ข้ามไปยังเนื้อหา
ม่านตาอักเสบ

จอประสาทตาตายเฉียบพลัน (ม่านตาอักเสบชนิดคิริซาวะ)

1. จอประสาทตาอักเสบชนิดเฉียบพลันเนื้อตายคืออะไร?

หัวข้อที่มีชื่อว่า “1. จอประสาทตาอักเสบชนิดเฉียบพลันเนื้อตายคืออะไร?”

จอประสาทตาอักเสบชนิดเฉียบพลันเนื้อตาย (ARN) คือ โรคจอประสาทตาจากเชื้อเฮอร์ปีส์ชนิดเนื้อตาย รายงานครั้งแรกโดย Urayama และคณะในปี 1971 ภายใต้ชื่อ “ม่านตาอักเสบชนิดคิริซาวะ” 2) มีการอธิบายผู้ป่วย 6 รายว่าเป็นม่านตาอักเสบชนิดรุนแรงที่ไม่เคยพบมาก่อน และกลายเป็นจุดเริ่มต้นระดับโลกของแนวคิดโรค ARN

มีลักษณะเฉพาะคือเกิดในบุคคลที่มีสุขภาพดีและมีภูมิคุ้มกันปกติ ไวรัสที่ก่อโรคคือ HSV-1, HSV-2 และ VZV หลังจากเริ่มเกิดโรค จะเกิดเนื้อตายของจอประสาทตาอย่างรวดเร็วและความดันลูกตาสูง และจัดเป็นภาวะฉุกเฉินทางจักษุวิทยาเพราะทำให้ตาบอดหากไม่รักษา ตามการสำรวจระดับชาติของแนวทางการรักษาม่านตาอักเสบ (2019) มีรายงาน 41 รายในการสำรวจปี 2002 (1.3% ของม่านตาอักเสบทั้งหมด) และ 53 รายในการสำรวจปี 2009 (1.4%) 1)

ในผู้ป่วยที่มีภูมิคุ้มกันบกพร่อง ไวรัสเฮอร์ปีส์ชนิดเดียวกันทำให้เกิดรูปแบบโรคที่แตกต่างกัน จอประสาทตาอักเสบจาก CMV และจอประสาทตาอักเสบชนิดเนื้อตายชั้นนอกแบบลุกลาม (PORN) เป็นโรคของผู้มีภูมิคุ้มกันบกพร่อง ในขณะที่ ARN เป็นโรคของบุคคลที่มีภูมิคุ้มกันปกติ

ทางระบาดวิทยา อุบัติการณ์รายปีคือ 0.5-0.63 ต่อล้านคน (สหราชอาณาจักร) 11) และพบบ่อยที่สุดในผู้ใหญ่ที่มีภูมิคุ้มกันปกติอายุ 50-70 ปี ประมาณสองในสามของกรณีเป็นตาเดียว หนึ่งในสามเป็นตาสองข้าง (BARN) 13) ในช่วงไม่กี่ปีที่ผ่านมา มีรายงานความสัมพันธ์กับสารยับยั้งจุดตรวจสอบภูมิคุ้มกัน (ICI) 12), natalizumab 13) และ dimethyl fumarate (DMF) 14) นอกจากนี้ยังมีรายงานกรณีที่ถูกกระตุ้นโดยการผ่าตัดต้อกระจก 15) หรือการติดเชื้อ COVID-19 16)

Q ม่านตาอักเสบชนิดคิริซาวะคืออะไร?
A

เป็นอีกชื่อหนึ่งของจอประสาทตาอักเสบชนิดเฉียบพลันเนื้อตาย (ARN) ตั้งชื่อโดย Urayama และคณะในปี 1971 เพื่อเป็นเกียรติแก่ครูของพวกเขา Kirisawa Chotoku แม้ว่าชื่อสากล ARN จะเป็นที่ยอมรับแล้ว แต่คำว่าม่านตาอักเสบชนิดคิริซาวะยังคงใช้เป็นครั้งคราว โดยเฉพาะในญี่ปุ่น

ภาพถ่ายจอตาและ OCT ของจอตาตายเฉียบพลัน แสดงรอยโรคจอตาสีขาวเหลือง, บวมของหัวประสาทตา, การเปลี่ยนแปลงของหลอดเลือดแบบอุดตัน, จอตาบวมน้ำ
ภาพถ่ายจอตาและ OCT ของจอตาตายเฉียบพลัน แสดงรอยโรคจอตาสีขาวเหลือง, บวมของหัวประสาทตา, การเปลี่ยนแปลงของหลอดเลือดแบบอุดตัน, จอตาบวมน้ำ
Zhu W, et al. Atypical presentation of acute retinal necrosis mimicking Vogt-Koyanagi-Harada disease leading to misdiagnosis: a case report. Front Med (Lausanne). 2024. Figure 2. PMCID: PMC11620890. License: CC BY.
ภาพถ่ายจอตาแสดงรอยโรคจอตาตายสีขาวเหลืองกระจาย, บวมของหัวประสาทตา, เลือดออกในจอตา, และเส้นเลือดขาว OCT แสดงจอตาหนาตัวและของเหลวในและใต้จอตา ซึ่งเป็นลักษณะทางคลินิกของจอตาตายเฉียบพลัน

อาการเริ่มต้นอย่างฉับพลัน: ตาแดง, ปวดตา, กลัวแสง, ตาพร่า, เห็นจุดลอย, และสายตาลดลง ในระยะแรกจะมีอาการของม่านตาอักเสบส่วนหน้า (ตาแดง, ปวดตา, กลัวแสง) นำมาก่อน จากนั้นสายตาจะลดลงอย่างรวดเร็วเมื่อรอยโรคจอตาดำเนินไป

อาการของส่วนหน้าของตา

ตะกอนที่กระจกตาแบบมันหมู (KP): เรียงตัวหนาแน่นเป็นระเบียบปกคลุมผิวด้านหลังของกระจกตาทั้งหมด หรือเป็นรูปสามเหลี่ยมของ Arlt ด้านล่าง เมื่อเวลาผ่านไปจะมีเม็ดสี

การอักเสบในช่องหน้าตา: พบเซลล์อักเสบและ flare การยึดติดของม่านตาทั้งด้านหน้าและด้านหลังและการฝ่อของม่านตาพบได้น้อย

ความดันลูกตาสูง: ใน ARN จาก HSV พบบ่อยและสูง (เฉลี่ย 35 mmHg) ใน ARN จาก VZV ครึ่งหนึ่งของกรณีมีความดันลูกตาสูง (เฉลี่ย 25 mmHg) แม้ในกรณีที่ไม่มีความดันลูกตาสูง มักมีความแตกต่าง ≥6 mmHg เมื่อเทียบกับตาข้างปกติ

อาการของจอตาและอวัยวะภายในลูกตา

รอยโรคเม็ดเล็กสีขาวเหลืองที่จอตาส่วนปลาย: ปรากฏในหลายตำแหน่ง ขยายตัวอย่างรวดเร็วทั้งในแนวรอบและไปทางขั้วหลัง หยุดขยายตัวหลังจากให้ยาต้านไวรัสประมาณ 1 สัปดาห์ เปลี่ยนเป็นรอยโรคสีขาวแบบแผนที่ที่รวมตัวกัน

หลอดเลือดแดงจอตาอักเสบ: ปลอกหุ้มหลอดเลือดและการอุดตัน เลือดออกตามหลอดเลือดดำรูปกระบองเป็นลักษณะเฉพาะ

อื่นๆ: หัวประสาทตาแดงและบวม, ขุ่นของวุ้นตาจากการอักเสบ เลือดออกตามหลอดเลือดดำรูปกระบอง, ขอบหยักเป็นคลื่น (scalloped edges), และ Kyrieleis’ Arteriolitis (รอยโรคสีขาวเหลืองตามหลอดเลือดแดงเล็ก) ก็เป็นลักษณะเฉพาะเช่นกัน

การตรวจหลอดเลือดด้วยฟลูออเรสซีนแสดงรูปแบบหลอดเลือดแดงอักเสบแบบอุดตันและการเรืองแสงเกินของหัวประสาทตา ในการตรวจ OCT มีรายงานการหนาตัวของคอรอยด์ (pachychoroid) ที่สอดคล้องกับตำแหน่งของจอตาอักเสบแบบตาย 18) ซึ่งกำลังเป็นที่สนใจในฐานะลักษณะการวินิจฉัยใหม่

รอยโรคแบบเม็ดสีเหลืองขาวบริเวณจอประสาทตาส่วนปลาย (บริเวณที่มีการเพิ่มจำนวนของไวรัส) จะขยายตัวเป็นวงรอบไปทางขั้วหลัง แต่การดำเนินโรคจะหยุดภายในประมาณ 1 สัปดาห์หลังจากให้ยาต้านไวรัส หลังจากนั้น รอยโรคแบบเม็ดจะรวมตัวกันกลายเป็นรอยโรคสีขาวหนาแน่นขอบเขตชัดเจนคล้ายแผนที่ (เป็นการรวมกันของความเสียหายโดยตรงจากไวรัสและความผิดปกติของการไหลเวียนจากหลอดเลือดอักเสบชนิดอุดตัน)

ประมาณ 1 สัปดาห์หลังจากเริ่มการรักษา อาการในช่องหน้าม่านตาจะลดลงและความดันลูกตาจะกลับสู่ปกติ แต่อาการอักเสบในช่องหน้าม่านตาอาจคงอยู่นานหลายปี ประมาณ สัปดาห์ที่ 3-4 หลังจากเริ่มมีอาการ จะเกิดภาวะวุ้นตาหลุดแบบไม่สมบูรณ์เนื่องจากวุ้นตากลายเป็นพังผืด ทำให้เกิดการดึงรั้งอย่างรุนแรงจากวุ้นตาบนบริเวณจอประสาทตาที่ตายและบางมาก เกิดเป็นรอยฉีกขาดหลายแห่ง ผลที่ตามมาคือ จอประสาทตาลอกในประมาณ 70% ของผู้ป่วย

ไวรัสที่เป็นสาเหตุกลุ่มผู้ป่วยที่มีลักษณะเฉพาะโรคทางระบบที่เกี่ยวข้อง
HSV-1วัยกลางคนขึ้นไปประวัติหรือภาวะแทรกซ้อนของโรคสมองอักเสบจากเริม
HSV-2ผู้ป่วยอายุน้อยความสัมพันธ์กับเยื่อหุ้มสมองอักเสบ
VZVวัยกลางคนขึ้นไปรายงานภาวะแทรกซ้อนของเยื่อหุ้มสมองอักเสบ
Q การมองเห็นลดลงมากน้อยเพียงใด?
A

ประมาณ 70% ของผู้ป่วยเกิดจอประสาทตาลอก และในที่สุดสองในสามของดวงตามีค่าการมองเห็น 0.1 หรือน้อยกว่า ทำให้เป็นโรคที่มีการพยากรณ์โรคไม่ดี อย่างไรก็ตาม เมื่อเทียบกับดวงตาข้างแรกที่เกิดโรค การขยายตัวของรอยโรคในดวงตาข้างที่สอง (ซึ่งเกิดขึ้นประมาณ 15% ของผู้ป่วย) มีจำกัด และการพยากรณ์โรคด้านการมองเห็นค่อนข้างดี

ARN เกิดจากการกระตุ้นเชื้อไวรัสเริมภายในดวงตาอีกครั้ง หลังการติดเชื้อครั้งแรก ไวรัสจะแฝงตัวอยู่ในปมประสาทไทรเจมินัลและปมประสาทรากหลังของไขสันหลัง จากนั้นจะถูกกระตุ้นอีกครั้งเมื่อสมดุลภูมิคุ้มกันของโฮสต์เปลี่ยนแปลง และเดินทางไปยังดวงตาผ่านแอกซอนของเส้นประสาท

  • HSV-2: พบมากในผู้ป่วยอายุน้อย สัมพันธ์กับประวัติโรคเริมที่อวัยวะเพศ
  • HSV-1 และ VZV: พบมากในผู้ป่วยวัยกลางคนและผู้สูงอายุ สัมพันธ์กับประวัติโรคงูสวัดหรืองูสวัดที่ใบหน้า
  • ARN ที่เกิดจาก HSV-1 มักเกิดในผู้ป่วยที่มีประวัติหรือภาวะแทรกซ้อนของโรคสมองอักเสบจากเริม
  • ARN ที่เกิดจาก HSV-2 และ VZV สัมพันธ์กับเยื่อหุ้มสมองอักเสบ
  • การติดเชื้อเริมในปัจจุบันหรือประวัติ: แม้แต่ประวัติโรคงูสวัดเมื่อกว่า 30 ปีที่แล้วก็สามารถทำให้เกิด ARN จากการกระตุ้น VZV อีกครั้ง ประวัติโรคสมองอักเสบจากเริมก็เป็นสาเหตุได้เช่นกัน
  • สเตียรอยด์เฉพาะที่: การใช้สเตียรอยด์เฉพาะที่ดวงตาเป็นเวลานานอาจเป็นตัวกระตุ้นที่พบได้น้อย
  • อายุมาก: สัมพันธ์กับความเสี่ยงของ ARN จาก VZV
  • ยากดภูมิคุ้มกัน: การลดลงของเซลล์ T CD8+ และภูมิคุ้มกันของเซลล์ T ที่จำเพาะต่อไวรัสถือเป็นกุญแจสำคัญในการกระตุ้นอีกครั้ง และมีรายงานเกี่ยวกับยาต่อไปนี้:
    • natalizumab (ยารักษาโรคปลอกประสาทเสื่อมแข็ง): ยับยั้งการเคลื่อนย้ายเม็ดเลือดขาวเข้าสู่ระบบประสาทส่วนกลาง ทำให้อัตราส่วน CD4/CD8 ลดลง13)
    • DMF (ไดเมทิลฟูมาเรต): ภูมิคุ้มกันของเซลล์ T CD8+ และเซลล์ T ที่จำเพาะต่อ VZV ลดลง 14)
    • ICI (ยาสกัดกั้นจุดตรวจภูมิคุ้มกัน): การกระตุ้น VZV อีกครั้งโดยซินทิลิแมบ 12)
    • การผ่าตัดต้อกระจก: อาจกระตุ้นให้ VZV กลับมาทำงานอีกครั้งในฐานะตัวกระตุ้นทางกายภาพ 15)
    • การติดเชื้อ COVID-19: การกระตุ้น HSV อีกครั้งเนื่องจากภาวะลิมโฟไซต์ T CD3+ CD8+ ต่ำ 16)
  • สมมติฐานว่ามีภูมิคุ้มกันปกติ: หากมีภาวะภูมิคุ้มกันบกพร่อง (การติดเชื้อ HIV หรือการใช้ยากดภูมิคุ้มกัน) ให้พิจารณาจอประสาทตาอักเสบจาก CMV หรือ PORN ก่อน

พยาธิสรีรวิทยาคือความเสียหายของเซลล์โดยตรงจากไวรัส ร่วมกับหลอดเลือดอักเสบอุดตันและจอประสาทตาขาดเลือดจากเซลล์อักเสบที่ถูกเรียกมาเพื่อกำจัดไวรัส ซึ่งเพิ่มความเสียหายของเนื้อเยื่อ 5)

รายการเนื้อหา
1aเซลล์อักเสบในช่องหน้าหรือคราบไขมันคล้ายมันหมูบนผิวด้านหลังของกระจกตา
1bรอยโรคสีเหลืองขาวหนึ่งจุดหรือมากกว่าที่จอประสาทตาส่วนปลาย (ระยะแรกเป็นเม็ดเล็กถึงเป็นปื้น จากนั้นรวมตัวกัน)
1cหลอดเลือดแดงจอประสาทตาอักเสบ
1dจานประสาทตาแดง
1eวุ้นตาขุ่นจากการอักเสบ
1fความดันลูกตาสูง
2aรอยโรคจอประสาทตาขยายตัวอย่างรวดเร็วในแนวเส้นรอบวง
2bเกิดจอประสาทตาฉีกขาดหรือจอประสาทตาลอก
2cหลอดเลือดจอประสาทตาอุดตัน
2dประสาทตาฝ่อ
2eตอบสนองต่อยาต้านไวรัส
3PCR ของเหลวในลูกตาหรืออัตราส่วนแอนติบอดี (ค่า Q) ให้ผลบวกต่อ HSV-1, HSV-2 หรือ VZV อย่างใดอย่างหนึ่ง

การวินิจฉัยที่แน่นอน (กลุ่มที่ยืนยันไวรัส): พบอาการทางตาเริ่มต้น 1a และ 1b ร่วมกับรายการในประวัติโรคอย่างน้อย 1 รายการ และผลตรวจไวรัสเป็นบวก

การวินิจฉัยทางคลินิก (กลุ่มที่ไม่ยืนยันไวรัส): พบอาการอย่างน้อย 4 รายการรวมถึงอาการทางตาเริ่มต้น 1a และ 1b ร่วมกับรายการในประวัติโรคอย่างน้อย 2 รายการ

เกณฑ์นี้ได้รับการพัฒนาและตรวจสอบโดย Takase (2015) และคณะ 4)

  • ข้อบังคับ: จอประสาทตาอักเสบชนิดเนื้อตายที่ส่งผลต่อจอประสาทตาส่วนปลาย
  • ข้อกำหนดเพิ่มเติมอย่างใดอย่างหนึ่งต่อไปนี้:
    1. PCR ของเหลวในช่องหน้าหรือวุ้นตาให้ผลบวกต่อ HSV หรือ VZV
    2. ลักษณะทางคลินิกที่จำเพาะ (จอประสาทตาอักเสบแบบรอบด้านหรือแบบรวมตัว, ปลอกหุ้มหลอดเลือดหรือการอุดตัน, วุ้นตาอักเสบมากกว่าเล็กน้อย)

PCR โดยใช้ของเหลวในลูกตา (ของเหลวในช่องหน้าหรือวุ้นตา) เป็นวิธีการวินิจฉัยที่ดีที่สุดในแง่ความไวและความจำเพาะสำหรับการระบุไวรัส 1) PCR แบบหลายเชื้อ (การแพทย์ขั้นสูง) ช่วยให้ระบุไวรัสหลายชนิดได้และมีประโยชน์ในการวินิจฉัยแยกโรค

อัตราส่วนแอนติบอดี (ค่า Q: สัมประสิทธิ์ Goldmann-Witmer) ยังใช้เป็นการวินิจฉัยเสริม อย่างไรก็ตาม ภายใน 10 วันแรก หลังเริ่มมีอาการ การผลิตแอนติบอดีในลูกตายังไม่เพียงพอ ทำให้เกิดผลลบปลอมได้ง่าย ในช่วงนี้ควรใช้ PCR เป็นหลัก ไม่สามารถใช้ระดับแอนติบอดีในซีรั่มเพียงอย่างเดียวในการวินิจฉัยสาเหตุได้ 1)

โรคภาวะภูมิคุ้มกันลักษณะสำคัญ
PORN (เนื้อตายของจอประสาทตาชั้นนอกแบบลุกลาม)ภาวะภูมิคุ้มกันบกพร่องรุนแรง (เช่น HIV CD4 <50)การอักเสบส่วนหน้าน้อย, เด่นที่ขั้วหลัง, ดำเนินโรคเร็ว
จอประสาทตาอักเสบจาก CMVภาวะภูมิคุ้มกันบกพร่องขยายขนาดช้าๆ ร่วมกับเลือดออก, การอักเสบส่วนหน้าน้อยในช่วงแรก
ท็อกโซพลาสโมซิสที่ตาภูมิคุ้มกันปกติถึงบกพร่องจอประสาทตาอักเสบชนิดแกรนูโลมาที่จำเพาะจุด, แผลเป็นข้างเคียง
มะเร็งต่อมน้ำเหลืองในลูกตา / รอยโรคเนื้องอกวัยกลางคนถึงสูงอายุเซลล์ในวุ้นตา, การแทรกซึมใต้จอประสาทตา, รอยโรคในสมอง. พบไม่บ่อยที่เนื้องอกแพร่กระจายมีลักษณะคล้าย ARN 17)
กรณีไม่ปกติในเด็กเด็กมีรายงานกรณีที่มีจอประสาทตาลอกแบบมีน้ำใต้จอประสาทตาและลักษณะอื่นที่ไม่ปกติ; หากแตกต่างจากภาพทั่วไป ควรขยายการวินิจฉัยแยกโรค 19)
Q เราจะเริ่มการรักษาหรือไม่แม้ว่า PCR จะเป็นลบ?
A

ใช่ หากเข้าเกณฑ์การวินิจฉัยทางคลินิก (กลุ่มที่ไม่ยืนยันไวรัส) เราจะเริ่มการรักษาด้วยยาต้านไวรัสโดยไม่รอผล PCR เนื่องจากอัตราผลลบปลอมของ PCR สูงในช่วง 10 วันแรกของการเกิดโรค และรอยโรคดำเนินไปอย่างรวดเร็ว หลักการคือเริ่มการรักษาทันทีเมื่อวินิจฉัยได้แน่ชัดตามหลักการ ASAP

ตามหลักการ ASAP โดยอ้างอิงแนวทางปฏิบัติของประเทศและชุดการรักษาที่มีรายงาน เริ่มการรักษาสี่เสาหลักโดยเร็วที่สุด 1, 5, 6)

  • A: Aciclovir (การรักษาด้วยยาต้านไวรัส)
  • S: Steroid (การรักษาด้วยยาต้านการอักเสบ)
  • A: Aspirin (การรักษาด้วยยาต้านการแข็งตัวของเลือด)
  • P: Prophylaxis for retinal detachment (การป้องกันจอประสาทตาลอก)
ยาขนาดและวิธีใช้ระยะเวลา
อะไซโคลเวียร์ชนิดฉีด (Zovirax ชนิดฉีด)10 มก./กก. ละลายในสารละลายอย่างน้อย 200 มล. ให้ทางหลอดเลือดดำนาน 2 ชั่วโมงขึ้นไป วันละ 3 ครั้ง2 สัปดาห์แรก
ยาเม็ดวาลาไซโคลเวียร์ (Valtrex) [เมื่อไม่สามารถให้ทางหลอดเลือดดำได้]500 มก. จำนวน 6 เม็ด แบ่งให้ 3 ครั้ง2 สัปดาห์แรก
ยาเม็ดวาลาไซโคลเวียร์ (Valtrex) [ต่อเนื่อง]500 มก. จำนวน 6 เม็ด แบ่งให้ 3 ครั้งเพิ่มอีก 2 สัปดาห์หลังการรักษาเริ่มต้น
ยาหยอดตาเบตาเมทาโซน (Rinderon 0.1%)6 ครั้ง/วัน → 2-4 ครั้ง/วันเมื่อการอักเสบลดลงระหว่างที่มีการอักเสบ
ยาหยอดตาไมดริน เอ็ม (0.4%)1 ครั้ง/วันระหว่างที่มีการอักเสบของช่องหน้าลูกตา
ยาฉีดเบตาเมทาโซน (Rinderon ฉีด)8 มก./วัน × 5 วัน → 6 มก. × 4 วัน → 4 มก. × 4 วัน ให้ทางหลอดเลือดดำ24-48 ชั่วโมงหลังจากเริ่มยาต้านไวรัส
ยาเม็ดฟาโมทิดีน (Gaster 20 มก.)ครั้งละ 2 เม็ด วันละ 2 เวลา เช้า-เย็นระหว่างการให้สเตียรอยด์ทั่วร่างกาย
ยาเม็ดแอสไพรินเคลือบลำไส้ (Bayer Aspirin 100 มก.)ครั้งละ 1 เม็ด วันละ 1 ครั้งนาน 4 สัปดาห์

นอกจากการให้ยาทั่วร่างกายแล้ว มีรายงานว่าการฉีดฟอสคาร์เนท (2.4 มก./0.1 มล.) เข้าแก้วตาร่วมด้วยช่วยให้ผลลัพธ์ทางสายตาดีขึ้นและลดอัตราจอประสาทตาลอก 7, 8) พิจารณาใช้โดยเฉพาะในกรณีรุนแรงหรือเมื่อใกล้จะกระทบต่อการมองเห็น 5)

  • การจี้เลเซอร์กั้นป้องกัน: อาจทำในระยะเม็ดเล็กทางด้านหลังของรอยโรคเนื้อตาย แต่หลักฐานเกี่ยวกับประสิทธิภาพในการป้องกันจอประสาทตาลอกมีจำกัด และยังไม่ได้รับการยืนยัน 5) การจี้ทำเป็น 3-4 แถวถัดจากด้านหลังของรอยโรคเม็ดเล็ก โดยไม่จี้ที่รอยโรคหรือด้านปลาย
  • การตัดแก้วตา: ทำเมื่อเกิดจอประสาทตาลอก (ประมาณ 70%)

ขั้นตอนการผ่าตัด:

  1. การสลายเลนส์ด้วยคลื่นเสียงความถี่สูง
  2. การล้างน้ำวุ้นตาด้วยน้ำยาล้างที่เติมอะไซโคลเวียร์ 40 ไมโครกรัม/มิลลิลิตร (อยู่นอกเหนือการคุ้มครองของประกัน)
  3. การตัดน้ำวุ้นตา (ตัดออกอย่างหมดจดเพื่อป้องกันการดึงรั้งจากน้ำวุ้นตาที่เหลือ)
  4. การจี้แสงในลูกตา: จี้ 3-4 แถวทางด้านหลังของรอยโรคแบบเม็ดทันที (ไม่จี้ที่รอยโรคหรือด้านรอบข้าง)
  5. การรัดรอบด้วยยางซิลิโคนขนาด 9 มม.
  6. การใส่น้ำมันซิลิโคน
Q จำเป็นต้องทำเลเซอร์จี้แสงเพื่อป้องกันเสมอหรือไม่?
A

ไม่จำเป็น บางครั้งอาจทำเลเซอร์กั้น (จี้แสงทางด้านหลังของรอยโรคเนื้อตาย) แต่หลักฐานที่แน่ชัดในการป้องกันจอประสาทตาลอกยังมีจำกัด เมื่อพิจารณาถึงความเปราะบางของเนื้อตายและแรงดึงรั้ง หากเกิดจอประสาทตาลอก การผ่าตัดน้ำวุ้นตา (ใส่น้ำมันซิลิโคน) เป็นวิธีการรักษาที่ถาวร

6. พยาธิสรีรวิทยาและกลไกการเกิดโรคโดยละเอียด

หัวข้อที่มีชื่อว่า “6. พยาธิสรีรวิทยาและกลไกการเกิดโรคโดยละเอียด”

ARN เกิดจากเชื้อไวรัสเริม (HSV-1, HSV-2, VZV) ติดเชื้อแฝงอยู่ที่ปมประสาทไทรเจมินัลหรือปมประสาทรากหลังของไขสันหลัง จากนั้นถูกกระตุ้นอีกครั้งโดยปัจจัยบางอย่าง (ภูมิคุ้มกันต่ำ อายุมากขึ้น ความเครียด ฯลฯ) และเดินทางไปถึงลูกตา

  1. การทำลายเซลล์โดยตรงจากไวรัส: การเพิ่มจำนวนของไวรัสภายในเซลล์จอประสาทตาและการสลายเซลล์ บริเวณที่ไวรัสเพิ่มจำนวนจะสังเกตเห็นเป็นรอยโรคแบบเม็ดสีเหลืองขาวด้วยตาเปล่า

  2. ภาวะขาดเลือดจากหลอดเลือดอักเสบอุดตัน: การแทรกซึมของเซลล์อักเสบเพื่อกำจัดไวรัสทำให้เกิดหลอดเลือดอักเสบรอบหลอดเลือดแดงจอตา นำไปสู่การอุดตันของหลอดเลือดและจอตาขาดเลือด อาการบวมน้ำและความผิดปกติของการไหลเวียนจากหลอดเลือดอักเสบอุดตันทำให้เกิดรอยโรคสีขาวคล้ายแผนที่ขอบเขตชัดเจน

การรวมกันของกลไกทั้งสองนี้ทำให้เกิดเนื้อตายเร็ว จอตาบางลง และเปราะบางมากขึ้น 5)

ในสัปดาห์ที่ 3-4 หลังเริ่มมีอาการ วุ้นลูกตาจะเกิดการจัดระเบียบและเกิดภาวะวุ้นลูกตาหลุดออกจากจอตาส่วนหลังแบบไม่สมบูรณ์ ในเวลานี้ แรงดึงที่รุนแรงจากวุ้นลูกตาบนจอตาที่เนื้อตายบางและเปราะบางอย่างมากทำให้เกิดรอยฉีกขาดหลายจุด การรวมกันของความบางของบริเวณเนื้อตายและแรงดึงทำให้เกิดจอตาลอกในประมาณ 70% ของกรณี

  • ARN จาก HSV-1 มีแนวโน้มเกิดขึ้นเมื่อมีประวัติหรือโรคร่วมของสมองอักเสบจากเริม และอาจแสดงเป็นอาการทางตาหลังสมองอักเสบ
  • ARN จาก HSV-2 มีความสัมพันธ์กับเยื่อหุ้มสมองอักเสบ โดยเฉพาะต้องระวังในผู้ป่วยอายุน้อย
  • ARN จาก VZV มีระดับของหลอดเลือดอักเสบอุดตันและความถี่ของการเกี่ยวข้องกับเส้นประสาทตาสูงกว่า ARN จาก HSV และพยากรณ์โรคแย่กว่า
  • ความเสี่ยงของการเกิดในตาอีกข้างประมาณ 15% ช่วงเวลาการเริ่มต้นระหว่างสองตามักอยู่ใน 1 เดือน แต่การขยายของรอยโรคในตาที่เกิดทีหลังมีจำกัด และพยากรณ์การมองเห็นดีกว่าตาแรก

กลไกพิเศษของ ARN ที่เกี่ยวข้องกับยากดภูมิคุ้มกันและโรคติดเชื้ออุบัติใหม่

หัวข้อที่มีชื่อว่า “กลไกพิเศษของ ARN ที่เกี่ยวข้องกับยากดภูมิคุ้มกันและโรคติดเชื้ออุบัติใหม่”
  • ARN ที่เกี่ยวข้องกับ ICI (ยับยั้ง PD-1/PD-L1): สันนิษฐานว่าเป็นเหตุการณ์ไม่พึงประสงค์ทางภูมิคุ้มกัน (กลไกคล้าย IRIS) ความผิดปกติของความทนทานต่อตนเอง และการสูญเสียเอกสิทธิ์ทางภูมิคุ้มกันของตา 12)
  • ARN ที่เกี่ยวข้องกับ COVID-19: การลดลงอย่างมีนัยสำคัญของลิมโฟไซต์ T CD3+ CD8+ จากการติดเชื้อ SARS-CoV-2 เชื่อว่าส่งเสริมการกระตุ้น HSV ที่แฝงอยู่ 16)
  • ARN ที่เกี่ยวข้องกับ natalizumab: การยับยั้งการเคลื่อนย้ายเม็ดเลือดขาวเข้าสู่ระบบประสาทส่วนกลางทำให้อัตราส่วน CD4/CD8 ลดลง ลดภูมิคุ้มกันจำเพาะต่อไวรัส 13)
  • ARN ที่เกี่ยวข้องกับ DMF (dimethyl fumarate): การลดลงของเซลล์ T CD8+ และภูมิคุ้มกันระดับเซลล์จำเพาะต่อ VZV เพิ่มความเสี่ยงต่อการกระตุ้น 14)

7. งานวิจัยล่าสุดและแนวโน้มในอนาคต (รายงานในระยะวิจัย)

หัวข้อที่มีชื่อว่า “7. งานวิจัยล่าสุดและแนวโน้มในอนาคต (รายงานในระยะวิจัย)”

ประสิทธิผลของการรักษาเหนี่ยวนำด้วยวาลาไซโคลเวียร์ชนิดรับประทาน

หัวข้อที่มีชื่อว่า “ประสิทธิผลของการรักษาเหนี่ยวนำด้วยวาลาไซโคลเวียร์ชนิดรับประทาน”

การรักษามาตรฐานเดิมคือการรักษาในโรงพยาบาลด้วยอะไซโคลเวียร์ทางหลอดเลือดดำ แต่มีรายงานชุดผู้ป่วยที่จอประสาทตาอักเสบแบบแอคทีฟทุเลาลงด้วยวาลาไซโคลเวียร์ชนิดรับประทานหรือแฟมไซโคลเวียร์ 9) รายงานของ AAO ยังระบุว่าการรักษาเริ่มต้นด้วยยาต้านไวรัสชนิดรับประทานหรือทางหลอดเลือดดำมีประสิทธิผล แต่ในกรณีรุนแรงหรือขึ้นอยู่กับสภาพร่างกาย มักให้ความสำคัญกับการให้สารน้ำทางหลอดเลือดดำ 5)

ในการศึกษาย้อนหลังของการฉีดฟอสคาร์เน็ตในน้ำวุ้นตา (2.4 มก./0.1 มล.) ร่วมกับการรักษาทั่วร่างกาย พบว่าการเพิ่มการฉีดในน้ำวุ้นตาอาจช่วยพยากรณ์การมองเห็นได้ดีขึ้น โดยเฉพาะใน ARN จาก VZV 7) สามารถบรรลุความเข้มข้นเฉพาะที่สูงในขณะที่ลดความเป็นพิษต่อร่างกาย และการกำหนดมาตรฐานของการรักษาเหนี่ยวนำในกรณีรุนแรงเป็นหัวข้อวิจัย

การติดตามปริมาณไวรัสด้วย PCR เชิงปริมาณของของเหลวในลูกตาได้รับการรายงานว่าช่วยในการวินิจฉัยและประเมินการตอบสนองต่อการรักษา 10) อย่างไรก็ตาม ยังมีความท้าทายในการนำมาใช้ในเวชปฏิบัติประจำวัน เช่น การรุกล้ำของการเก็บตัวอย่างซ้ำและการกำหนดมาตรฐานของวิธีการวัด

ศักยภาพของ pachychoroid ในฐานะเครื่องหมายกิจกรรมของ ARN

หัวข้อที่มีชื่อว่า “ศักยภาพของ pachychoroid ในฐานะเครื่องหมายกิจกรรมของ ARN”

ความหนาของคอรอยด์ (pachychoroid) ในการตรวจ OCT ได้รับรายงานว่าเป็นสิ่งที่สะท้อนกิจกรรมของจอประสาทตาตายเฉียบพลัน ในกรณี ARN ทุติยภูมิจาก VZV พบว่า pachychoroid ในการตรวจ OCT เกิดขึ้นสอดคล้องกับบริเวณจอประสาทตาอักเสบแบบเนื้อตาย และชี้ให้เห็นถึงศักยภาพในการใช้เป็นเครื่องหมายกิจกรรมระหว่างการติดตามผลหลังการรักษา 18)

มีรายงานผู้ป่วย ARN จาก EBV หนึ่งรายที่ดื้อต่ออะไซโคลเวียร์และแกนซิโคลเวียร์ตอบสนองต่อฟอสคาร์เน็ต 4800 มก./วัน ทางหลอดเลือดดำ 20) เมื่อสาเหตุมาจากไวรัสอื่นที่ไม่ใช่ VZV/HSV การรักษามาตรฐานอาจไม่ได้ผลดี และการระบุไวรัสก่อโรคด้วย PCR มีความสำคัญในการกำหนดแผนการรักษา

ความสัมพันธ์ระหว่างยากดภูมิคุ้มกัน โรคติดเชื้ออุบัติใหม่ และ ARN

หัวข้อที่มีชื่อว่า “ความสัมพันธ์ระหว่างยากดภูมิคุ้มกัน โรคติดเชื้ออุบัติใหม่ และ ARN”

ด้วยการแพร่หลายของสารยับยั้งจุดตรวจภูมิคุ้มกัน จำเป็นต้องระวังความเสี่ยงของการเกิด ARN จากการกระตุ้น VZV อีกครั้ง 12) นอกจากนี้ มีรายงาน ARN หลังการติดเชื้อ COVID-19 จากการกระตุ้น HSV/VZV อีกครั้งอย่างต่อเนื่อง และ ARN ที่เกี่ยวข้องกับการรักษาด้วยการกดภูมิคุ้มกันมีแนวโน้มเพิ่มขึ้นในอนาคต 14)16)

  1. 日本眼炎症学会ぶどう膜炎診療ガイドライン作成委員会. ぶどう膜炎診療ガイドライン. 日眼会誌. 2019;123(6):635-796.

  2. Urayama A, Yamada N, Sasaki T, et al. Unilateral acute uveitis with periarteritis and retinal detachment. Jpn J Clin Ophthalmol. 1971;25:607-619.

  3. Standardization of Uveitis Nomenclature (SUN) Working Group. Classification criteria for acute retinal necrosis syndrome. Ophthalmology. 2021;128(12):1974-1980. doi:10.1016/j.ophtha.2021.11.011. PMID: 34807625.

  4. Takase H, Okada AA, Goto H, et al. Development and validation of new diagnostic criteria for acute retinal necrosis. Jpn J Ophthalmol. 2015;59(1):14-20. doi:10.1007/s10384-014-0362-0. PMID: 25492579.

  5. Schoenberger SD, Kim SJ, Thorne JE, et al. Diagnosis and Treatment of Acute Retinal Necrosis: A Report by the American Academy of Ophthalmology. Ophthalmology. 2017;124(3):382-392. doi:10.1016/j.ophtha.2016.11.007. PMID: 28094044.

  6. Tibbetts MD, Shah CP, Young LH, et al. Treatment of acute retinal necrosis. Ophthalmology. 2010;117(4):818-824. doi:10.1016/j.ophtha.2009.09.001. PMID: 20110127.

  7. Wong R, Pavesio CE, Laidlaw DA, et al. Acute retinal necrosis: the effects of intravitreal foscarnet and virus type on outcome. Ophthalmology. 2010;117(3):556-560. doi:10.1016/j.ophtha.2009.08.003. PMID: 20031221.

  8. Flaxel CJ, Yeh S, Lauer AK. Combination systemic and intravitreal antiviral therapy in the management of acute retinal necrosis syndrome. Ophthalmic Surg Lasers Imaging Retina. 2013;44(6):521-526.

  9. Aizman A, Johnson MW, Elner SG. Treatment of acute retinal necrosis syndrome with oral antiviral medications. Ophthalmology. 2007;114(2):307-312. doi:10.1016/j.ophtha.2006.06.058. PMID: 17123607.

  10. Asano S, Yoshikawa T, Kimura H, et al. Monitoring herpesvirus DNA in three cases of acute retinal necrosis by real-time PCR. J Clin Virol. 2004;29(3):206-209. PMID: 15002491.

  11. Cochrane TF, Silvestri G, McDowell C, et al. Acute retinal necrosis in the United Kingdom: results of a prospective surveillance study. Eye (Lond). 2012;26(3):370-377.

  12. Wang P, An M, Zhang M, et al. Acute retinal necrosis in a patient with cervical malignant tumor treated with sintilimab: a case report and literature review. Front Immunol. 2024;15:1301329.

  13. Cheraqpour K, Ahmadraji A, Rashidinia A, et al. Acute retinal necrosis caused by co-infection with multiple viruses in a natalizumab-treated patient: a case report and brief review of literature. BMC Ophthalmol. 2021;21:337.

  14. Paisey C, Curtin K, Epps SJ, et al. Acute retinal necrosis associated with dimethyl fumarate. Mult Scler J. 2025;31(12):1506-1508.

  15. Luo T, Wang L, Zhang L, et al. Acute retinal necrosis following cataract surgery: a case of VZV reactivation and successful management. BMC Ophthalmol. 2025;25:131.

  16. Gonzalez MP, Rios R, Pappaterra M, et al. Reactivation of acute retinal necrosis following SARS-CoV-2 infection. Case Rep Ophthalmol Med. 2021;2021:7336488.

  17. Rahman EZ, Shah P, Shah R. Metastatic squamous cell carcinoma masquerading as acute retinal necrosis. Am J Ophthalmol Case Rep. 2023;32:101934.

  18. Harbeck K, Ericksen C, Johnson W, et al. Pachychoroid associated with acute retinal necrosis secondary to varicella zoster virus. J Vitreoretinal Dis. 2024;8(2):196-199.

  19. Perhiar BA, Siddiqui MAR, Ibrahim S. Acute retinal necrosis with exudative retinal detachment in a child. BMJ Case Rep. 2021;14:e245984.

  20. Suzuki K, Namba K, Hase K, et al. A case of Epstein-Barr virus acute retinal necrosis successfully treated with foscarnet. Am J Ophthalmol Case Rep. 2022;25:101363.

คัดลอกข้อความบทความแล้ววางในผู้ช่วย AI ที่คุณต้องการใช้