ประเด็นสำคัญของโรคนี้
โรคตาจากการปลูกถ่ายอวัยวะเทียบกับโฮสต์ (oGVHD ) เป็นอาการทางตาของ GVHD เรื้อรังที่เกิดขึ้นหลังการปลูกถ่ายเซลล์ต้นกำเนิดเม็ดเลือดจากผู้บริจาค (AHSCT)
การวิเคราะห์อภิมานพบว่าความชุกโดยรวมของ oGVHD อยู่ที่ 37.8% และเกิดขึ้นในผู้ป่วย HSCT 40–60% 1) 4)
โรคกระจกตา และเยื่อบุตา แห้ง (KCS) พบใน oGVHD 69–77% และเป็นอาการที่เด่นชัดที่สุด 1)
ความผิดปกติของต่อมไมโบเมียน (MGD ) มีความชุกสูงถึง 47–68% ทำให้มีลักษณะของตาแห้ง แบบผสม 5)
การวินิจฉัยใช้เกณฑ์ NIH และเกณฑ์ ICCGVHD โดยการประเมินพื้นผิวตาก่อนปลูกถ่ายเป็นสิ่งสำคัญ
การรักษามาตรฐานคือแนวทางแบบเป็นขั้นตอน ได้แก่ การใช้น้ำตาเทียม การรักษาด้วยยาต้านการอักเสบ และการปกป้องผิวตาผิวตา
การวิเคราะห์โปรไฟล์ไซโตไคน์ในน้ำตาเป็นที่ศึกษาวิจัยในฐานะไบโอมาร์กเกอร์ที่มีแนวโน้มดี2)
การรักษาแบบใหม่ที่คาดหวัง ได้แก่ เซลล์ต้นกำเนิดมีเซนไคม์ (MSC) และเอกโซโซมของมัน รวมถึงสารยับยั้ง JAK 1) 3) 6)
โรคตาจากการปลูกถ่ายอวัยวะเทียบกับโฮสต์ (oGVHD : ocular graft-versus-host disease) คืออาการทางตาของโรคการปลูกถ่ายอวัยวะเทียบกับโฮสต์ (GVHD) ที่เกิดขึ้นหลังการปลูกถ่ายเซลล์ต้นกำเนิดเม็ดเลือดแบบออลโลจีนิก (AHSCT) GVHD เป็นปฏิกิริยาการอักเสบทั่วร่างกายที่มากเกินไปซึ่งเกิดจากทีเซลล์จากผู้บริจาคโจมตีเนื้อเยื่อปกติของโฮสต์ โดยส่งผลกระทบต่ออวัยวะต่างๆ เช่น ผิวหนัง ตับ ทางเดินอาหาร ปอด และตา
oGVHD เกิดขึ้นในผู้ป่วย HSCT ร้อยละ 40–60 1) การวิเคราะห์อภิมานจาก 17 การศึกษาและผู้ป่วย 4,501 รายพบว่าความชุกโดยรวมของ oGVHD อยู่ที่ร้อยละ 37.8 โดยความชุกตามเกณฑ์ NIH อยู่ที่ร้อยละ 46.7 และตามเกณฑ์ ICCGVHD อยู่ที่ร้อยละ 33.7 4) มีรายงานการทบทวนวรรณกรรมว่าผู้ป่วย GVHD เรื้อรังร้อยละ 60–90 มีอาการทางตา 5) หลังการปลูกถ่ายประมาณ 6–24 เดือน ผู้ป่วยมากกว่าร้อยละ 50 มีอาการตาแห้ง ซึ่งอาจรุนแรงได้ 9) oGVHD เฉียบพลันเกิดขึ้นในผู้ป่วย allo-HSCT ประมาณร้อยละ 7.2 7)
GVHD เดิมถูกจำแนกเป็นชนิดเฉียบพลันหากเกิดขึ้นภายใน 100 วันหลังปลูกถ่าย และชนิดเรื้อรังหากเกิดขึ้นหลังจาก 100 วัน ปัจจุบันการจำแนกไม่ได้ขึ้นอยู่กับระยะเวลา แต่ขึ้นอยู่กับรอยโรคเฉพาะของเนื้อเยื่อ อวัยวะเป้าหมายหลักของ GVHD เฉียบพลันคือผิวหนัง ทางเดินอาหาร และตับ ส่วน GVHD เรื้อรังอาจทำให้เกิดรอยโรคเฉพาะในอวัยวะที่กว้างขึ้น เช่น ช่องปาก ตา ปอด พังผืด และอวัยวะสืบพันธุ์12)
Q
oGVHD เฉียบพลันและเรื้อรังแตกต่างกันอย่างไร?
A
oGVHD เฉียบพลันมีการบุกรุกที่กระจกตา และเยื่อบุตา เป็นหลัก โดยมีลักษณะเด่นคือเยื่อบุตาอักเสบ แบบมีเยื่อเทียมและผื่นจุดตามผิวหนังรอบดวงตา1) ส่วน oGVHD เรื้อรังทำให้เกิดความเสียหายที่กว้างขวางและต่อเนื่องมากขึ้น เช่น โรคตาแห้ง รุนแรงจากการพังผืดของต่อมน้ำตาและต่อมไมโบเมียน การเปลี่ยนแปลงแบบแผลเป็นของเยื่อบุตา และแผลที่กระจกตา oGVHD เรื้อรังมีการพังผืดของเนื้อเยื่อในระยะยาว และพยากรณ์โรคแย่กว่า1)
ตาแห้ง : พบบ่อยที่สุด เกิดจากการพังผืดและการทำลายของต่อมน้ำตา
ความรู้สึกมีสิ่งแปลกปลอม : ร่วมกับความเสียหายของเยื่อบุกระจกตา
ปวดตา : จากการอักเสบที่ผิวตาอย่างต่อเนื่อง
กลัวแสง : อาการร่วมของการอักเสบของส่วนหน้าของตา ในเด็กอาจเป็นอาการหลัก
ตามัว : ร่วมกับความเสียหายของเยื่อบุกระจกตา และความไม่เสถียรของฟิล์มน้ำตา
ภาวะเลือดคั่งของเยื่อบุตา : สะท้อนการอักเสบเรื้อรังของเยื่อบุตา
ภาวะน้ำตาไหล : เกิดจากการหลั่งน้ำตาแบบสะท้อนที่เพิ่มขึ้น
โรคเยื่อบุตา และกระจกตา แห้ง (KCS) พบได้ใน 69–77% ของผู้ป่วย oGVHD และเป็นลักษณะที่เด่นชัดที่สุด1) การแทรกซึมของทีเซลล์รอบท่อต่อมน้ำตาทำให้เกิดการอักเสบและพังผืด ซึ่งทำลายหน่วยหลั่งของต่อม1)
oGVHD ชนิดเฉียบพลัน
เยื่อบุตาอักเสบ แบบมีเยื่อเทียม : เกิดเยื่อเทียมบนเยื่อบุตา หนังตา5)
เยื่อบุตาอักเสบ แบบมีเลือดออก : เยื่อบุตา แดงร่วมกับมีสารคัดหลั่งชนิดเซรุ่มเลือดปน5)
การหลุดลอกของเยื่อบุกระจกตา : พบในรายที่มีอาการรุนแรง5)
หนังตาบวม : ร่วมกับมีสารคัดหลั่งเพิ่มขึ้น7)
oGVHD ชนิดเรื้อรัง
ภาวะต่อมไมโบเมียน ทำงานผิดปกติ (MGD ) : ความชุกอยู่ที่ 47.8–68.4% 5) ร่วมกับขอบเปลือกตาหนาตัวและมีเคอราติไนเซชัน
กระจกตา อักเสบแบบจุด (SPK ) และกระจกตา อักเสบแบบเส้นใย : ในรายที่รุนแรงอาจนำไปสู่แผลที่กระจกตา และกระจกตา ทะลุ 5)
เยื่อบุตาอักเสบ แดงและมีการสร้างเยื่อเทียม : พบในระยะเฉียบพลัน
แผลเป็นที่เยื่อบุตา และการยึดติดระหว่างเปลือกตาและลูกตา : พบการเกิดพังผืดใต้เยื่อบุตา ประมาณ 50% 6)
ผลตรวจน้ำตาและอวัยวะรอบดวงตา
ปริมาณน้ำตาลดลง : ประเมินด้วยการทดสอบ Schirmer เกิดจากแผลเป็นที่ต่อมน้ำตา
ความเข้มข้นของน้ำตาเพิ่มขึ้น : เป็นปัจจัยที่ทำให้การอักเสบที่ผิวตารุนแรงขึ้น
พังผืดที่จุดน้ำตา : ทำให้ทางระบายน้ำตาถูกขัดขวาง
เส้นเลือดฝอยที่เปลือกตาขยาย : สะท้อนถึงการอักเสบเรื้อรัง
ความหนาแน่นของเซลล์กุณโฑที่เยื่อบุตา ลดลง : ร่วมกับการเปลี่ยนแปลงของเยื่อบุตา เป็นแบบ squamous metaplasia ทำให้ชั้นเมือกบางลง 6)
สาเหตุหลักของ MGD ชนิดอุดกั้นคือความเสียหายของเซลล์เยื่อบุต่อมไมโบเมียน และการเกิดเคอราติไนเซชันมากเกินไปของเยื่อบุท่อนำไข่โดย T cells 6) โรคตาแห้ง ชนิดลดน้ำตาที่เกิดจากความเสียหายของต่อมน้ำตาเป็นหลัก แต่ก็มีโรคตาแห้ง ชนิดระเหยเพิ่มขึ้นจาก MGD ร่วมด้วย จึงมีลักษณะของโรคตาแห้ง แบบผสม 5) การให้เคมีบำบัดและการฉายรังสีก่อนการปลูกถ่ายอาจทำลายเซลล์ต้นกำเนิดระยะพักปกติของต่อมไมโบเมียน ทำให้ความสามารถในการสร้างเซลล์ทดแทนหลังการหลั่งแบบโฮโลครีนลดลง 8)
เนื่องจากการใช้ยากดภูมิคุ้มกันในปริมาณมาก ทำให้เกิดการติดเชื้อได้ง่าย และอาจเกิดแผลที่กระจกตา ซึ่งนำไปสู่การทะลุได้ แม้อาการทางระบบอื่นๆ ของ cGVHD จะหายไปแล้ว KCS อาจคงอยู่นานหลายปี
Q
โรคตาแห้งจาก oGVHD เหมือนกับโรคโจเกรนซินโดรมหรือไม่?
A
โรคตาแห้ง จาก GVHD เกิดจากการทำลายต่อมน้ำตาทางภูมิคุ้มกัน ซึ่งมีอาการและการรักษาคล้ายกับโรคโจเกรนซินโดรม แต่กลไกการเกิดโรคต่างกัน โรคโจเกรนซินโดรมเกิดจากการแทรกซึมของลิมโฟไซต์เรื้อรังในต่อมน้ำตาและต่อมน้ำลายจากภูมิต้านตนเอง ส่วน oGVHD แตกต่างโดยพื้นฐานตรงที่ T cells ที่ตอบสนองต่ออัลโลแอนติเจนจากผู้บริจาคจะโจมตีต่อมน้ำตา
สาเหตุพื้นฐานของ oGVHD คือการที่ T cells จากผู้บริจาคโจมตีเนื้อเยื่อของโฮสต์หลังการปลูกถ่ายเซลล์ต้นกำเนิดเม็ดเลือดแบบอัลโลจีนิก ความเสียหายของต่อมไทมัสจากการเตรียมร่างกายหรือ GVHD เฉียบพลันทำให้เกิดการล้มเหลวของภูมิคุ้มกันตนเองส่วนกลาง นำไปสู่การเพิ่มจำนวนผิดปกติของ T cells ที่ตอบสนองต่อตนเอง (ส่วนใหญ่เป็น CD4+ Th2) และ B cells รวมถึงการสร้างแอนติบอดีต่อตนเอง
การวิเคราะห์อภิมานระบุปัจจัยเสี่ยงและอัตราส่วนออดส์ดังต่อไปนี้ 4)
ปัจจัยเสี่ยง OR (95% CI ) อายุสูง 1.10 (1.00-1.20) ผู้บริจาคเพศหญิง 1.48 (1.20-1.83) ผู้บริจาคที่เป็นญาติ (MRD) 1.50 (1.22-1.83) สเต็มเซลล์จากเลือดส่วนปลาย (PBSC) 1.81 (1.38-2.39) ประวัติ GVHD เฉียบพลัน 1.74 (1.29-2.35) โรค GVHD เรื้อรัง 3.04 (1.82-5.08) โรค GVHD ที่ผิวหนัง 5.55 (2.41-12.79) โรค GVHD ในช่องปาก 13.83 (5.09-37.56)
อัตราส่วนออดส์ของ GVHD ในช่องปากและ GVHD ที่ผิวหนังสูงเป็นพิเศษ ดังนั้นในผู้ป่วยที่มี GVHD ของอวัยวะเหล่านี้ ควรเริ่มการประเมินทางจักษุวิทยาตั้งแต่ระยะแรก4) GVHD เฉียบพลันที่ผิวหนังระดับ II ขึ้นไปเป็นปัจจัยเสี่ยงสำคัญต่อการเกิด GVHD เฉียบพลันที่เยื่อบุตา 7)
การไปพบจักษุแพทย์หลังการปลูกถ่ายเซลล์ต้นกำเนิดเม็ดเลือด
ผู้ที่ได้รับการปลูกถ่ายเซลล์ต้นกำเนิดเม็ดเลือดแบบ allogeneic ควรได้รับการตรวจตาเป็นประจำแม้ไม่มีอาการทางตา รายงานทบทวนวรรณกรรมระบุว่าพบภาวะตาแห้ง ในผู้ป่วยมากกว่า 50% ในช่วง 6-24 เดือนหลังการปลูกถ่าย9) หากมีอาการใหม่ เช่น ตาแห้ง รู้สึกมีสิ่งแปลกปลอม ตาแดง หรือสายตาลดลง ควรรีบไปพบจักษุแพทย์โดยเร็ว
มีประวัติการปลูกถ่ายเซลล์ต้นกำเนิดเม็ดเลือดชนิดอัลโลจีนิก นอกเหนือจากการตรวจทางจักษุวิทยาอย่างสมบูรณ์แล้ว ให้ทำการประเมินดังต่อไปนี้
การทดสอบชีร์เมอร์ (Schirmer test) : การวัดปริมาณการหลั่งน้ำตาส่วนน้ำ ค่า 5 นาที ≤5 มม. ช่วยในการวินิจฉัย oGVHD
เวลาการแตกตัวของชั้นน้ำตา (TBUT) : การประเมินคุณภาพของน้ำตา
การย้อมด้วยฟลูออเรสซีน ลิซามีนกรีน และโรสเบงกอล : การประเมินความเสียหายของเยื่อบุผิวกระจกตา และเยื่อบุตา
การตรวจวัดความเข้มข้นของน้ำตา : การประเมินการเพิ่มขึ้นของความเข้มข้นของน้ำตา
การตรวจความรู้สึกของกระจกตา : การประเมินความเสียหายของเส้นประสาทกระจกตา
การตรวจเซลล์เยื่อบุตา ด้วยการพิมพ์ (conjunctival impression cytology) : ยืนยันการลดลงของความหนาแน่นของเซลล์กุณโฑและการเปลี่ยนแปลงเป็นเซลล์เยื่อบุผิวแบบสความัส
การตรวจด้วยกล้องจุลทรรศน์คอนโฟคอล : การประเมินการเปลี่ยนแปลงโครงสร้างจุลภาคของกระจกตา
มีการเสนอเกณฑ์หลายข้อในการวินิจฉัย oGVHD การประเมินพื้นผิวตาก่อนปลูกถ่าย (ค่าพื้นฐาน) มีความสำคัญต่อการระบุการเกิดใหม่หลังปลูกถ่ายอย่างแม่นยำ5)
เกณฑ์ องค์ประกอบหลัก ลักษณะเฉพาะ NIH CC (2014) Schirmer ≤5mm + KCS ใช้กันอย่างแพร่หลายที่สุด การแก้ไขปี 2014 ไม่รวมค่า Schirmer ในการประเมินความรุนแรง ICCGVHD OSDI + Schirmer + CFS + ภาวะเลือดคั่ง การรวมกันของตัวชี้วัดเชิงวัตถุวิสัย TFOS DEWS II ขยาย OSDI ≥13 + TBUT/ออสโมลาริตี/การย้อมสี รวมถึงชนิดที่มีการระเหยเพิ่มขึ้นโดยการรวม TBUT
เกณฑ์ ICCGVHD กำหนดคะแนนความรุนแรง 0-3 สำหรับ 4 พารามิเตอร์ ได้แก่ OSDI การทดสอบ Schirmer การย้อมฟลูออเรสซีน ที่กระจกตา และภาวะเลือดคั่งของเยื่อบุตา จากนั้นวินิจฉัย oGVHD จากคะแนนรวมและการมีหรือไม่มี cGVHD ทั่วร่างกาย
คะแนน OSDI การทดสอบ Schirmer (มม.)การย้อมกระจกตา 0 <13 >15 ไม่มี 1 13–22 11–15 เล็กน้อย 2 23–32 6–10 ปานกลาง 3 ≥33 ≤5 รุนแรง
คะแนนรวม 0–4: ไม่มี, 5–8: เล็กน้อยถึงปานกลาง, 9–11: รุนแรง2) ในกรณีที่ GVHD ทั่วร่างกายเป็นบวก หากคะแนน ≥6 จะวินิจฉัยเป็น definite oGVHD 5)
ตามเกณฑ์ NIH นอกจากการทดสอบ Schirmer ≤5 มม./5 นาที หรือ Schirmer ≤10 มม./5 นาทีจากสาเหตุอื่นแล้ว ต้องยืนยัน KCS ด้วยการตรวจด้วยกล้องกรีด5) อาการทางตาเพียงอย่างเดียวไม่เพียงพอสำหรับการวินิจฉัย cGVHD ที่แน่ชัด จำเป็นต้องมีหลักฐานจากอวัยวะอื่นสนับสนุน
การทดสอบ Schirmer : การวัดปริมาณการหลั่งน้ำตา เป็นการตรวจพื้นฐานสำหรับการวินิจฉัย oGVHD
เวลาแตกตัวของฟิล์มน้ำตา (TBUT) : การประเมินความคงตัวของฟิล์มน้ำตา
การย้อมสีฟลูออเรสซีน ไลซามีนกรีน และโรสเบงกอลที่กระจกตา : การประเมินความเสียหายของเยื่อบุผิวกระจกตา และเยื่อบุตา
ไมโบกราฟี : การประเมินโครงสร้างของต่อมไมโบเมียน ด้วยการถ่ายภาพอินฟราเรด วินิจฉัย MGD เมื่อพื้นที่ต่อมไมโบเมียน น้อยกว่า 40%5)
กล้องจุลทรรศน์คอนโฟคอล ในร่างกาย (IVCM) : การประเมินการเปลี่ยนแปลงโครงสร้างในระดับเซลล์ของกระจกตา และเยื่อบุตา 5)
การวัดความดันออสโมติกของน้ำตา : ความไว 98.4% ความจำเพาะ 60.7% ที่ค่า >310 mOsm/L5)
การวิเคราะห์โปรไฟล์ไซโตไคน์ในน้ำตาได้รับการศึกษามากที่สุดในฐานะตัวบ่งชี้ทางชีวภาพ ของ oGVHD 2) จากการทบทวนอย่างเป็นระบบจาก 19 การศึกษา พบว่า ICAM-1, IL-6 และ IL-8 ในน้ำตาของผู้ป่วย oGVHD มีค่าสูงกว่าผู้ป่วยโรคตาแห้ง และอาจเป็นสัญญาณของความรุนแรงของโรค 2) การแสดงออกของเมทริกซ์เมทัลโลโปรตีเนส 9 (MMP-9) ก็เพิ่มขึ้นในผู้ป่วย oGVHD เช่นกัน 2) โปรไฟล์ไขมันในน้ำตา (ฟอสฟาทิดิลโคลีน, สฟิงโกไมอีลิน, แลคโตซิลเซราไมด์) ยังมีความสัมพันธ์อย่างมากกับคะแนนตาของ NIH และ TBUT 2)
แบบจำลองการทำนายโดยใช้การรวมกันของ IL-8/CXCL8 และ IP-10/CXCL10 มีความไว 86.4% และความจำเพาะ 95.2% 6) ความเข้มข้นของ fractalkine, IL-1Ra และ IL-6 ในน้ำตาก่อนการปลูกถ่ายอาจเป็นตัวบ่งชี้ที่ทำนายการเกิด oGVHD ได้ 6) การวิเคราะห์โปรตีโอมในน้ำตาระบุโปรตีน 79 ชนิดที่มีการแสดงออกแตกต่างกันใน oGVHD โดยโปรตีนฮิสโตนถูกควบคุมให้เพิ่มขึ้นมากที่สุด 6)
การทบทวนอย่างเป็นระบบของ Bohlen และคณะได้พิจารณาตัวบ่งชี้ทางชีวภาพ ที่หลากหลาย เช่น ไซโตไคน์ในน้ำตา โปรตีโอม ไขมัน เม็ดเลือดขาว และจุลินทรีย์บนผิวตา และสรุปว่าการวิเคราะห์โปรไฟล์ไซโตไคน์มีแนวโน้มมากที่สุด 2)
Q
ความรุนแรงของ oGVHD ประเมินอย่างไร?
A
การให้คะแนนแบบผสมของ ICOCG เป็นมาตรฐาน คะแนน 0-3 จะถูกกำหนดให้กับ 4 รายการ ได้แก่ OSDI (คะแนนอาการที่ผู้ป่วยรายงาน), การทดสอบ Schirmer โดยไม่ใช้ยาชา, การย้อมสีฟลูออเรสซีน ที่กระจกตา และภาวะตาแดง จากเยื่อบุตา จากนั้นนำคะแนนรวม (สูงสุด 11 คะแนน) มาประเมินความรุนแรง 0-4 คะแนน = ไม่มี, 5-8 คะแนน = เล็กน้อยถึงปานกลาง, 9-11 คะแนน = รุนแรง2) การให้คะแนนนี้ได้รับการยืนยันความถูกต้องในการศึกษาวิจัยในปี 2017
แนวทางฉันทามติของ NIH กำหนดเป้าหมายการรักษา 4 ประการ ได้แก่ (1) การหล่อลื่น (2) การระงับการระเหยของน้ำตา (3) การควบคุมการระบายน้ำตา และ (4) การลดการอักเสบของผิวตาดำ6)
น้ำตาเทียม ที่ไม่มีสารกันเสีย : ทางเลือกแรก ควรระวังผลิตภัณฑ์ที่มีฟอสเฟตความเข้มข้นสูงเนื่องจากอาจเกิดผลึกแคลเซียมฟอสเฟตบนผิวกระจกตา ที่เสียหาย6)
ยาหยอดตาเรบามิไพด์ : ช่วยปรับปรุงความเสถียรของน้ำตาโดยกระตุ้นการหลั่งและการเหนี่ยวนำมิวซิน6)
ยาหยอดตาไดควาโฟซอล : มีฤทธิ์กระตุ้นการหลั่งน้ำและมิวซิน6)
ยาหยอดตาซีรัมตนเอง (ASEDs) : ประกอบด้วยปัจจัยการสมานแผล เช่น TGF-β, ปัจจัยการเจริญเติบโตของเส้นประสาท, EGF และ FGF ซึ่งส่งเสริมการหายของเยื่อบุผิวกระจกตา และเยื่อบุตา ที่เสียหายอย่างรุนแรง6) ใช้ในความเข้มข้น 20-100%
ยาหยอดตาสเตียรอยด์ : พื้นฐานของการรักษาด้วยยาต้านการอักเสบเฉพาะที่ มีรายงานการหายขาดอย่างสมบูรณ์ด้วยยาหยอดตาเพรดนิโซโลนในผู้ป่วยเยื่อบุตาอักเสบแบบมีแผลเป็น ที่ลุกลาม 7 ราย6) การใช้ระยะยาวมีความเสี่ยงต่อโรคต้อหิน ต้อกระจก และกระจกตา บางลง3)
ไซโคลสปอริน เอ ยาหยอดตา : ยับยั้งการแทรกซึมและการกระตุ้นของทีเซลล์ ปรับปรุงความหนาแน่นของเซลล์ก๊อบเล็ต1) มีรายงานว่าอาการตาแห้ง ดีขึ้นใน 62.5% ของผู้ป่วย และคะแนนการย้อมสีกระจกตา ดีขึ้นในทุกราย6)
ทาโครลิมัส ยาหยอดตา : ลดการแสดงออกของ IL-2 และลิมโฟไคน์ ยับยั้งการตอบสนองทางภูมิคุ้มกันที่อาศัยทีเซลล์1) เปรียบเทียบกับเมทิลเพรดนิโซโลน พบว่าการปรับปรุงคะแนนการย้อมสีกระจกตา ดีกว่าอย่างมีนัยสำคัญ (55% เทียบกับ 23%)6)
ในการศึกษาเชิงเปรียบเทียบแบบสุ่มไปข้างหน้า ผู้ป่วยที่เริ่มใช้ยาไซโคลสปอริน เอหยอดตาวันละ 4 ครั้งตั้งแต่ 1 เดือนก่อนการปลูกถ่ายเซลล์ต้นกำเนิดเม็ดเลือดชนิดอัลโลจีนิก และต่อเนื่องหลังการปลูกถ่าย มีค่าการตรวจหลังผ่าตัดดีกว่ากลุ่มควบคุมในผู้ป่วยที่มีการหลั่งน้ำตาลดลงและเวลาการแตกตัวของชั้นน้ำตาสั้นลงก่อนการปลูกถ่าย11) เป็นการศึกษาเล็กที่ผู้ป่วย 58 รายเสร็จสมบูรณ์ และไม่ใช่ผลที่สร้างการให้ยาป้องกันแบบเดียวกันในผู้ป่วยทุกราย
การประคบอุ่น : วันละ 1-2 ครั้ง ตามด้วยการนวดเบาๆ เป็นการแทรกแซงที่ต้นทุนต่ำและง่าย
การทำความสะอาดเปลือกตา (lid scrubs) : รักษาสุขอนามัยของเปลือกตา
ยาทาสเตียรอยด์ : มีอัตราการปรับปรุง 97.2% สำหรับโรคเปลือกตาอักเสบ ที่เกี่ยวข้องกับ oGVHD 6)
ดอกซีไซคลินชนิดรับประทาน : มีฤทธิ์ต้านการอักเสบและต้านเชื้อแบคทีเรีย พิจารณาใช้ใน MGD ระดับปานกลางถึงรุนแรง
กรดไขมันโอเมก้า-3 : อาหารเสริมที่คาดว่ามีฤทธิ์ต้านการอักเสบ
เลนส์สเคลอรัล / อุปกรณ์ PROSE : ปรับปรุงการมองเห็น และความสบายในผู้ป่วยที่มีภาวะ epithelial defect ถาวร การหล่อลื่นอย่างต่อเนื่องจากช่องเก็บน้ำและการลดการสัมผัสกระจกตา ช่วยส่งเสริมการหาย10)
Punctal plug / การจี้จุดน้ำตา : ส่งเสริมการกักเก็บน้ำตา มีทั้งชนิดซิลิโคนและอะทีโลคอลลาเจน การปิดจุดน้ำตาถาวรทำโดยการจี้ด้วยความร้อน
แว่นตากันแสง (moisture goggles) : ลดการระเหยของน้ำตา10)
หากไม่ดีขึ้นด้วยการรักษาแบบอนุรักษ์ ให้พิจารณาดังต่อไปนี้
การปลูกถ่ายเยื่อหุ้มแอมเนียน : ใช้ในกรณี persistent epithelial defect ที่ดื้อต่อการรักษา เพื่อส่งเสริมการสร้างเยื่อบุผิว ลดการอักเสบ และลดการเกิดแผลเป็น6)
DALK หรือ PKP : ในรายที่มี descemetocele หรือกระจกตา ทะลุ อย่างไรก็ตาม การปลูกถ่ายกระจกตา ภายใต้ภาวะอักเสบรุนแรงมีความเสี่ยงสูงและพยากรณ์โรคไม่ดี
การเย็บเปลือกตา (tarsorrhaphy) : ลดการสัมผัสและลดความแห้ง ช่วยลดความเสี่ยงของการติดเชื้อที่กระจกตา แผลที่กระจกตา และการทะลุ
ข้อควรระวังในการรักษา
ยาหยอดตาสเตียรอยด์ มีความเสี่ยงต่อการเพิ่มความดันลูกตา ต้อกระจก และ keratitis ติดเชื้อ จึงจำเป็นต้องติดตามอย่างสม่ำเสมอ
การใช้ยาหยอดตาจากซีรั่มตนเองต้องระวังความเสี่ยงของการติดเชื้อและการปนเปื้อนของยากดภูมิคุ้มกันที่ให้ทางระบบในซีรั่ม
ผู้ป่วย oGVHD อยู่ในภาวะกดภูมิคุ้มกัน ดังนั้นแผลที่กระจกตา อาจทะลุได้อย่างรวดเร็ว การพบจักษุแพทย์ตั้งแต่เนิ่นๆ จึงสำคัญ
การจัดการ oGVHD ต้องรักษา GVHD ทางระบบ แต่บางครั้งอาการทางตาไม่ดีขึ้นเพียงพอด้วยการรักษาทางระบบเพียงอย่างเดียว จึงจำเป็นต้องมีการทำงานร่วมกันอย่างใกล้ชิดระหว่างจักษุแพทย์และอายุรแพทย์โลหิตวิทยา
Q
การรักษา oGVHD ด้วยเซลล์ต้นกำเนิดมีเซนไคม์ (MSC) คืออะไร?
A
เซลล์ต้นกำเนิดมีเซนไคม์ (MSC) มีฤทธิ์กดภูมิคุ้มกันและฟื้นฟูเนื้อเยื่อ กำลังถูกวิจัยเป็นวิธีการรักษาใหม่สำหรับ oGVHD 1) 3) MSC ผลิตปัจจัยควบคุมภูมิคุ้มกัน เช่น IL-10, TGF-β, IDO และ PGE2 ซึ่งยับยั้งการทำงานของ T cell และ NK cell 3) มีการศึกษาในสัตว์ทดลองแสดงให้เห็นว่า MSC สามารถแยกเป็นเซลล์เยื่อบุกระจกตา และฟื้นฟูต่อมน้ำตาและต่อมไมโบเมียน 1) 3) เอ็กโซโซมจาก MSC (MSC-Exo) กำลังถูกวิจัยเพื่อใช้เป็นยาหยอดตาแบบไร้เซลล์ 1) 3) อย่างไรก็ตาม จำเป็นต้องมีการทดลองทางคลินิกขนาดใหญ่เพิ่มเติมก่อนนำไปใช้จริง
กลไกหลักของการหลั่งน้ำตาที่บกพร่องใน oGVHD คือการทำลายต่อมน้ำตาทางภูมิคุ้มกัน เซลล์ T CD4+ และ CD8+ ที่มาจากผู้บริจาคจะแทรกซึมเข้าไปในบริเวณรอบท่อของต่อมน้ำตา ทำให้เกิดการอักเสบและพังผืด1) 6) ไฟโบรบลาสต์ที่แสดง HSP47 สูงจะถูกกระตุ้นและสังเคราะห์คอลลาเจนมากเกินไป ส่งผลให้เกิดพังผืดของต่อมน้ำตา6) ประมาณ 50% ของไฟโบรบลาสต์ในต่อมน้ำตามาจากผู้บริจาค และร่วมกับเซลล์ T และไฟโบรบลาสต์จากผู้รับ มีส่วนทำให้เกิดพยาธิสภาพของ GVHD5) การเปลี่ยนผ่านของเยื่อบุผิวเป็น mesenchymal (EMT) ก็เป็นกลไกสำคัญของพังผืดในต่อมน้ำตาเช่นกัน9)
ความเสียหายของต่อมน้ำตาและต่อมไมโบเมียน
การแทรกซึมของเซลล์ T รอบท่อ : บริเวณรอบท่อของต่อมน้ำตาเป็นตำแหน่งหลักที่ถูกโจมตี1)
การทำลายหน่วยหลั่งของท่อ : พังผืดดำเนินไปและความสามารถในการหลั่งน้ำตาสูญเสียไป
การอุดตันของต่อมไมโบเมียน : ความเสียหายต่อเซลล์เยื่อบุผิวของต่อมไมโบเมียน ที่อาศัยเซลล์ T เป็นสื่อ และการเกิดเคราตินมากเกินไปของเยื่อบุท่อ เป็นสาเหตุหลักของ MGD ชนิดอุดตัน6)
ความเครียดออกซิเดชัน : การสะสมของ lipofuscin-like inclusion bodies ทำให้เกิดความเสียหายจากออกซิเดชันต่อเซลล์ acinar ของต่อมน้ำตา และลดการผลิตน้ำตา6)
ความเสียหายของกระจกตาและเยื่อบุตา
ความเสียหายของเยื่อบุกระจกตา : ดำเนินไปเป็นระยะตั้งแต่ keratitis แบบจุด, filamentary keratitis, persistent epithelial defect, corneal ulcer จนถึงการทะลุ6)
ความหนาแน่นของเซลล์เยื่อบุผนังกระจกตา ลดลง : ต่ำกว่าคนปกติอยู่แล้วก่อน HSCT และลดลงอีกเมื่อเกิด oGVHD การเพิ่มขึ้นของการแสดงออกของ NK1R มีส่วนเกี่ยวข้อง6)
โรคเส้นประสาทกระจกตา : การกระตุ้นแกน complement C3/CD4+ T cell ที่ผิดปกตินำไปสู่ neurotrophic ulcer6)
พังผืดของเยื่อบุตา : NETs (กับดักนอกเซลล์ของนิวโทรฟิล) ที่ปล่อยออกจากนิวโทรฟิลกระตุ้นการเพิ่มจำนวนและการแยกตัวของไฟโบรบลาสต์เยื่อบุตา 6)
พยาธิสภาพของ GVHD เกี่ยวข้องกับทีลิมโฟไซต์ที่ตอบสนองต่ออัลโลแอนติเจนจากผู้บริจาคซึ่งมีบทบาทสำคัญมาก ความเสียหายของต่อมไทมัสที่เกิดขึ้นระหว่างการเตรียมร่างกายหรือ GVHD เฉียบพลันนำไปสู่การล้มเหลวของความทนทานต่อตนเองส่วนกลาง ทำให้เกิดการเพิ่มจำนวนผิดปกติของทีเซลล์ที่ตอบสนองต่อตนเอง (ส่วนใหญ่เป็น CD4+ Th2) และบีเซลล์ รวมถึงการสร้างแอนติบอดีต่อตนเอง oGVHD เกี่ยวข้องกับทั้งภูมิคุ้มกันแบบเซลล์และภูมิคุ้มกันแบบฮิวโมรัล
การกระตุ้นของไซโตไคน์คาสเคดมีบทบาทสำคัญ การป้องกันการกระตุ้นและการเพิ่มจำนวนของทีเซลล์เป็นจุดเน้นของการรักษาและป้องกัน GVHD โดยใช้ไซโคลสปอริน ทาโครลิมัส และโมโนโคลนอลแอนติบอดี1)
MSC ผลิตปัจจัยปรับภูมิคุ้มกันดังต่อไปนี้ และยับยั้งเซลล์ภูมิคุ้มกันต่างๆ ที่เกี่ยวข้องกับพยาธิสภาพของ oGVHD 3)
TGF-β : ส่งเสริมการแยกตัวของทีเซลล์ควบคุม (Treg) และยับยั้งการเพิ่มจำนวนของทีเซลล์ที่ถูกกระตุ้น
IDO (อินโดลามีน 2,3-ไดออกซิจีเนส) : ควบคุมสัญญาณของทีเซลล์รีเซพเตอร์
NO (ไนตริกออกไซด์) : ยับยั้งการกระตุ้นของทีเซลล์ naïve
PGE2 : ยับยั้งการเพิ่มจำนวนของเซลล์ NK และเปลี่ยนแมคโครฟาจไปสู่ฟีโนไทป์ต้านการอักเสบ3)
MSC แสดงโมเลกุลเหนี่ยวนำการตายของเซลล์ เช่น PDL-1, PDL-2 และ FasL ซึ่งกระตุ้นการตายของเซลล์แบบ caspase-3-dependent ใน T cells และ NK cells ที่ถูกกระตุ้น3)
fosaprepitant (สารยับยั้งแกน SP-NK1R) : ในแบบจำลองหนูก่อนการทดลองของ oGVHD การให้ยาเฉพาะที่ช่วยลดคะแนนการย้อมฟลูออเรสซีน ของกระจกตา ได้ 72%6) ยังไม่มีการยืนยันประสิทธิภาพในมนุษย์
VA-lip HSP47 : การส่ง siRNA HSP47 ด้วยไลโปโซมที่จับกับวิตามินเอ ยับยั้งการแสดงออกของ HSP47 ในไฟโบรบลาสต์ของต่อมน้ำตา ลดการสะสมคอลลาเจน และฟื้นฟูการหลั่งน้ำตา (ในแบบจำลองสัตว์)6)
วาลซาร์แทน (ยาต้าน AT1R) : มีการยืนยันในแบบจำลองสัตว์ว่าสามารถยับยั้งการเกิดพังผืดในต่อมน้ำตาและป้องกันการดำเนินโรค6)
เฮปารินขนาดต่ำ (100 IU/mL) : กำลังศึกษาในฐานะยาชีวภาพที่สลาย NET นอกจากนี้ยังมีฤทธิ์กดภูมิคุ้มกัน ต้านการอักเสบ และต้านการเกิดพังผืดโดยอิสระ6)
ruxolitinib (สารยับยั้ง JAK1/2) : มีรายงานการปรับปรุง oGVHD อย่างมีนัยสำคัญในผู้ป่วย cGVHD ที่ดื้อหรือพึ่งพาสเตียรอยด์ 6)
R348 (สารยับยั้ง JAK/SYK ชนิดให้เฉพาะที่) : การทดลองนำร่องแบบสุ่มที่ความเข้มข้น 0.5% แสดงผลการรักษาที่มีประสิทธิภาพต่อความเสียหายของเยื่อบุกระจกตา 6)
Ye และคณะได้ทบทวนผลการรักษาของ MSC และเอ็กโซโซมที่ได้จาก MSC (MSC-Exo) ต่อ oGVHD 1) MSC มีความสามารถในการแยกเป็นเซลล์เยื่อบุผิวกระจกตา และปรับปรุงความเสียหายของกระจกตา ผ่านการหลั่งโปรตีนต้านการอักเสบ เช่น TSG-6 1) MSC ของมนุษย์ที่ฉีดใต้เยื่อบุตา จะปกป้องกระจกตา จากการบุกรุกของทีเซลล์ใน oGVHD และยังแสดงผลต่อตาข้างตรงข้าม 1) การให้ MSC ช่วยให้ค่า Schirmer ดีขึ้นใน 54.55% ของผู้ป่วย 6)
Harrell และคณะแสดงให้เห็นว่า MSC ผลิตสารควบคุมภูมิคุ้มกัน เช่น IL-10, TGF-β, IDO, NO และ PGE2 ซึ่งเปลี่ยนแปลงฟีโนไทป์และการทำงานของเซลล์ภูมิคุ้มกันทั้งหมดที่เกี่ยวข้องกับพยาธิสภาพของ oGVHD 3)
MSC-Exo สามารถผ่านสิ่งกีดขวางทางชีวภาพในลูกตาได้เนื่องจากเยื่อหุ้มไขมันและขนาดนาโน และส่งคาร์โกโดยตรงไปยังเซลล์เยื่อบุผิวกระจกตา ที่เสียหายและเม็ดเลือดขาวที่แทรกซึม 3) ในการทดลองทางคลินิกแบบไปข้างหน้า MSC-Exo ถูกให้กับตาแห้ง ที่เกี่ยวข้องกับ oGVHD ที่ดื้อต่อการรักษา 28 ตา พบว่าคะแนนฟลูออเรสซีน ลดลง TBUT ยาวขึ้น การหลั่งน้ำตาเพิ่มขึ้น และคะแนน OSDI ลดลง 6) MSC-Exo ที่ได้จากน้ำคร่ำ (AF-MSC-Exo) มี NGF และ BDNF มากมาย ซึ่งอาจช่วยในการสร้างจอประสาทตา ใหม่ผ่านปัจจัยประสาทโภชนาการ 3) แม้จะหลีกเลี่ยงการแยกเซลล์ที่ไม่พึงประสงค์ที่เกี่ยวข้องกับการปลูกถ่าย MSC ได้ แต่ความปลอดภัยในระยะยาวจากการทดลองทางคลินิกเปรียบเทียบยังไม่ได้รับการยืนยัน 3)
ในแบบจำลองการปลูกถ่ายเซลล์ต้นกำเนิดเม็ดเลือดชนิดอัลโลจีนิกในระยะก่อนคลินิก มีรายงานว่าการใช้เซลล์ทีควบคุม (Tregs) ร่วมกับยา BET inhibitor ช่วยเพิ่มปริมาณ Tregs และปรับปรุงคะแนน GVHD ทั่วร่างกาย6) ยังไม่มีการกำหนดผลการรักษาต่อ GVHD ที่ตา
อย่างไรก็ตาม การประยุกต์ใช้ MSC-Exo ทางคลินิกจำเป็นต้องมีการทดลองทางคลินิกขนาดใหญ่เพิ่มเติม และการกำหนดขนาดยาที่เหมาะสม ความถี่ในการให้ยา และความปลอดภัยในระยะยาวยังคงเป็นความท้าทาย1)
Bohlen และคณะได้ทบทวนอย่างเป็นระบบจากงานวิจัย 19 ชิ้นที่ตีพิมพ์ระหว่างปี 2018–2023 และประเมินตัวบ่งชี้ทางชีวภาพ ระดับโมเลกุลของ oGVHD อย่างครอบคลุม2) มีการตรวจสอบไซโตไคน์ โปรตีโอม โปรไฟล์ไขมัน เม็ดเลือดขาว และไมโครไบโอตาในน้ำตา โดยการทำโปรไฟล์ไซโตไคน์เป็นตัวบ่งชี้ทางชีวภาพ ที่มีการศึกษามากที่สุด2)
การเพิ่มขึ้นของ ICAM-1, IL-6 และ IL-8 อาจสะท้อนความรุนแรงของโรค ในขณะที่การลดลงของ EGF และ IL-7 อาจเป็นตัวบ่งชี้ทางชีวภาพ ที่มีประโยชน์ในการแยกความแตกต่างระหว่าง oGVHD และโรคตาแห้ง 2)
โปรไฟล์ไขมันในน้ำตา (ฟอสฟาทิดิลโคลีน สฟิงโกไมอีลิน และแลคโตซิลเซราไมด์) ยังแสดงความสัมพันธ์ที่แข็งแกร่งกับพารามิเตอร์ทางคลินิก และเป็นตัวเลือกตัวบ่งชี้ทางชีวภาพ ที่มีแนวโน้ม2) ความหลากหลายของไมโครไบโอตาที่ผิวตาที่ลดลงยังพบได้หลังการปลูกถ่าย HSCT และมีความเกี่ยวข้องกับการเกิด oGVHD 2)
ข้อจำกัดความรับผิดชอบทางการแพทย์
เนื้อหาในบทความนี้มีวัตถุประสงค์เพื่อให้ข้อมูลสำหรับการศึกษาทางการแพทย์เท่านั้น ไม่ได้มีวัตถุประสงค์เพื่อการวินิจฉัยหรือรักษาเฉพาะบุคคล สำหรับการวินิจฉัยและการรักษาโรค graft-versus-host disease ทางตา โปรดปรึกษาจักษุแพทย์และแพทย์โลหิตวิทยาที่ดูแลคุณ
Ye C, Liu S, Hong J. Therapeutic Efficacy and Mechanisms of Mesenchymal Stem Cells and Their Exosomes in the Treatment of Ocular Graft-Versus-Host Disease. Cornea. 2025;44(11):1431-1439. doi:10.1097/ICO.0000000000003868. PMID:40146680; PMCID:PMC12479065.
Bohlen J, Gomez C, Zhou J, Martinez Guasch F, Wandvik C, Sunshine SB. Molecular Biomarkers in Ocular Graft-versus-Host Disease: A Systematic Review. Biomolecules. 2024;14(1). doi:10.3390/biom14010102. PMID:38254702; PMCID:PMC10813443.
Harrell CR, Djonov V, Volarevic V. Therapeutic Potential of Mesenchymal Stem Cells in the Treatment of Ocular Graft-Versus-Host Disease. International journal of molecular sciences. 2022;23(21). doi:10.3390/ijms232113254. PMID:36362040; PMCID:PMC9656879.
Wang Y, Min Y, Sun Y, Xue M, Li F. Risk factors for ocular graft-versus-host disease: A systematic review and meta-analysis. PloS one. 2025;20(6):e0324703. doi:10.1371/journal.pone.0324703. PMID:40471907; PMCID:PMC12140268.
Nair S, Vanathi M, Mukhija R, Tandon R, Jain S, Ogawa Y. Update on ocular graft-versus-host disease. Indian journal of ophthalmology. 2021;69(5):1038-1050. doi:10.4103/ijo.IJO_2016_20. PMID:33913829; PMCID:PMC8186644.
Cheng X, Huang R, Huang S, Fan W, Yuan R, Wang X, et al. Recent advances in ocular graft-versus-host disease. Frontiers in immunology. 2023;14:1092108. doi:10.3389/fimmu.2023.1092108. PMID:36761771; PMCID:PMC9905686.
Yan H, Mo Y, Li Y, Li Q, Luo L, Meng Q, et al. Management of infection and ocular complications in pediatric SJS /TEN-like acute graft-versus-host disease: a clinical case study and literature review. Front Immunol. 2025;16:1588297. doi:10.3389/fimmu.2025.1588297. PMID:40589744; PMCID:PMC12206640.
Appenteng Osae E, Steven P. Meibomian Gland Dysfunction in Ocular Graft vs. Host Disease: A Need for Pre-Clinical Models and Deeper Insights. Int J Mol Sci. 2021;22(7):3516. doi:10.3390/ijms22073516. PMID:33805326; PMCID:PMC8036656.
Ogawa Y, Kawakami Y, Tsubota K. Cascade of Inflammatory, Fibrotic Processes, and Stress-Induced Senescence in Chronic GVHD-Related Dry Eye Disease. International journal of molecular sciences. 2021;22(11). doi:10.3390/ijms22116114. PMID:34204098; PMCID:PMC8201206.
Jones L, Craig JP, Markoulli M, Karpecki P, Akpek EK, Basu S, Bitton E, Chen W, et al. TFOS DEWS III: Management and Therapy. American journal of ophthalmology. 2025;279:289-386. doi:10.1016/j.ajo.2025.05.039. PMID:40467022.
Chun YH, Beak JU, Kim HS , Na KS. Topical Cyclosporine Pretreatment of Ocular Surface in Allogeneic Hematopoietic Stem Cell Transplant Recipients. J Ocul Pharmacol Ther. 2018;34(9):628-632. doi:10.1089/jop.2018.0006. PMID:30289329.
Jagasia MH, Greinix HT, Arora M, Williams KM, Wolff D, Cowen EW, et al. National Institutes of Health Consensus Development Project on Criteria for Clinical Trials in Chronic Graft-versus-Host Disease: I. The 2014 Diagnosis and Staging Working Group report. Biol Blood Marrow Transplant. 2015;21(3):389-401.e1. doi:10.1016/j.bbmt.2014.12.001. PMID:25529383; PMCID:PMC4329079.