Flororesein
Hedef: Kornea epitel hasarı ve gözyaşı tabakası
Florosan dalga boyu: 490 nm absorpsiyon → 520-530 nm emisyon
Avantajlar: Çok yönlü ve güvenli. Test kağıdı ile kolay kullanım
Filtre: Kobalt mavisi + mavisiz filtre
Oftalmolojide Kullanılan Boyalar
Bir Bakışta Önemli Noktalar
Section titled “Bir Bakışta Önemli Noktalar”1. Oftalmik Boyalar Nedir?
Section titled “1. Oftalmik Boyalar Nedir?”Oftalmik boyalar (dyes in ophthalmology), göz dokularını veya gözyaşını seçici olarak görünür kılmak için kullanılan ilaçlardır. Poliklinikte tanıdan ameliyathanede doku tanımlamaya kadar göz bakımının her alanında kullanılır.
Kullanım alanlarına göre iki ana gruba ayrılır:
Ön segment tanı boyaları: Floresein, lisamin yeşili ve rose bengal olmak üzere üç ana türü vardır. Kornea ve konjonktiva epitel hasarının tespiti, gözyaşı tabakasının değerlendirilmesi ve kuru göz tanısı için vazgeçilmezdir.
Arka segment ve cerrahi boyaları: Tripan mavisi, indosiyanin yeşili (ICG), triamsinolon asetonid ve brilyant mavisi G’yi içerir. Katarakt cerrahisinde ön kapsül boyama, vitreus cerrahisinde internal limitan membran (ILM) boyama ve floresein anjiyografi (FFA/ICGA) için kullanılır.
Her boya maddesinin kendine özgü boyama özellikleri, floresans dalga boyu ve doku afinitesi vardır. Amaca göre uygun şekilde kullanım önemlidir.
2. Ana boya türleri ve özellikleri
Section titled “2. Ana boya türleri ve özellikleri”Floresein
Section titled “Floresein”Klinikte en yaygın kullanılan boya maddesidir. Turuncu renkli, suda çözünür bir boyadır; kolay bulunur, güvenlidir ve az tahriş edicidir.
Floresans özellikleri: Maksimum absorpsiyon dalga boyu yaklaşık 490 nm’dir (mavi ışık). Uyarıldığında 520-530 nm’de sarı-yeşil floresans yayar. Kobalt mavisi filtre ile mavi ışık altında gözlemlenir.
Boyama prensibi: Floresein hücrelerin kendisini değil, bozulmuş hücre aralıklarını boyar. Normal kornea epitelinde sıkı bağlantılar gelişmiştir ve neredeyse hiç boyanmaz. Epitel defekti veya su geçirgenliğinin arttığı alanlar boyanır.
Form ve konsantrasyon:
| Form | Konsantrasyon | Ana kullanım |
|---|---|---|
| Test şeridi | 0.6-1 mg | Göz yüzeyi boyaması |
| Göz damlası | %0.5-2 | Göz yüzeyi boyaması |
| Enjeksiyon çözeltisi | %10-20 | Floresein fundus anjiyografisi |
Başlıca klinik uygulamalar:
- Kornea epitel hasarının tespiti (ülser, erozyon, enfeksiyon, punktat yüzeyel keratopati)
- Gözyaşı kırılma zamanı (BUT) ölçümü
- Gözyaşı menisküsünün değerlendirilmesi
- Aplanasyon tonometrisi (Goldmann aplanasyon tonometresi)
- Seidel testi (penetran oküler travmada aköz sızıntısının kontrolü)
- Jones boya kaybolma testi (nazolakrimal kanal açıklığının kontrolü)
- Floresein fundus anjiyografisi (FFA)
- Kontakt lens uyum değerlendirmesi
%3’ün altındaki konsantrasyonlarda göz irritasyonuna neden olmaz. Topikal kullanımda oküler toksisite yoktur ve ön segment muayenesinde ilk tercihtir.
Lisamin yeşili
Section titled “Lisamin yeşili”Asidik sentetik bir gıda boyasıdır. Ölü hücreler, dejeneratif hücreler ve müsküler iplikçiklere yüksek afinite gösterir ve çekirdekte lokalize olur. Hücreler arası bağlantıların bozulduğu alanlarda boyanma artar.
Absorpsiyon özellikleri: Görünür spektrumun kırmızı ucunda (630 nm) bir absorpsiyon piki vardır. Kırmızısız filtre kullanıldığında geçen dalga boyu emilir ve boyanan bölge siyah görünür.
Konjonktival epitel hasarını göstermede mükemmeldir ve bulber konjonktivanın boyanmasında tercih edilir. Kapak kenarı epiteliyopatisi (LWE) değerlendirmesi ve Marx çizgisinin gözlenmesinde de faydalıdır.
Rose bengal ile karşılaştırıldığında daha az tahriş edicidir ve hücresel toksisitesi daha düşüktür. Son yıllarda rose bengal’in yerine geçen bir boya olarak yaygınlaşmaktadır. Ancak %2’nin üzerindeki konsantrasyonlarda rahatsızlığa neden olur. Kontakt lenslerle uyumlu değildir, bu nedenle kullanımdan sonra serum fizyolojik ile yıkanmalıdır.
Rose bengal
Section titled “Rose bengal”Flororesein’in halojenli bir türevidir. Müsin kaplaması olmayan kornea ve konjonktiva epitelini ve dejeneratif hücreleri boyar. Ön gözyaşı tabakası tarafından yeterince korunmayan bölgelerde alınır.
Oküler yüzey hastalıklarının erken tespitinde diğer boyalardan üstün olduğu düşünülür ve kuru göz, üst limbik keratokonjonktivit ve epitelyal herpes değerlendirmesinde kullanılmıştır. Herpes simpleks virüsü tip 1’e karşı bir miktar antiviral aktiviteye sahiptir, ancak oftalmik tedavi amaçlı değildir.
Ancak birçok dezavantajı vardır. Fototoksiktir ve %1’lik solüsyon bile damlatıldıktan hemen sonra batma ağrısı ve yanma hissine neden olur. Boyamadan önce topikal anestezi gereklidir. Boya konjonktiva ve göz çevresi cildinde kolayca kalır, muayeneden sonra hızla yıkanmalıdır. Yapay gözyaşının varlığı bile boyanın alımını engeller.
Japonya’da test kağıdı ticari olarak mevcut değildir ve %1’lik kendi hazırlanan solüsyon kullanılır. Avantajlarından daha fazla dezavantajı olduğu için günlük kullanımı azalmakta ve yerini lissamin yeşili veya mavisiz filtre ile flororesein boyamasına bırakmaktadır.
Lissamin yeşili
Hedef: Konjonktiva epitel hasarı, LWE, Marx çizgisi
Absorpsiyon dalga boyu: 630 nm
Avantajları: Konjonktival boyama için en uygun. Rose bengal’den daha az tahriş edici
Filtre: Kırmızısız filtre
Rose Bengal
Hedef: Müsin eksikliği olan alanlar ve dejenere epitel
Özellik: Flororesein’in halojen türevi
Avantajları: Oküler yüzey hastalıklarının erken tespitinde üstün
Dezavantajları: Fototoksik. Tahriş edici, kullanımı azalmakta
Q
Flororesein ve Lissamin yeşili nasıl ayırt edilir?
A
Flororesein, kornea epitel defektlerinin tespiti ve gözyaşı tabakasının değerlendirilmesi için en uygunudur. Lissamin yeşili, konjonktiva epitel defektlerinin gösterilmesinde üstündür ve lid wiper epiteliyopatisi ile Marx çizgisinin değerlendirilmesinde faydalıdır. Kuru gözün hassas değerlendirmesinde, her ikisinin birlikte kullanıldığı “çift vital boyama” yapılabilir. Bir flororesein strip ve iki Lissamin yeşili strip aynı anda uygulanır.
Cerrahi boyalar
Section titled “Cerrahi boyalar”Arka segment ve ön segment cerrahilerinde, görülmesi zor dokuları boyayarak cerrahi işlemlere yardımcı olmak için boyalar kullanılır.
Tripan mavisi: Ön kapsül boyaması (%0.06) için kullanılan FDA onaylı bir boyadır. Kapsülü geçmez, bu nedenle boyanmamış lens korteksine karşı ön kapsül görünür hale gelir. Kırmızı refleksi azalmış gözlerde veya zonülleri zayıf gözlerde özellikle faydalıdır. Kornea endoteli için toksik değildir ve pediatrik katarakt cerrahisinde güvenli kabul edilir. DSEK ve DALK’da da kullanılır. Hidrofilik akrilik GİL’lerin kalıcı olarak boyanabileceğine dikkat edilmelidir.
İndosiyanin yeşili (ICG): Tip IV kollajen ve laminine yüksek afinite gösterir ve ILM boyaması (%0.05-0.5) için kullanılır. İntravenöz enjeksiyonda %98’i plazma proteinlerine bağlanır ve damar dışına yayılmaz; ICG floresan anjiyografide (ICGA) koroid damarlarının görüntülenmesi için kullanılır. Dekompozisyonu retina toksisitesine neden olur ve ışığa maruz kalma ile daha da kötüleşir. Göz içi kullanımı FDA onaylı değildir. İyot içermeyen indosiyanin yeşili (IFCG) daha düşük toksisiteli bir alternatif olarak dikkat çekmektedir.
Triamsinolon asetonid: Sentetik suda çözünmeyen bir steroiddir (40 mg/ml) ve vitreus, internal limitan membran gibi hücresiz dokulara beyaz kristaller olarak bağlanır. Vitrektomi sırasında arka vitreusun görselleştirilmesini ve ayrılmasını kolaylaştırır. Katarakt cerrahisi sırasında arka kapsül rüptüründe ön kamaradaki vitreus iplikçiklerinin doğrulanması için de kullanılabilir. Retina toksisitesi bildirilmemiştir, ancak katarakt ilerlemesi ve göz içi basıncı artışı riski vardır.
Parlak mavi G: ILM’ye seçici afinite gösteren bir boyadır (%0.025) ve ILM boyaması için FDA onaylıdır. ERM’yi boyamadığı için, ERM varlığında ILM’nin mavi arka planına karşı ERM’nin belirginleştiği “negatif boyama” mümkündür. ERM soyulmasından sonra ILM’yi boyamak için yeniden enjekte edilerek “çift boyama”da da kullanılır. ICG’ye kıyasla daha güvenlidir.
Tripan mavisi
Konsantrasyon: Ön kapsül %0.06, arka segment %0.15
Hedef: Ön kapsül, Tenon kapsülü, ERM
FDA: Onaylı
Uyarı: Hidrofilik GİL’lerin kalıcı boyanması
ICG
Konsantrasyon: IV 40 mg/2 ml, ILM %0.05–0.5
Hedef: ILM, koroid damarları (ICGA)
FDA: Göz içi kullanım için onaylanmamıştır
Uyarı: Bozunma nedeniyle retina toksisitesi
Parlak mavi G
Konsantrasyon: ILM boyama %0.025
Hedef: ILM (seçici)
FDA: Onaylı
Özellikler: Negatif boyama ve çift boyama
Ayrıca, bromofenol mavisi (%0.13-0.2, ILM ve ERM boyama, FDA onaylı değil) ve patent mavisi (%0.25, ERM’ye orta, ILM’ye düşük afinite, FDA onaylı değil) bazen vitrektomi sırasında kullanılır. Her ikisinin de ICG’den daha az retina toksisitesine sahip olduğu düşünülmektedir, ancak veriler sınırlıdır.
3. Boyaların klinik uygulaması ve kullanım yöntemi
Section titled “3. Boyaların klinik uygulaması ve kullanım yöntemi”Kornea ve konjonktiva epitel hasarının değerlendirilmesi
Section titled “Kornea ve konjonktiva epitel hasarının değerlendirilmesi”Floresein boyama, ön segment hastalıklarının değerlendirilmesinde en temel test yöntemidir.
Boyama prosedürü ipuçları: Gözyaşı testi olarak floresein boyamada, gözyaşı hacmini mümkün olduğunca değiştirmemek önemlidir. Floresein test şeridine 1-2 damla serum fizyolojik damlatın, iyice çalkalayın ve fazla suyu alın. Şeridi, alt gözyaşı menisküsünün kenarına hafifçe değecek şekilde boyama yapın. Doğrudan göz küresine temas etmemeye dikkat edin. Şeridi dik tutarak damlatılan miktarı daha da azaltabilirsiniz. Anestezik damlalar ince epitel hasarına neden olabileceğinden kullanılmamalıdır.
Boyama hemen sonrası gözlem: Epitel defektleri ve en yüzeydeki epitel dökülme alanları boyanır. Kornea ülserlerinde ülserin sınırları netleşir ve hastalığın şiddeti ile tedavi sürecinin değerlendirilmesinde faydalıdır. Kornea enfeksiyonlarında herpes keratitinin dendritik lezyonları ve akantamoebanın psödodendritik lezyonları net bir şekilde gözlenir.
Gecikmiş boyama: Boyamadan 1 dakika veya daha sonra ortaya çıkan bir olgudur. Epitel defekti olmasa bile, ilaç toksisitesi gibi nedenlerle sıkı bağlantılar (tight junction) bozulduğunda, floresein epitel içine sızarak yayılır ve boyanır. Tekrarlayan kornea epitel erozyonlarında zayıf yapışma bölgeleri, konjonktiva epitelinin korneaya invaze olduğu alanlar ve ilaç toksisitesine bağlı keratopatide bariyer fonksiyon bozukluğu olan bölgeler tespit edilir.
Konjonktiva epitel hasarının gözlemi: Konjonktivada zemin beyaz olduğu için floresein kontrastı azalır. Bu sorun, mavi filtre (520-530 nm ve üzeri dalga boyundaki ışığı geçiren filtre) kullanılarak çözülebilir. Mavi filtre kullanıldığında, konjonktiva epitel hasarı, rose bengal boyamasına eşit veya daha iyi tespit edilebilir ve rose bengal kullanmaya gerek kalmaz.
Skorlama: Kuru göz tanı ve şiddet değerlendirmesinde, 2006 kuru göz tanı kriterlerine göre temporal konjonktiva, kornea ve nazal konjonktiva olmak üzere üç kadranda boyama 0-3 arası dört derece ile değerlendirilir ve toplam 9 puan üzerinden 3 puan ve üzeri anormal kabul edilir. NEI (Ulusal Göz Enstitüsü) skalasında kornea 5 bölgeye ayrılarak 0-15 puan arası değerlendirme yapılır.
Gözyaşı tabakasının değerlendirilmesi
Section titled “Gözyaşı tabakasının değerlendirilmesi”Gözyaşı Kırılma Zamanı (BUT): Flöresein boyaması yapılır, göz kapağı açıldıktan sonra gözyaşı tabakasının kırılmasına kadar geçen süre saniye cinsinden ölçülür. 5 saniyenin altı anormal kabul edilir. Göz kapaklarını hafifçe kapattırıp hızla açtırın, üç kez ölçüm yapın ve ortalamasını alın. Sıkı kapatma meibomian bezlerini sıkıştırarak yağ tabakasını değiştireceğinden dikkatli olun.
Gözyaşı Kırılma Paterni: Son yıllarda TFOD (gözyaşı tabakası odaklı tanı) kavramı yaygınlaşmıştır. BUT ölçümü sırasında gözyaşı tabakasının kırılma paterni 6 tipe ayrılır ve kuru gözün alt tip tanısı ile tedavi seçiminde (TFOT) kullanılır.
| Patern | Özellik | Önerilen Patoloji |
|---|---|---|
| area break | Yaygın yüzeysel kırılma | Gözyaşı azalması tipi |
| line break | Kornea altında dikey çizgi | Gözyaşı hacminde azalma |
| spot break | Noktasal kırılma | Kornea yüzey anormalliği |
Area break aşırı gözyaşı azalmasını gösterir ve punktum tıkacı yerleştirilmesi gerekir. Line break gözyaşı tabakasının incelmesini, spot break ise kornea yüzeyinin ıslanabilirlik anormalliğini yansıtır.
Aplanasyon tonometrisi
Section titled “Aplanasyon tonometrisi”Goldmann aplanasyon tonometresinde floresein boyama zorunludur. Mavi filtre takılıp aplanasyon prizması korneaya temas ettirildiğinde, üstte ve altta floresein yarım daireleri gözlenir. İki yarım dairenin iç kenarları birbirine değecek şekilde tambur ayarlanarak göz içi basıncı okunur. Yarım dairelerin genişliği, 3.06 mm çapın yaklaşık 1/10’u (yaklaşık 0.2 mm) olmalıdır. Aşırı boyama genişliği artırır ve basıncı yüksek ölçtürürken, yetersiz boyama düşük ölçüme neden olur.
Floresein fundus anjiyografisi
Section titled “Floresein fundus anjiyografisi”Floresein fundus anjiyografisi (FFA): %10 veya %20 floresein intravenöz olarak uygulanır. Floreseinin yaklaşık %70’i plazma proteinlerine bağlanır, geri kalanı serbest halde bulunur. Kobalt mavisi uyarıcı filtre ile retina ve koroiddeki floresein uyarılır ve sarı-yeşil bariyer filtre ile yansıyan mavi ışık emilerek sadece floresans görüntülenir. Diyabetik retinopati, retinal ven tıkanıklığı, yaşa bağlı makula dejenerasyonu ve makula iskemisi gibi birçok hastalığın değerlendirilmesinde kullanılır. Böbrek fonksiyonu azalmış hastalarda doz yarıya veya daha aza indirilmelidir.
ICG fundus anjiyografisi (ICGA): ICG %98 oranında plazma proteinlerine bağlanır, bu nedenle damar dışına yayılması zordur. Kızılötesi ışıkla (yakın kızılötesi) uyarıldığı için, saydam ortam bulanıklığı olan gözlerde bile FFA’dan daha net görüntüler elde edilir. Koroid damarlarının görüntülenmesinde üstündür ve polipoidal koroidal vaskülopati (PCV), koroidal neovaskülarizasyon ve arka üveit değerlendirmesinde kullanılır. ICG karaciğerden safra yoluyla atıldığı için diyaliz hastalarında da uygulanabilir.
4. Kullanım uyarıları ve yan etkiler
Section titled “4. Kullanım uyarıları ve yan etkiler”Ön segment boyamada dikkat edilmesi gerekenler
Section titled “Ön segment boyamada dikkat edilmesi gerekenler”Boyama sırası: Rose bengal boyaması kendi başına kornea ve konjonktiva epitel hasarını kötüleştirebileceğinden, önce floresein boyaması yapılmalı ve yeterli gözlem yapıldıktan sonra rose bengal boyamasına geçilmelidir.
Floresein: Topikal kullanımda %3’ün altındaki konsantrasyonlarda göz irritasyonu veya toksisitesi olmaksızın güvenlidir. Ancak yumuşak kontakt lensleri boyadığı için lens takılıyken kullanılmamalıdır.
Lisamin yeşili: Kontakt lenslerle uyumlu olmadığı için kullanım sonrası serum fizyolojik ile yıkanmalıdır.
Rose bengal: Fototoksiktir ve boya kalıcı olma eğilimindedir, bu nedenle muayene sonrası göz hızla yıkanmalıdır. Boyamadan önce yeterli topikal anestezi uygulanmalıdır.
Floresein fundus anjiyografisinin yan etkileri
Section titled “Floresein fundus anjiyografisinin yan etkileri”Floresein fundus anjiyografisinde (FFA) intravenöz floresein uygulandığı için sistemik yan etkiler ortaya çıkabilir.
Testten sonra idrar parlak sarı olur ve ciltte sararma 2-3 saat sürer. Renkli idrarın ertesi güne kadar devam edeceği önceden açıklanmalıdır. Nadiren floresein tüm vücut cildine nüfuz ederek psödojandis (yalancı sarılık) oluşturabilir 2). Tıbbi literatürde floresein ile ilişkili toplam 11 ölüm vakası bildirilmiştir 2). Yan etki mekanizmaları olarak vagal refleks, ilaç alerjisi, histamin salınımı, anksiyeteye bağlı medüller sempatik deşarj ve doğrudan vazospastik toksik etki öne sürülmüştür 2).
Q
Floresein fundus anjiyografisinin (FFA) yan etkileri nelerdir?
A
Hafif yan etkiler arasında bulantı, kusma, ürtiker ve kaşıntı bulunur ve yaklaşık %10’unda görülür. Ciddi yan etkiler arasında anafilaktik şok (yaklaşık 10.000’de 1) yer alır ve ölüm vakaları bildirilmiştir. Testten sonra ciltte sararma ve renkli idrar geçici olarak görülür ancak zararsızdır. Nadiren tüm vücut cildinin floresan gösterdiği psödojandis bildirilmiştir. Alerjik yapılı hastalarda özellikle dikkatli olunmalıdır.
Cerrahi boyalarla ilgili uyarılar
Section titled “Cerrahi boyalarla ilgili uyarılar”Tripan mavisi: Hızlıca yıkanmazsa ön vitreus ve arka kapsülü boyar. Genellikle 1-2 hafta içinde kaybolur. Hidrofilik akrilik GİL’de kalıcı boyanma riski vardır ve FDA tarafından önerilmez.
ICG: Çözünmemiş partikülleri uzaklaştırmak için filtrasyon gerekir. Işığa maruz kalma retina toksisitesini artırır. Makula deliğinden geçerek RPE’ye zarar verebilir. Optik diskte kalıcı birikim bildirilmiştir. Sıvı dolu arka segmente enjekte edilmeli ve makula ile temas en aza indirilmelidir.
Triamsinolon: Vitreus içinde en fazla 40 gün kalır. Katarakt ilerlemesi ve göz içi basıncı artışı riski vardır. Endoftalmi, ön kamara ampiyemi ve psödoampiyem bildirilmiştir.
5. Boyama prensipleri ve floresan özellikler
Section titled “5. Boyama prensipleri ve floresan özellikler”Floresein floresan mekanizması
Section titled “Floresein floresan mekanizması”Floresan, bir molekülün düşük dalga boylu ışığı emip daha yüksek dalga boylu ışık yayması olayıdır. Floresein, 490 nm civarındaki mavi ışığı emer ve 520-530 nm’de sarı-yeşil floresan yayar.
Klinikte kobalt mavisi filtreden geçen mavi ışıkla uyarılır. Ancak kobalt mavisi filtrenin maksimum geçirgenliği 390-410 nm’dir ve floresein maksimum absorbsiyon dalga boyu (490 nm) ile uyuşmaz; uyarım optimal değildir 1). Gözlem yoluna mavisiz filtre (520-530 nm üzerini geçiren) takıldığında yansıyan mavi ışık kesilir ve floresan kontrastı artar.
Her boyanın boyama prensibi
Section titled “Her boyanın boyama prensibi”Floresein: Yağ/su dağılım katsayısı 0.5-0.6 olup, prensipte hücre zarından bir dereceye kadar geçebilir. Ancak normal kornea epitelinin yüzey hücreleri, gelişmiş sıkı bağlantılar (tight junction) nedeniyle hücreler arasından geçmez. Ayrıca müsin ile kaplı olduğu için normal kornea neredeyse hiç boyanmaz. Epitel defekti olan bölgelerde bazal membrana bağlanarak floresans yayar ve bariyer fonksiyonunun azaldığı bölgelerde gecikmiş boyama (delayed staining) olarak zamanla nüfuz eder.
Konjonktiva epiteli, kornea epiteline göre daha zayıf bir bariyer fonksiyonuna sahiptir ve zamanla floresein geçirgen hale gelerek tümünü boyar. Bu nedenle boyamadan hemen sonra bulguların kaydedilmesi gerekir. Bu geçirgenlik farkı kullanılarak kornea epiteli ile konjonktiva epiteli arasında ayrım yapılabilir (Marx çizgisinin belirlenmesi, konjonktiva epitel invazyonunun sınırlarının tespiti).
Rose Bengal ve Lisamin Yeşili: Her ikisi de müsin örtüsünden yoksun kornea ve konjonktiva epitelini ve dejeneratif hücreleri boyar. Rose Bengal ve Lisamin Yeşili’nin boyama özellikleri hemen hemen eşdeğerdir, ancak klinik olarak Lisamin Yeşili daha az tahriş edicidir ve konjonktiva epitel hasarının tespiti için daha uygundur.
ICG: Tip IV kollajen ve laminine yüksek afinite gösterir. Bunlar retina iç limitan membranında (ILM) yüksek konsantrasyonda bulunur, bu nedenle ILM seçici olarak boyanır. İntravenöz enjeksiyonda %98’i plazma proteinlerine bağlanır ve damar dışına yayılmaz, bu ICGA’nın temelini oluşturur. Ancak dekompozisyon (decomposition) nedeniyle kendi kendini uyaran oksidasyon meydana gelir ve retina toksisitesine neden olur.
Brilliant Blue G: ILM’ye seçici olarak alınır ancak epiretinal membrana (ERM) alınmaz. Bu özellik kullanılarak negatif boyama (ILM’nin mavi arka planına karşı ERM’nin belirginleştirilmesi) mümkündür.
6. Güncel Araştırmalar ve Gelecek Perspektifler
Section titled “6. Güncel Araştırmalar ve Gelecek Perspektifler”Floresein Korneografi (FCG)
Section titled “Floresein Korneografi (FCG)”Geleneksel yarık lamba ile floresein boyama değerlendirmesinin, kobalt mavisi filtrenin uyarım özelliklerinin sınırlı olması, kornea eğriliği nedeniyle odak derinliğinin kısıtlı olması, iris renginin etkisi ve gözlemci bağımlılığı gibi sorunları vardır 1).
Soifer ve arkadaşları, optik koherens tomografi (OCT, Heidelberg Spectralis II) floresein anjiyografi (FA) modunu kornea görüntülemesine uyarlayan “Floresein Korneografi (FCG)” yöntemini geliştirdi 1). Spectralis II, 490 nm lazer ile optimal uyarım sağlar ve 525 nm civarındaki bariyer filtre ile floresansı seçici olarak görüntüler 1). 55° lens ile tüm kornea (limbustan limbusa) tek bir görüntüde odaklanabilir 1).
50 kuru göz hastası ve 10 sağlıklı birey üzerinde yapılan bir doğrulama çalışmasında, FCG, yarık lamba görüntülerine kıyasla daha yüksek gözlemciler arası uyum gösterdi. NEI skalasına göre kornea boyama skorunun sınıf içi korelasyon katsayısı (ICC) FCG için 0.96, yarık lamba için 0.86 idi (p<0.001) 1).
Açık renkli irisli hastalarda yarık lamba görüntü skorları FCG’ye göre anlamlı derecede düşüktü (6.11’e karşı 8.94; p=0.026), ancak koyu renkli iriste fark yoktu (8.16’ya karşı 8.25; p=0.961)1). Yarık lambada mavi ışığın yansıması açık renkli iris ile karışarak PEE tespitini engellerken, FCG iris renginden bağımsızdır1).
FCG, yaygın olarak bulunan OCT-FA cihazlarını kullandığı için hem klinik araştırmalarda hem de günlük pratikte kornea boyamasının standardizasyonu, sayısallaştırılması ve otomasyonunu sağlama potansiyeline sahiptir1).
Q
Floresein korneografi (FCG) geleneksel gözlem yöntemlerinden nasıl farklıdır?
A
FCG, OCT cihazının floresan anjiyografi modunu kornea görüntülemesine uyarlayan yeni bir yöntemdir. 490 nm lazerle floreseini optimal şekilde uyarır ve bariyer filtre ile yansıyan ışığı ortadan kaldırarak, yarık lambaya göre daha yüksek hassasiyet ve kontrastla kornea epitel hasarını tespit edebilir. İris renginden etkilenmemesi ve değerlendiriciler arası uyumun yüksek olması (ICC 0.96’ya karşı 0.86) büyük avantajlarıdır.
7. Kaynaklar
Section titled “7. Kaynaklar”- Soifer M, Azar NS, Blanco R, et al. Fluorescein CorneoGraphy (FCG): Use of a Repurposed Fluorescein Imaging Technique to Objectively Standardize Corneal Staining. Ocul Surf. 2023;27:77-79.
- Bertani R, Ferrarez CE, Perret CM, et al. The Fluorescent Patient: An Unusual Effect of Fluorescein Angiography. Cureus. 2021;13(5):e15011.
- Wolffsohn JS, Arita R, Chalmers R, Djalilian A, Dogru M, Dumbleton K, et al. TFOS DEWS II Diagnostic Methodology report. Ocul Surf. 2017;15(3):539-574. PMID: 28736342.