตอบสนองต่อการรักษา ในการติดเชื้อที่กระจกตา รอยโรคแบบ dendritic ของเริม และรอยโรคแบบ pseudodendritic ของอะแคนทามีบาสามารถสังเกตได้ชัดเจน

การย้อมสีแบบช้า: ปรากฏการณ์ที่เกิดขึ้นหลังจาก 1 นาทีหรือมากกว่าหลังการย้อม แม้จะไม่มีข้อบกพร่องของเยื่อบุผิว หาก tight junction ลดลงเนื่องจากพิษของยา ฟลูออเรสซีนจะแพร่เข้าไปในเยื่อบุผิวและทำให้ติดสี บริเวณที่ยึดเกาะไม่ดีในการสึกกร่อนของกระจกตาที่เกิดซ้ำ บริเวณที่เยื่อบุตารุกรานเข้าไปในกระจกตา และบริเวณที่การทำงานของสิ่งกีดขวางบกพร่องในโรคกระจกตาจากพิษของยาสามารถตรวจพบได้

การสังเกตความผิดปกติของเยื่อบุตา: ในเยื่อบุตา พื้นหลังสีขาวจะลดความคมชัดของฟลูออเรสซีน ปัญหานี้สามารถแก้ไขได้โดยใช้ฟิลเตอร์สีน้ำเงิน (ฟิลเตอร์ที่ส่งผ่านแสงที่มีความยาวคลื่น 520-530 นาโนเมตรขึ้นไป) ด้วยฟิลเตอร์สีน้ำเงิน ความผิดปกติของเยื่อบุตาสามารถตรวจพบได้เทียบเท่าหรือดีกว่าการย้อมด้วยโรสเบงกอล ทำให้ไม่จำเป็นต้องใช้โรสเบงกอล

การให้คะแนน: ในการวินิจฉัยและประเมินความรุนแรงของภาวะตาแห้ง ตามเกณฑ์การวินิจฉัยภาวะตาแห้งปี 2006 ระดับการย้อมสีจะถูกประเมินในสามส่วน (เยื่อบุตาข้างขมับ กระจกตา เยื่อบุตาข้างจมูก) ในระดับ 0-3 และคะแนนรวม 3 หรือมากกว่าจาก 9 ถือว่าผิดปกติ ในระดับ NEI (สถาบันตาแห่งชาติ) การประเมินจะทำใน 5 โซนของกระจกตาโดยให้คะแนน 0-15

เวลาแตกตัวของฟิล์มน้ำตา (BUT): ย้อมด้วยฟลูออเรสซีน วัดเวลาเป็นวินาทีตั้งแต่ลืมตาจนกระทั่งฟิล์มน้ำตาแตกตัว ค่า ≤5 วินาทีถือว่าผิดปกติ ให้ผู้ป่วยหลับตาเบาๆ แล้วลืมตาอย่างรวดเร็ว วัด 3 ครั้งแล้วหาค่าเฉลี่ย หลีกเลี่ยงการหลับตาแรงเพราะจะกดต่อมไมโบมและเปลี่ยนชั้นน้ำมัน

รูปแบบการแตกตัวของฟิล์มน้ำตา: ในช่วงไม่กี่ปีที่ผ่านมา แนวคิด TFOD (การวินิจฉัยที่เน้นฟิล์มน้ำตา) แพร่หลายมากขึ้น รูปแบบการแตกตัวของฟิล์มน้ำตาขณะวัด BUT ถูกจำแนกเป็น 6 แบบ และใช้ในการวินิจฉัยชนิดย่อยของตาแห้งและการเลือกการรักษา (TFOT)

รูปแบบลักษณะภาวะทางพยาธิวิทยาที่บ่งชี้
area breakการแตกตัวเป็นบริเวณกว้างชนิดขาดน้ำตา
line breakเส้นแนวตั้งบริเวณกระจกตาส่วนล่างปริมาณน้ำตาลดลง
spot breakการแตกตัวเป็นจุดความผิดปกติของผิวกระจกตา

Area break บ่งชี้ปริมาณน้ำตาลดลงอย่างรุนแรง จำเป็นต้องใส่จุดอุดท่อน้ำตา Line break สะท้อนฟิล์มน้ำตาบางลง ส่วน spot break สะท้อนความผิดปกติของการเปียกผิวกระจกตา

ในการวัดความดันลูกตาด้วยเครื่อง Goldmann applanation tonometer การย้อมด้วยฟลูออเรสซีนเป็นสิ่งจำเป็น เมื่อใส่ฟิลเตอร์สีน้ำเงินและให้ปริซึม applanation สัมผัสกับกระจกตา จะเห็นครึ่งวงกลมของฟลูออเรสซีนด้านบนและด้านล่าง ปรับ drum เพื่อให้ขอบด้านในของครึ่งวงกลมทั้งสองสัมผัสกันเพื่ออ่านค่าความดันลูกตา ความกว้างที่เหมาะสมของครึ่งวงกลมคือประมาณ 1/10 ของเส้นผ่านศูนย์กลาง 3.06 มม. (ประมาณ 0.2 มม.) การย้อมมากเกินไปจะทำให้ความกว้างเพิ่มขึ้นและค่าความดันที่วัดได้สูงขึ้น ส่วนการย้อมน้อยเกินไปจะทำให้ค่าความดันต่ำลง

การถ่ายภาพหลอดเลือดจอตาด้วยฟลูออเรสซีน (FFA): ฉีดฟลูออเรสซีน 10% หรือ 20% ทางหลอดเลือดดำ ประมาณ 70% ของฟลูออเรสซีนจับกับโปรตีนในพลาสมา ส่วนที่เหลืออยู่ในรูปอิสระ ใช้ฟิลเตอร์กระตุ้นสีน้ำเงินโคบอลต์เพื่อกระตุ้นฟลูออเรสซีนในจอตาและคอรอยด์ และแสงสีน้ำเงินที่สะท้อนจะถูกดูดซับโดยฟิลเตอร์กั้นสีเหลือง-เขียวเพื่อถ่ายภาพเฉพาะการเรืองแสง ใช้ในการประเมินโรคต่างๆ เช่น จอตาเสื่อมจากเบาหวาน หลอดเลือดดำจอตาอุดตัน จุดรับภาพเสื่อมตามอายุ และจุดรับภาพขาดเลือด ในผู้ป่วยที่การทำงานของไตลดลง ให้ลดขนาดยาลงครึ่งหนึ่งหรือน้อยกว่า

การถ่ายภาพหลอดเลือดจอตาด้วยอินโดไซยานีนกรีน (ICGA): ICG จับกับโปรตีนในพลาสมา 98% จึงแพร่ออกนอกหลอดเลือดได้ยาก เนื่องจากถูกกระตุ้นด้วยแสงอินฟราเรด (ใกล้ย่านอินฟราเรด) จึงสามารถได้ภาพที่ชัดเจนกว่า FFA แม้ในตาที่มีสื่อขุ่นมัว เหนือกว่าในการถ่ายภาพหลอดเลือดคอรอยด์ ใช้ในการประเมินโรคโพลิปอยด์คอรอยด์แวสคิวโลพาที (PCV) หลอดเลือดใหม่ในคอรอยด์ และม่านตาอักเสบส่วนหลัง ICG ถูกขับออกทางตับไปยังน้ำดี ดังนั้นจึงสามารถทำได้แม้ในผู้ป่วยฟอกไต

ลำดับการย้อม: เนื่องจากการย้อมด้วยโรสเบงกอลเองอาจทำให้ความเสียหายของเยื่อบุกระจกตาและเยื่อบุตารุนแรงขึ้น ควรย้อมด้วยฟลูออเรสซีนก่อนเสมอ สังเกตให้เพียงพอ แล้วจึงเปลี่ยนไปย้อมด้วยโรสเบงกอล

ฟลูออเรสซีน: เมื่อใช้เฉพาะที่ ความเข้มข้นต่ำกว่า 3% ปลอดภัย ไม่ระคายเคืองหรือเป็นพิษต่อตา อย่างไรก็ตาม ควรหลีกเลี่ยงการใช้ขณะใส่คอนแทคเลนส์ชนิดอ่อน เพราะจะทำให้เลนส์ติดสี

ลิสซามีนกรีน: ไม่เข้ากันได้กับคอนแทคเลนส์ ดังนั้นหลังการใช้ควรล้างตาด้วยน้ำเกลือ

โรสเบงกอล: มีพิษต่อแสงและสีมักติดค้างอยู่ ดังนั้นควรล้างตาทันทีหลังการตรวจ หยอดยาชาเฉพาะที่ให้เพียงพอก่อนการย้อม

ผลข้างเคียงของการถ่ายภาพหลอดเลือดจอตาด้วยฟลูออเรสซีน

หัวข้อที่มีชื่อว่า “ผลข้างเคียงของการถ่ายภาพหลอดเลือดจอตาด้วยฟลูออเรสซีน”

ในการถ่ายภาพหลอดเลือดจอตาด้วยฟลูออเรสซีน (FFA) เนื่องจากฉีดฟลูออเรสซีนทางหลอดเลือดดำ อาจเกิดผลข้างเคียงทั่วร่างกายได้

หลังการตรวจ ปัสสาวะจะเป็นสีเหลืองสด และผิวหนังเป็นสีเหลืองนาน 2-3 ชั่วโมง อธิบายล่วงหน้าว่าปัสสาวะมีสีนานถึงวันถัดไป พบได้ยากที่ฟลูออเรสซีนจะซึมเข้าสู่ผิวหนังทั้งตัวทำให้เกิดภาวะตัวเหลืองเทียม (pseudojaundice) 2) ในเอกสารทางการแพทย์ มีรายงานผู้เสียชีวิตที่เกี่ยวข้องกับฟลูออเรสซีนทั้งหมด 11 ราย 2) กลไกของผลข้างเคียงที่เสนอ ได้แก่ รีเฟล็กซ์เวกัส การแพ้ยา การปล่อยฮิสตามีน การปล่อยซิมพาเทติกจากเมดัลลาที่เกี่ยวข้องกับความวิตกกังวล และพิษจากการหดเกร็งของหลอดเลือดโดยตรง 2)

Q ผลข้างเคียงของการตรวจหลอดเลือดด้วยฟลูออเรสซีน (FFA) มีอะไรบ้าง?
A

ผลข้างเคียงเล็กน้อย ได้แก่ คลื่นไส้ อาเจียน ลมพิษ และคัน เกิดขึ้นประมาณ 10% ของกรณี ผลข้างเคียงรุนแรง ได้แก่ ภาวะช็อกจากการแพ้รุนแรง (ประมาณ 1 ใน 10,000 คน) และมีรายงานผู้เสียชีวิต หลังการตรวจ ผิวหนังเป็นสีเหลืองและปัสสาวะมีสีเป็นชั่วคราวแต่ไม่เป็นอันตราย พบได้ยากที่มีรายงานภาวะตัวเหลืองเทียมซึ่งผิวหนังทั้งตัวเรืองแสง ผู้ป่วยที่มีประวัติภูมิแพ้ต้องระมัดระวังเป็นพิเศษ

ทริปแพนบลู: หากไม่ล้างออกทันที จะย้อมวุ้นตาส่วนหน้าและแคปซูลหลัง โดยปกติจะหายไปใน 1-2 สัปดาห์ มีความเสี่ยงต่อการย้อมถาวรของเลนส์แก้วตาเทียมอะคริลิกชนิดชอบน้ำ และอย.สหรัฐฯ ไม่แนะนำ

ICG: ต้องกรองเพื่อกำจัดอนุภาคที่ไม่ละลาย การสัมผัสแสงทำให้พิษต่อจอประสาทตาแย่ลง อาจทะลุรูจอตาและทำลายเยื่อบุผิวรงควัตถุจอตา มีรายงานการสะสมถาวรที่หัวประสาทตา ฉีดเข้าส่วนหลังของตาที่เต็มไปด้วยของเหลวเพื่อลดการสัมผัสกับจุดรับภาพ

ไตรแอมซิโนโลน: คงอยู่ในวุ้นตานานถึง 40 วัน มีความเสี่ยงต่อการเกิดต้อกระจกและความดันลูกตาสูง มีรายงานการติดเชื้อในลูกตา หนองในช่องหน้าลูกตา และหนองเทียมในช่องหน้าลูกตา

การเรืองแสง (fluorescence) คือปรากฏการณ์ที่โมเลกุลดูดซับแสงความยาวคลื่นต่ำและปล่อยแสงความยาวคลื่นสูงกว่า ฟลูออเรสซีนดูดซับแสงสีน้ำเงินที่ประมาณ 490 นาโนเมตรและปล่อยแสงเรืองแสงสีเหลือง-เขียวที่ 520-530 นาโนเมตร

ในทางคลินิก การกระตุ้นทำด้วยแสงสีน้ำเงินผ่านฟิลเตอร์โคบอลต์บลู อย่างไรก็ตาม ความยาวคลื่นที่ส่งผ่านสูงสุดของฟิลเตอร์โคบอลต์บลูคือ 390-410 นาโนเมตร ซึ่งไม่ตรงกับความยาวคลื่นดูดกลืนสูงสุดของฟลูออเรสซีน (490 นาโนเมตร) ดังนั้นการกระตุ้นจึงไม่เหมาะสมที่สุด 1) เมื่อติดตั้งฟิลเตอร์ไร้สีน้ำเงิน (ส่งผ่านที่สูงกว่า 520-530 นาโนเมตร) ในระบบสังเกต แสงสีน้ำเงินที่สะท้อนจะถูกตัดออกและคอนทราสต์ของการเรืองแสงดีขึ้น

ฟลูออเรสซีน: ค่าสัมประสิทธิ์การกระจายตัวของน้ำมัน/น้ำคือ 0.5-0.6 โดยหลักการแล้วสามารถผ่านเยื่อหุ้มเซลล์ได้ในระดับหนึ่ง อย่างไรก็ตาม เซลล์ผิวของเยื่อบุกระจกตาปกติมี tight junction ที่พัฒนาดี จึงไม่ผ่านระหว่างเซลล์ นอกจากนี้ยังถูกเคลือบด้วยเมือก ดังนั้นกระจกตาปกติจึงแทบไม่ติดสี ในบริเวณที่เยื่อบุบกพร่อง มันจะเกาะติดกับเยื่อฐานและเรืองแสง และในบริเวณที่การทำงานของสิ่งกีดขวางลดลง มันจะซึมผ่านเมื่อเวลาผ่านไปเป็นการย้อมสีที่ล่าช้า

เยื่อบุตาขาวมีหน้าที่กั้นที่อ่อนแอกว่าเยื่อบุกระจกตา และเมื่อเวลาผ่านไป ฟลูออเรสซีนจะซึมผ่านและย้อมสีทั้งหมด ดังนั้นจึงต้องบันทึกผลทันทีหลังการย้อมสี ความแตกต่างในการซึมผ่านนี้สามารถใช้เพื่อแยกความแตกต่างระหว่างเยื่อบุกระจกตาและเยื่อบุตาขาว (การวาดเส้น Marx การระบุขอบเขตการบุกรุกของเยื่อบุตาขาว)

โรสเบงกอลและลิสซามีนกรีน: ทั้งสองชนิดย้อมสีเยื่อบุกระจกตาและเยื่อบุตาขาวที่ขาดการเคลือบเมือกและเซลล์ที่เสื่อมสภาพ ความสามารถในการย้อมสีของโรสเบงกอลและลิสซามีนกรีนเกือบเท่ากัน แต่ในทางคลินิก ลิสซามีนกรีนระคายเคืองน้อยกว่าและเหมาะสมกว่าสำหรับการตรวจหาความผิดปกติของเยื่อบุตาขาว

ICG: แสดงความสัมพันธ์สูงกับคอลลาเจนชนิดที่ 4 และลามินิน สารเหล่านี้มีความเข้มข้นสูงในเยื่อจำกัดชั้นใน (ILM) ของจอประสาทตา ดังนั้น ILM จึงถูกย้อมสีแบบเลือกสรร เมื่อฉีดเข้าเส้นเลือดดำ 98% จับกับโปรตีนในพลาสมาและไม่แพร่กระจายออกนอกหลอดเลือด ซึ่งเป็นหลักการของ ICGA อย่างไรก็ตาม การสลายตัวทำให้เกิดออกซิเดชันแบบไวต่อตนเอง ซึ่งเป็นสาเหตุของพิษต่อจอประสาทตา

บริลเลียนท์บลู G: ถูกดูดซึมโดย ILM แบบเลือกสรร แต่ไม่ถูกดูดซึมโดยเยื่อเหนือจอประสาทตา (ERM) คุณสมบัตินี้สามารถใช้สำหรับการย้อมสีเชิงลบ (ทำให้ ERM โดดเด่นบนพื้นหลังสีน้ำเงินของ ILM)

การประเมินการย้อมสีฟลูออเรสซีนแบบดั้งเดิมด้วยหลอดกรีดมีความท้าทาย เช่น ข้อจำกัดของคุณสมบัติการกระตุ้นของฟิลเตอร์สีน้ำเงินโคบอลต์ ข้อจำกัดของความลึกโฟกัสเนื่องจากความโค้งของกระจกตา อิทธิพลของสีม่านตา และการพึ่งพาผู้สังเกต 1)

Soifer และคณะได้พัฒนา “ฟลูออเรสซีนคอร์นีโอกราฟี (FCG)” โดยการแปลงโหมดการถ่ายภาพหลอดเลือดด้วยฟลูออเรสซีน (FA) ของเครื่องตรวจเอกซเรย์การเชื่อมโยงกันด้วยแสง (OCT, Heidelberg Spectralis II) เพื่อการถ่ายภาพกระจกตา 1) Spectralis II ใช้เลเซอร์ 490 นาโนเมตรเพื่อการกระตุ้นที่เหมาะสมที่สุด และฟิลเตอร์กั้นที่ประมาณ 525 นาโนเมตรเพื่อถ่ายภาพการเรืองแสงแบบเลือกสรร 1) ด้วยเลนส์ 55° สามารถโฟกัสกระจกตาทั้งหมด (จากลิมบัสถึงลิมบัส) ในภาพเดียว 1)

ในการศึกษาผู้ป่วยตาแห้ง 50 รายและอาสาสมัครสุขภาพดี 10 ราย FCG แสดงความสอดคล้องระหว่างผู้ประเมินสูงเมื่อเทียบกับภาพจากหลอดกรีด ค่าสัมประสิทธิ์สหสัมพันธ์ภายในชั้น (ICC) สำหรับคะแนนการย้อมสีกระจกตาตามมาตรา NEI คือ 0.96 สำหรับ FCG และ 0.86 สำหรับหลอดกรีด (p<0.001) 1)

ในผู้ป่วยที่มีม่านตาสีอ่อน คะแนนภาพจากกล้องจุลทรรศน์ชนิดกรีดต่ำกว่า FCG อย่างมีนัยสำคัญ (6.11 เทียบกับ 8.94; p=0.026) แต่ในม่านตาสีเข้มไม่มีความแตกต่าง (8.16 เทียบกับ 8.25; p=0.961)1) ในกล้องจุลทรรศน์ชนิดกรีด การสะท้อนของแสงสีฟ้าจะรบกวนกับม่านตาสีอ่อนและขัดขวางการตรวจพบ PEE แต่ FCG ไม่ขึ้นอยู่กับสีของม่านตา1)

เนื่องจาก FCG ใช้อุปกรณ์ OCT-FA ที่แพร่หลาย จึงมีศักยภาพในการทำให้การย้อมสีกระจกตาเป็นมาตรฐาน เป็นดิจิทัล และเป็นอัตโนมัติทั้งในงานวิจัยทางคลินิกและการปฏิบัติประจำวัน1)

Q Fluorescein Corneography (FCG) แตกต่างจากวิธีการสังเกตแบบดั้งเดิมอย่างไร?
A

FCG เป็นเทคนิคใหม่ที่ใช้โหมดการตรวจหลอดเลือดด้วยฟลูออเรสซีนของเครื่อง OCT เพื่อถ่ายภาพกระจกตา ด้วยเลเซอร์ 490 นาโนเมตรเพื่อกระตุ้นฟลูออเรสซีนอย่างเหมาะสมและฟิลเตอร์กั้นเพื่อกำจัดแสงสะท้อน จึงสามารถตรวจพบความเสียหายของเยื่อบุกระจกตาได้ด้วยความไวและคอนทราสต์ที่สูงกว่ากล้องจุลทรรศน์ชนิดกรีด ข้อได้เปรียบที่สำคัญคือไม่ขึ้นอยู่กับสีของม่านตาและมีความสอดคล้องระหว่างผู้ประเมินสูง (ICC 0.96 เทียบกับ 0.86)

  1. Soifer M, Azar NS, Blanco R, et al. Fluorescein CorneoGraphy (FCG): Use of a Repurposed Fluorescein Imaging Technique to Objectively Standardize Corneal Staining. Ocul Surf. 2023;27:77-79.
  2. Bertani R, Ferrarez CE, Perret CM, et al. The Fluorescent Patient: An Unusual Effect of Fluorescein Angiography. Cureus. 2021;13(5):e15011.
  3. Wolffsohn JS, Arita R, Chalmers R, Djalilian A, Dogru M, Dumbleton K, et al. TFOS DEWS II Diagnostic Methodology report. Ocul Surf. 2017;15(3):539-574. PMID: 28736342.

คัดลอกข้อความบทความแล้ววางในผู้ช่วย AI ที่คุณต้องการใช้