인간 T세포 백혈병 바이러스 1형(HTLV-1)은 레트로바이러스과에 속하는 바이러스로, 1980년 Poiesz 등에 의해 처음 발견되었습니다. 이는 성인 T세포 백혈병/림프종(ATL), HTLV-1 관련 척수병증(HAM/TSP), 관절병증(HAAP), 기관지염(HAB), 그리고 포도막염(HTLV-1 관련 포도막염; HAU)을 유발합니다3).
HAU는 HTLV-1 보균자에서 발생하는 육아종성 또는 비육아종성 포도막염으로, 유리체 혼탁과 망막 혈관염을 주요 특징으로 합니다. 이는 HTLV-1 감염의 중요한 안과적 합병증 중 하나입니다.
역학:
전 세계적으로 약 2천만 명이 감염된 것으로 추정되며, 대부분은 평생 무증상 보균자로 지냅니다.
HAU의 유병률은 보균자 10만 명당 112.2명으로, HAM/TSP보다 약간 높습니다5).
남녀 비율은 약 2:3으로 여성에서 약간 많고, 단안성인 경우가 약간 더 많습니다.
포도막염 진료 가이드라인(2019)에 따른 전국 역학 조사에서, 2002년 조사에서는 포도막염 전체의 1.5%(규슈 지역에서는 5.1%), 2009년 조사에서는 28예(0.7%)를 차지했습니다2).
HAU는 HAM/TSP와 동반되거나 HTLV-1 감염의 유일한 징후로 나타날 수 있습니다. HAM/TSP 동반 사례에서는 중증 운동 장애가 있는 환자보다 발병 시기가 빠른 환자에서 더 자주 관찰되는 경향이 있습니다. 또한 갑상선 기능 항진증과의 동반 빈도도 높습니다.
콜롬비아 등 라틴 아메리카에도 유행 지역이 있으며, 페루에서는 중간부 포도막염 전체의 29.4%(50세 이상에서는 45.5%)가 HTLV-1 관련이었다는 보고가 있습니다1).
Q일본에서 HTLV-1 관련 포도막염을 의심해야 할 환자는 어떤 사람인가요?
A
규슈, 오키나와, 남부 시코쿠 출신 또는 거주자로서 유리체 혼탁을 주로 하는 포도막염을 보이고 다른 알려진 원인(사르코이드증, 중간부 포도막염 등)이 배제된 경우 의심합니다. 또한 갑상선 기능 항진증이나 HAM/TSP(경직성 마비, 배뇨 장애 등)를 동반하는 경우 HTLV-1 선별 검사를 고려합니다.
망막 혈관 주위 백색 과립 부착(망막 혈관염): 특히 시신경 유두 주위와 혈관 아케이드를 따라 관찰됩니다1).
삼출성 망막맥락막 변화: 한쪽 또는 양쪽 눈에 드물게 나타납니다.
망막 변성, 망막 출혈, 망막전막, 시신경 위축: 중증 또는 만성 사례에서 발생할 수 있습니다.
HAU 안내 침윤 세포의 대부분은 림프구(대부분 CD3+ T 세포)이며, HTLV-1 감염 T 세포에 의한 사이토카인 생성이 염증을 유발합니다9). 베일상 유리체 혼탁은 진단상 중요한 소견으로, 유육종증 및 중간부 포도막염과의 감별에서 고려해야 할 특징적인 소견입니다5).
콜롬비아 증례 시리즈에서 중간부 및 후부 포도막염으로 발현한 중증 사례에서 광범위한 주변부 망막 변성, 황반 부종, 광범위한 망막신생혈관이 관찰되었습니다1). 심각한 망막 병변에 대해 망막 광응고술(레이저 망막 절제술)이 필요할 수 있습니다.
Q유리체 혼탁이 있으면 HTLV-1 관련 포도막염을 의심해야 합니까?
A
유리체 혼탁을 주된 증상으로 하는 질환으로는 특히 사르코이드증 및 중간부 포도막염과의 감별이 중요합니다. 유행 지역(규슈, 오키나와 등) 출신자나 위의 전신 합병증이 있는 경우 적극적으로 HTLV-1 혈청 검사를 시행합니다.
알려진 원인에 의한 포도막염(HSV, VZV, 거대세포바이러스, 결핵, 매독, 톡소포자충, 유육종증, 베체트병, 다발성 경화증 등) 배제
HTLV-1 관련 전신 질환(ATL, HAM/TSP)의 유무 확인
전방수 또는 말초혈액 샘플의 PCR을 통한 HTLV-1 프로바이러스 DNA 검출도 진단 근거가 됩니다. HAU 환자의 전방수에서는 거의 모든 증례에서 HTLV-1 프로바이러스 DNA가 검출됩니다9). HTLV-1 양성이더라도 다른 원인에 의한 포도막염 환자에서는 검출되지 않는 것으로 밝혀져, 감염된 T세포의 안내 관여를 뒷받침합니다.
HAU는 1992년 Mochizuki 등에 의해 처음 보고되었습니다3, 4). 이후 Nakao 등이 큐슈 지역의 임상적 특징을 상세히 기술하였고5), Yoshimura 등이 면역학적 특징을 밝혔습니다6). 1990년대 이후 Kamoi와 Mochizuki를 중심으로 한 일본 그룹이 HAU의 병태, 진단, 치료를 체계화했습니다7, 8, 10).
QHAU 진단 시 어떤 전신 검사가 필요한가요?
A
HAU로 진단되거나 강력히 의심되는 경우, ATL(성인 T세포 백혈병) 및 HAM/TSP(척수병증) 선별검사가 중요합니다. 구체적으로 말초혈액 백혈구 분류, LDH, 가용성 IL-2 수용체(ATL 선별), 신경학적 평가(경직성 마비, 배뇨 장애 등 HAM/TSP 증상), 갑상선 기능 검사(HAU와 동반 빈도 높음)를 시행합니다. HTLV-1 관련 질환은 여러 장기에 영향을 미치므로 혈액내과, 신경내과, 내과와의 협력이 권장됩니다.
HAU는 스테로이드에 잘 반응하지만5, 6), 감량 또는 중단 시 재발이 흔합니다. 콜롬비아의 중증 사례에서는 면역조절 요법(시클로포스파미드 포함)이 사용된 사례가 보고되었습니다1).
예후:
대부분의 증례에서 초기 예후는 양호하지만, 약 60%의 환자에서 재발이 나타납니다5). 재발의 평균 간격은 약 16개월로 알려져 있습니다1). 3년 이내에 90% 이상의 증례가 재발한다는 보고도 있습니다1). 중증 합병증으로 맥락망막변성, 녹내장, 스테로이드 유발 백내장 등이 발생할 수 있습니다1).
QHAU의 재발을 줄이려면 어떻게 해야 합니까?
A
현재 HTLV-1에 대한 확립된 항바이러스 요법은 없으며, 재발 예방을 위한 확실한 수단은 제한적입니다. 재발 시에는 스테로이드 재개 또는 증량이 기본입니다. 장기 스테로이드 치료에 따른 합병증(스테로이드 녹내장, 백내장)에 주의하면서 정기적인 안압 및 수정체 평가가 중요합니다. HAM/TSP와 병발된 경우 신경과와의 협진이 필요합니다.
HTLV-1은 T 림프구(주로 CD4+ T 세포)를 감염시키는 레트로바이러스로, 안조직 자체에는 감염되지 않습니다8). HAU의 안내 염증은 HTLV-1 감염 T 세포에 의해 매개되는 면역 반응으로 인해 발생합니다.
안내 기전:
전방에 떠다니는 세포는 림프구(대부분 CD3+ T 세포, 소수의 대식세포)입니다9). PCR 분석에서 거의 모든 HAU 환자에서 HTLV-1 프로바이러스 DNA가 검출되지만, HTLV-1 양성이더라도 다른 원인에 의한 포도막염 환자에서는 검출되지 않습니다. 이 사실은 감염된 T 세포가 포도막염의 병태에 직접 관여함을 나타냅니다9).
HAU 안내 침윤 세포 유래 HTLV-1 감염 CD4+ T 세포 클론은 다음과 같은 염증성 사이토카인을 대량 생산합니다:
IL-1α, IL-2, IL-3, IL-6, IL-8, IL-10
TNF-α, GM-CSF, IFN-γ
이러한 사이토카인이 안내 면역 반응과 염증을 유발합니다9).
바이러스 양과 염증의 상관관계:
HAU 환자의 HTLV-1 프로바이러스 양은 포도막염이 없는 무증상 보균자보다 유의하게 높습니다10). 말초혈액 단핵구 내 프로바이러스 양은 안내 염증의 강도와 상관관계가 있습니다. 이 관계는 치료적 개입(바이러스 양 감소)을 통한 염증 조절 가능성을 시사합니다.
후안부 병변(망막혈관염, 삼출성 변화)의 기전은 HTLV-1에 감염된 T세포가 안내에서 광범위한 사이토카인을 생성하여 망막혈관 내피세포 손상 및 혈관 투과성 증가를 유발하는 것으로 생각됩니다7).
콜롬비아 등 라틴아메리카 국가에서는 HTLV-1 감염이 ‘neglected infection(간과된 감염증)‘으로 인식이 낮아 HAU의 실태가 충분히 파악되지 않고 있습니다1). 특발성 포도막염 환자의 감별 진단에 HTLV-1 혈청 검사를 포함하는 진단 프로토콜의 확립이 요구됩니다. Kamoi(2023)는 HTLV-1 보균자의 안과적 합병증에 대한 포괄적인 리뷰를 보고하고 정기적인 안과 검진의 중요성을 강조했습니다10).
Manabu Mochizuki, Kazunari Yamaguchi, Kiyoshi Takatsuki, Toshiki Watanabe, Shigeo Mori, Kazuo Tajima. HTLV-I and uveitis. The Lancet. 1992;339(8801):1110. doi:10.1016/0140-6736(92)90699-4.
Mochizuki M, Watanabe T, Yamaguchi K, Yoshimura K, Nakashima S, Shirao M, Araki S, Takatsuki K, Mori S, Miyata N.. Uveitis associated with human T-cell lymphotropic virus type I. Am J Ophthalmol. 1992;114(2):123-129. doi:10.1016/s0002-9394(14)73974-1. PMID:1642286.
Nakao K, Ohba N.. Clinical features of HTLV-I associated uveitis. Br J Ophthalmol. 1993;77(5):274-279. doi:10.1136/bjo.77.5.274. PMID:8100446; PMCID:PMC504504.
Yoshimura K, Mochizuki M, Araki S, Miyata N, Yamaguchi K, Tajima K, Watanabe T.. Clinical and immunologic features of human T-cell lymphotropic virus type I uveitis. Am J Ophthalmol. 1993;116(2):156-163. doi:10.1016/s0002-9394(14)71279-6. PMID:8352299.
Kamoi K, Mochizuki M. HTLV-1 uveitis. Front Microbiol. 2012;3:270.
Terada Y, Kamoi K, Komizo T, Miyata K, Mochizuki M.. Human T Cell Leukemia Virus Type 1 and Eye Diseases. J Ocul Pharmacol Ther. 2017;33(4):216-223. doi:10.1089/jop.2016.0124. PMID:28263674.
Ono A, Mochizuki M, Yamaguchi K, Miyata N, Watanabe T. Immunologic and virologic characterization of the primary infiltrating cells in the aqueous humor of human T-cell leukemia virus type-1 uveitis. Accumulation of the human T-cell leukemia virus type-1-infected cells and constitutive expression of viral and interleukin-6 messenger ribonucleic acids. Investigative ophthalmology & visual science. 1997;38(3):676-89. PMID:9071222.
Kamoi K. Uveitis and Ocular Complications in Human T-Cell Lymphotropic Virus Type 1 Carrier. Viruses. 2023;15(10):2024.