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Neurooftalmología

Características oftálmicas del virus Nipah

1. Características oftálmicas del virus Nipah

Sección titulada «1. Características oftálmicas del virus Nipah»

El virus Nipah (NiV) es un virus ARN monocatenario de sentido negativo, envuelto, perteneciente al género Henipavirus de la familia Paramyxoviridae. Se identificó por primera vez en 1998 en la aldea de Sungai Nipah, Malasia. El reservorio natural son los zorros voladores del género Pteropus, distribuidos en el sudeste asiático, el Pacífico Sur y Australia. Está clasificado como patógeno de nivel de bioseguridad 4 (BSL-4).

La OMS ha registrado 429 casos y 307 muertes en 25 brotes. Las principales regiones epidémicas y su magnitud son las siguientes1, 2).

Región epidémica/añoNúmero de casosTasa de letalidad
Malasia 1998–1999265 casos38.5%
Bangladesh 2001–2015 (17 brotes)261 casos75.9%
India (4 brotes)92 casos73.9%
Filipinas 201417 casos52.9%

Las principales características clínicas de la infección por NiV son síntomas sistémicos como fiebre y encefalitis, pero se sabe que se acompaña de complicaciones oftálmicas y neurooftálmicas. Este artículo se centra en estas características oftálmicas.

Q ¿En qué regiones se propaga el virus Nipah?
A

Se han reportado brotes recurrentes principalmente en el sur y sudeste de Asia. Se han confirmado brotes en Malasia, Bangladés, India y Filipinas, con mayor frecuencia en áreas que se superponen con el hábitat del huésped natural, los murciélagos zorros voladores 2).

2. Síntomas principales y hallazgos clínicos

Sección titulada «2. Síntomas principales y hallazgos clínicos»

Síntomas sistémicos (primeras 2 semanas desde el inicio)

  • Fiebre: La más frecuente, reportada en el 80% de los casos en una revisión sistemática (68 casos)1).
  • Cefalea y mialgia: Cada una reportada en el 47%1).
  • Disnea/SDRA: 44.1%. Alteración del estado de conciencia en proporción similar1).
  • Vómitos: 42.6%1).
  • Síntomas neurológicos: Desorientación, confusión, somnolencia, coma, convulsiones, mioclonías, disfunción cerebelosa.

Síntomas oculares

  • Visión borrosa
  • Visión doble
  • Pérdida transitoria de la visión
  • Fotofobia

Hallazgos neuroftalmológicos en la fase aguda

Sección titulada «Hallazgos neuroftalmológicos en la fase aguda»

En un análisis de 94 casos del brote de Malasia, se confirmaron los siguientes hallazgos.

  • Disminución del nivel de conciencia (GCS <15): observada en el 55%.
  • Reflejo oculocefálico anormal: un indicador de disfunción del tronco encefálico observado en el 87% de los casos fatales.
  • Pupilas puntiformes: un indicador de disfunción del tronco encefálico observado en el 97% de los casos fatales.

Se han reportado varias complicaciones oculares tardías después de la infección por NiV.

Parálisis de nervios craneales

Parálisis del nervio oculomotor (NC3): Observada en 2 de 22 supervivientes. Apareció entre varios meses y 1 año después de la infección inicial. 2 de 4 casos de parálisis craneal tardía fueron parálisis del NC3.

Parálisis del nervio abducens (NC6): Causa de diplopía persistente. Reportada en 3 de 92 casos (4.4%) en una revisión sistemática 1). Puede persistir como secuela después del alta.

La frecuencia de los hallazgos oculares en una revisión sistemática (92 casos) es la siguiente1).

  • Nistagmo: 3 casos (4.4%)
  • Parálisis del sexto nervio craneal: 3 casos (4.4%)
  • Diplopía: 2 casos (2.9%)
  • Pérdida transitoria de la visión, síndrome de Horner, visión borrosa, ptosis bilateral: Cada uno reportado en 1 o más casos
Q ¿Cuándo suelen aparecer los síntomas oculares?
A

Los síntomas oculares incluyen síntomas de fase aguda y síntomas tardíos. La parálisis de nervios craneales tardía puede aparecer varios meses a un año después de la infección inicial. Se ha reportado BRAO que ocurre un mes después del alta hospitalaria, por lo que es importante un seguimiento oftalmológico a largo plazo incluso después de la recuperación.

Patógeno: NiV pertenece a la familia Paramyxoviridae, género Henipavirus, y tiene dos cepas principales: NiV-M (Malasia) y NiV-B (Bangladesh). Los genomas de las dos cepas son 91.8% homólogos, pero NiV-B causa más síntomas respiratorios, más transmisión de persona a persona y tiene una CFR más alta (aproximadamente 75% vs 40%) 2).

Vías de transmisión: Una revisión sistemática encontró que el contacto directo de persona a persona representó el 59.76%, la transmisión zoonótica el 37.8% y los alimentos contaminados el 2.44% 1).

  • Murciélago → Humano: La ingestión de savia de palma datilera o frutas contaminadas es la vía principal.
  • Animal → Humano: Contacto con cerdos infectados (causa principal del brote inicial en Malasia), sacrificio de caballos y consumo de carne de caballo (Filipinas 2014) 2).
  • Transmisión de persona a persona: Gotículas, secreciones respiratorias y contacto con fluidos corporales. Esta ha sido la principal vía de transmisión desde el brote en Bangladés1, 2).

Factores de riesgo:

  • Contacto cercano con cerdos y caballos: Criadores de cerdos, trabajadores de mataderos2).
  • Consumo de savia cruda de palma datilera2).
  • Enfermeros y personal sanitario que atienden a infectados: Riesgo de infección nosocomial1).
Q ¿Cómo se puede prevenir la infección a través de la savia de la palmera datilera?
A

Cubrir el lugar de recolección de la savia para evitar el contacto con murciélagos es efectivo. Además, hervir la savia cruda antes de consumirla puede inactivar el virus. También se recomienda desechar las frutas con marcas de mordeduras de murciélago.

  • RT-PCR (estándar de oro): Recolectar muestras de hisopos faríngeos/nasales, líquido cefalorraquídeo (LCR), orina y sangre. Una revisión sistemática informó su uso en el 81.8% de los casos1).
  • Recolección y transporte de muestras: Recolección segura y embalaje en triple contenedor, transportar a 2–8 °C. Para almacenamiento superior a 48 horas, mantener a -20 °C1).
  • Aislamiento viral: Realizado en instalaciones BSL-4 utilizando líneas celulares Vero. El efecto citopático (ECP) se puede observar en 3 días1).
Método de pruebaPeríodo detectableDuración
IgM ELISA1 semana después del inicio de los síntomasAproximadamente 3 meses
IgG ELISA2 semanas después del inicio8 meses o más

En una revisión sistemática, la IgM ELISA se utilizó en el 35% de los casos y la IgG ELISA en el 22.07% de los casos1).

  • CBC: Son frecuentes la trombocitopenia y la leucopenia.
  • Pruebas de función hepática: Elevación de enzimas hepáticas.
  • Examen de LCR: Aumento del recuento de leucocitos y proteínas.
  • RM cerebral: Múltiples lesiones pequeñas (2–7 mm) hiperintensas en imágenes potenciadas en T2, predominantes en sustancia blanca subcortical y profunda, regiones periventriculares y cuerpo calloso.
  • Evaluación del síndrome de Horner: Se recomienda RM cerebral y ARM de cabeza y cuello (con o sin contraste) (Criterios de idoneidad del ACR).
  • Evaluación de parálisis del NC3: Examen de motilidad ocular en patrón H, examen pupilar con linterna.
  • Evaluación de parálisis del NC6: Verificar abducción en cada ojo.
  • Evaluación del síndrome de Horner: Gotas de apraclonidina al 1% (miosis → midriasis indica positivo). Tras confirmar el síndrome de Horner con gotas de cocaína (4-10%), usar gotas de tiramina (1-2%) o hidroxianfetamina (1%) para diferenciar lesiones preganglionares de posganglionares.
  • Reflejo oculocefálico: Evaluar movimientos oculares conjugados durante la rotación pasiva de la cabeza. Indicador de función del tronco encefálico.
  • BRAO: El examen de fondo de ojo muestra blanqueamiento retiniano segmentario y estrechamiento arterial. Confirmado por OCT y angiografía fluoresceínica (AF).

No existe un tratamiento aprobado para la infección por NiV. El tratamiento sintomático (reposo, hidratación, soporte orgánico) es el pilar del tratamiento. Tampoco se ha establecido un tratamiento específico para las complicaciones oculares.

Es el fármaco antiviral más estudiado para la infección por NiV.

  • Malasia 1999: Un ensayo abierto de 140 casos se correlacionó con una reducción del 36% en la mortalidad2).
  • El segundo estudio del mismo brote (78% de 94 casos usaron ribavirina) no mostró una reducción significativa de la mortalidad2).
  • Kerala 2018: Se informó que la ribavirina oral en 6 casos redujo la mortalidad en un 20% en comparación con el grupo no tratado (mortalidad del 100%)1).
  • Experimentos con animales: No previene la muerte pero puede retrasarla hasta 5 días.
  • El Centro Nacional de Control de Enfermedades de la India recomienda ribavirina para la infección por NiV (no recomendada para profilaxis post-exposición)2).
  • Dosis (basada en criterios de fiebre de Lassa de la OMS): Dosis de carga pediátrica 30 mg/kg, adulto 2000 mg/kg, seguido de 10 días de tratamiento1).

En 1999, se usó en 9 trabajadores de un matadero en Singapur, y 8 sobrevivieron. Sin embargo, la relación causal es desconocida 2). Se considera cuando se sospecha encefalitis 1).

En Kerala, 8 trabajadores de la salud recibieron ribavirina profiláctica y ninguno desarrolló infección por NiV 2).

Q ¿Existe actualmente algún tratamiento eficaz para la infección por el virus Nipah?
A

Actualmente no existen tratamientos aprobados para la infección por NiV. La ribavirina se ha correlacionado con una reducción de la mortalidad en algunos estudios, pero su eficacia no está establecida. El tratamiento sintomático es el pilar de la terapia1, 2).

El NiV ingresa a las células mediante un proceso de dos pasos: unión a receptores del huésped y fusión de membranas.

  • Proteína NiV-G: Se une a los receptores del huésped efrina-B2 y efrina-B3. La efrina-B2 se expresa altamente en células endoteliales, vasculatura asociada al músculo liso, epitelio de las vías respiratorias y neuronas, mientras que la efrina-B3 es abundante en el SNC2).
  • Proteína NiV-F: Media la fusión de membranas independiente del pH. La unión de la proteína G a la efrina desencadena la activación de la proteína F, permitiendo la fusión de membranas2).

Tras la entrada por la vía oral-nasal, ocurre una replicación inicial en el epitelio de las vías respiratorias (tejido linfoide, epitelio bronquiolar). Después de atravesar la barrera epitelial, los leucocitos circulantes transportan el virus a través del heparán sulfato (sin infectar las células en sí)1).

Existen dos mecanismos para la invasión del SNC2).

  1. Diseminación hematógena: Las células endoteliales infectadas y los leucocitos atraviesan la barrera hematoencefálica (BHE).
  2. Vía del nervio olfatorio: Movimiento anterógrado desde la mucosa olfatoria → nervio olfatorio → bulbo olfatorio.

Patología vascular y mecanismos de las complicaciones oculares

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La patología central en la infección por NiV es la vasculitis de pequeños vasos2).

  • Necrosis endotelial e infiltración inflamatoria: El virus infecta directamente las células endoteliales, causando efectos citopáticos.
  • Formación de sincitios: Se forman células gigantes multinucleadas. Característica expresión de glucoproteínas virales en la superficie de las células infectadas1).
  • Placas necróticas: Observadas en casi todos los casos de parénquima cerebral2).

La fisiopatología de las complicaciones oculares es la siguiente.

  • Daño endotelial por vasculitis de pequeños vasos → trombosis, isquemia y microinfartos en el ojo y la vía visual.
  • Parálisis del NC3, parálisis del NC6, síndrome de Horner y BRAO se consideran secundarios a esta vasculitis.

El NiV evade la respuesta inmune innata al inhibir la actividad del interferón, contribuyendo a su alta tasa de mortalidad1).

En el brote inicial de Malasia, la enfermedad progresó rápidamente, con un promedio de 3.3 días desde la fiebre hasta la hospitalización y 9.5 días desde la fiebre hasta la muerte2).


7. Investigación más reciente y perspectivas futuras (Informes en fase de investigación)

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Anticuerpos monoclonales

m102.4 (anticuerpo anti-NiV-G): Se dirige al sitio de unión de efrina-B2/B3 de la proteína NiV-G. Se logró una protección completa en hurones mediante administración intravenosa 10 horas después de la exposición, y también se confirmó la eficacia en monos verdes africanos. Se han completado los ensayos clínicos de fase 12).

h5B3.1 (anticuerpo anti-NiV-F): Un anticuerpo específico de la proteína NiV-F que ha demostrado eficacia en un modelo de hurón2).

Análogos de nucleósidos

Remdesivir (GS-5734): Un profármaco análogo de adenosina nucleósido. Muestra actividad contra NiV in vitro, y la administración posterior a la exposición en monos verdes africanos mejoró la supervivencia. Mientras que el grupo de control murió por insuficiencia respiratoria grave, el grupo tratado solo presentó síntomas respiratorios leves durante 3 meses2).

Favipiravir (T-705): Un inhibidor de la ARN polimerasa dependiente de ARN análogo de purina. Se ha confirmado la eficacia in vitro y en un modelo de hámster sirio2).

HeV-sG-V (vacuna recombinante soluble de la glicoproteína G del virus Hendra) es el candidato más avanzado. Basado en la proteína G del virus Hendra, tiene una identidad de aminoácidos del 83% con NiV-G. Ha demostrado protección durante más de 12 meses en hurones, y los ensayos de fase 1 han confirmado buena seguridad y fuerte inmunogenicidad. Se usa en caballos en Australia como “Equivac HeV” 2).

Otros candidatos principales de vacunas se enumeran a continuación 2).

  • ChAdOx1 NiV-B: Vector de adenovirus de chimpancé. Protección completa en hámsteres contra NiV-B y NiV-M.
  • Vacuna basada en rVSV: Vacuna rVSV que expresa la proteína NiV-G, protección completa en 3 de 3 monos.
  • rMV-NiV-G: Vacuna recombinante contra el sarampión, eficacia confirmada en monos.
  • Vacuna de ARNm (sHeVG): ARNm de la proteína G del virus Hendra, protección parcial en hámsteres.
  • Vacuna VLP: Partículas similares a virus (VLP) de proteínas G/F/M de NiV, confirmadas para inducir protección y producción de anticuerpos neutralizantes en hámsteres.

  1. Alla D, Shah DJ, Adityaraj N, et al. A systematic review of case reports on mortality, modes of infection, diagnostic tests, and treatments for Nipah virus infection. Medicine. 2024;103(40):e39989.
  2. Hauser N, Gushiken AC, Narayanan S, et al. Evolution of Nipah Virus Infection: Past, Present, and Future Considerations. Trop Med Infect Dis. 2021;6(1):24.
  3. Liu L, Pan C, Chen Z, Zhang F, Guan W, Zeng A, et al. Mechanistic insights into Nipah virus 5’ UTR functionality reveal an antiviral target. J Gen Virol. 2025;106(8). PMID: 40880179.

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