La citología por impresión es una prueba mínimamente invasiva que aplica papel de filtro de acetato de celulosa a la superficie ocular para recolectar células epiteliales superficiales y realizar análisis histológicos, inmunohistoquímicos y de biología molecular.
En 1977, Egbert et al. establecieron la técnica para estudiar las células caliciformes conjuntivales, y posteriormente Tseng la mejoró, lo que llevó a una amplia aplicación clínica para enfermedades de la superficie ocular.
El diagnóstico patológico se divide ampliamente en histología y citología. La citología se considera un complemento de la histología porque no proporciona información sobre la estructura del tejido, pero en el ojo, la citología es muy útil porque la histología es más invasiva.
Q¿En qué se diferencia la citología por impresión de un frotis conjuntival regular (citología por raspado)?
A
La citología por impresión utiliza papel de filtro para desprender el epitelio y recolectar las células como una lámina bidimensional. Los frotis conjuntivales se recolectan raspando con un hisopo de algodón o una espátula de citología. La citología por impresión es superior para evaluar la distribución y densidad de las células caliciformes.
Dado que la citología por impresión es un método de prueba y no una enfermedad que examine “síntomas”, esta sección describe los hallazgos observados en las muestras recolectadas y su significado clínico.
Células epiteliales conjuntivales normales: Planas, con núcleos prominentes y una relación núcleo/citoplasma baja.
Células epiteliales limbares: Más pequeñas y densamente empaquetadas, con una relación núcleo/citoplasma alta.
Células caliciformes conjuntivales normales: Distribuidas por toda la conjuntiva, aumentan de tamaño desde la capa basal hacia la superficie. Se concentran en el cuadrante inferonasal.
Disminución de células caliciformes: El número de células caliciformes disminuye debido a metaplasia epitelial en penfigoide cicatricial ocular, síndrome de Stevens-Johnson, traumatismo químico severo y ojo seco.
Aparición de células epiteliales queratinizadas: La queratinización progresa en queratoconjuntivitis limbica superior, penfigoide cicatricial ocular y síndrome de Stevens-Johnson.
Aparición de células caliciformes en la córnea: En la deficiencia de células madre del limbo corneal ocurre conjuntivalización, y aparecen células caliciformes, normalmente ausentes, en la superficie corneal.
Usando una varilla de vidrio o la punta del tonómetro de aplanación de Goldmann, presione suavemente el filtro contra la superficie ocular durante 5 a 10 segundos.
Mantenga el párpado para que no toque el papel de filtro.
Tenga cuidado, ya que la eficiencia de recolección disminuye cuando se moja con lágrimas.
Por lo general, se recolectan de 1 a 3 capas de epitelio de la superficie ocular.
Mediante una adhesión firme, es posible recolectar varias capas de láminas celulares estratificadas.
Reacción de ácido peryódico de Schiff (PAS): Se realiza después de la fijación con formalina al 10%. Las células caliciformes se tiñen de color rojo púrpura. También se tiñen la membrana basal del epitelio corneal y conjuntival, las células caliciformes, la membrana de Descemet y la cápsula del cristalino.
Tinción de hematoxilina y eosina: Después de la fijación con alcohol etílico al 95%, tratar con hematoxilina + eosina durante 30 segundos → deshidratar con alcohol butílico → aclarar con alcohol butílico + xileno → xileno toda la noche.
Tinción de Papanicolaou: Ampliamente utilizada como método de tinción general en citología.
Tinción de Giemsa: Se utiliza para la evaluación de infecciones. La tinción de Gram se selecciona cuando se sospechan bacterias u hongos.
Para microscopía electrónica: Fijar con glutaraldehído al 1% + rojo de rutenio + formaldehído tamponado con fosfato al 4% → posfijar con osmio → deshidratar → incluir en resina.
Para inmunohistoquímica: Recolectar en membrana de nitrocelulosa → fijar con spray → transferir a un portaobjetos recubierto de poli-L-lisina → disolver la membrana con acetona durante 1 hora → digerir la celulosa a 37°C durante 2 horas → realizar tinción inmunocitoquímica. Nota: No usar xileno, ya que destruye los antígenos de superficie celular.
El sitio de recolección se convierte en un defecto epitelial, lo que puede causar dolor ocular después de regresar a casa. Explique esto al paciente de antemano y recete gotas oftálmicas protectoras de la córnea.
Q¿Puede aparecer dolor después del examen?
A
Debido a que se produce un defecto epitelial en el sitio de recolección, los pacientes pueden sentir dolor ocular después de regresar a casa. Explique esto antes del examen y recete gotas oftálmicas protectoras de la córnea para manejarlo. En la mayoría de los casos, el defecto se cura naturalmente en unos pocos días.
Los hallazgos de la citología por impresión para cada enfermedad se muestran a continuación.
Ojo seco: Las células caliciformes disminuyen debido a una diferenciación anormal (metaplasia escamosa).
Penfigoide cicatricial ocular, síndrome de Stevens-Johnson, lesión química grave: Disminución marcada de células caliciformes y aparición de células epiteliales queratinizadas.
Algunos consideran que la citología por impresión es el estándar de oro para diagnosticar la deficiencia de células madre del limbo corneal (aunque no se usa ampliamente en la práctica clínica).
La aparición de células caliciformes en la córnea es evidencia directa de conjuntivalización y proporciona una base para el diagnóstico. Aplique un filtro en la córnea central para verificar la presencia de células caliciformes.
El estándar de oro para el diagnóstico definitivo de la neoplasia escamosa de la superficie ocular es la biopsia por escisión. La citología por impresión y la citología exfoliativa no pueden distinguir de manera confiable entre lesiones superficiales e invasivas y no se utilizan para el diagnóstico definitivo.
Q¿Puede la citología por impresión diagnosticar definitivamente la neoplasia escamosa de la superficie ocular?
A
La precisión de la predicción del diagnóstico histológico es del 80%, y se requiere una biopsia por escisión para el diagnóstico definitivo. Debido a que la citología por impresión no puede distinguir de manera confiable entre lesiones invasivas e intraepiteliales, se considera una herramienta de diagnóstico auxiliar.
El filtro de acetato de celulosa funciona desprendiendo las capas más superficiales (1 a 3 capas) del epitelio de la superficie ocular junto con las secreciones mucosas.
Cuando el filtro se adhiere firmemente, puede recolectar varias capas de láminas celulares estratificadas, lo que permite la evaluación bidimensional de la morfología, distribución y densidad celular.
En la conjuntiva normal, las células caliciformes se distribuyen por toda la conjuntiva. La inflamación crónica y el ojo seco severo destruyen las células caliciformes y causan metaplasia epitelial (metaplasia escamosa). En la deficiencia de células madre del limbo, el agotamiento de las células madre del limbo conduce a la pérdida de la capacidad de reponer el epitelio corneal, lo que resulta en una “conjuntivalización” donde el epitelio conjuntival cubre la superficie corneal. La identificación de células caliciformes en la córnea mediante citología por impresión es evidencia de esta conjuntivalización.
7. Investigación más reciente y perspectivas futuras (Informes en fase de investigación)
Aunque la citología por impresión es mínimamente invasiva, produce defectos epiteliales en el sitio de recolección, por lo que no es una prueba completamente no invasiva. En los últimos años, se han desarrollado las siguientes nuevas modalidades.
Las características de cada modalidad diagnóstica se muestran a continuación.
Modalidad
Características
Observaciones
Citología por impresión
Permite evaluación de células caliciformes e inmunohistoquímica
Evalúa solo 1–3 capas; defectos epiteliales presentes
Microscopía confocal in vivo
Cuantificación celular con resolución de 1–10 μm
Requiere cooperación del paciente durante 5–15 minutos
La microscopía confocal in vivo permite observar las células corneales y conjuntivales en tejido vivo con una resolución de 1 a 10 μm. Permite la cuantificación celular, pero requiere la cooperación del paciente durante 5 a 15 minutos.
La tomografía de coherencia óptica de alta resolución (OCT de segmento anterior de alta resolución) se considera útil para distinguir entre lesiones invasivas e intraepiteliales mediante la identificación de engrosamiento epitelial (mayor de 120 μm).
Investigación sobre farmacoterapia para la neoplasia escamosa de la superficie ocular
Para la neoplasia escamosa de la superficie ocular se han investigado varios tratamientos farmacológicos, incluyendo mitomicina C al 0.04%, 5-fluorouracilo, interferón alfa-2b, agentes anti-VEGF y cidofovir, pero aún no se han establecido guías oficiales.
En un varón de 24 años con neoplasia escamosa de la superficie ocular sobre un fondo de queratoconjuntivitis vernal crónica, la citología por impresión detectó células epiteliales pleomórficas con pigmento, y se confirmó la reducción tumoral tras dos ciclos de tratamiento con mitomicina C al 0.04%. La biopsia por escisión posterior (incluyendo márgenes de 4 mm, técnica sin contacto, crioterapia y trasplante de membrana amniótica) mostró displasia leve a moderada, y no se observó recurrencia durante 6 meses de seguimiento 1). La citología por impresión también se considera aplicable para el monitoreo después del tratamiento con mitomicina C.
Q¿Existen nuevos métodos de examen que puedan reemplazar la citología por impresión?
A
La microscopía confocal in vivo y la tomografía de coherencia óptica de alta resolución son modalidades no invasivas en desarrollo. La OCT de alta resolución se considera útil para distinguir lesiones invasivas basándose en el engrosamiento epitelial (>120 μm), pero ambas aún contienen elementos en fase de investigación. La citología por impresión conserva su valor único en la capacidad de identificar células caliciformes y realizar tinciones inmunohistoquímicas.
Ghosh Dastidar A, Khedia D, Goel S. Ocular surface squamous neoplasia masquerading as pseudoepitheliomatous hyperplasia in chronic vernal keratoconjunctivitis. GMS Ophthalmol Cases. 2024;14:Doc03.
Tsatsos M, Delimitrou C, Tsinopoulos I, Ziakas N. Update in the Diagnosis and Management of Ocular Surface Squamous Neoplasia (OSSN). J Clin Med. 2025;14:1699.
Siu GDY, Young AL, Cheng LL. Limbal stem cell deficiency: diagnosis and non-surgical management. Ann Eye Sci. 2023;8:13.
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