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Glaukom

Filterkissen-assoziierte Infektion

Die blebassoziierte Infektion (bleb-related infection: BRI) ist eine infektiöse Komplikation nach Glaukom-Filtrationsoperationen (z. B. Trabekulektomie), bei der Bakterien über das Sickerkissen eindringen. Bleibt die Infektion auf das Sickerkissen beschränkt, spricht man von Blebritis (blebitis); breitet sie sich ins Augeninnere aus, handelt es sich um eine blebassoziierte Endophthalmitis (bleb-associated endophthalmitis: BAE).

  • Blebritis (blebitis) : Infektion auf das Sickerkissen oder dessen Umgebung beschränkt. Kann mit einer leichten bis mäßigen Vorderkammerreaktion einhergehen.
  • Blebassoziierte Endophthalmitis (BAE) : Infektion bis in den Glaskörper ausgebreitet. Sehr schlechte visuelle Prognose.

Als klinische Stadieneinteilung werden folgende Stadien verwendet 1).

  • Stadium I : Lokale Entzündung des Filterkissens (Blebitis)
  • Stadium II : Zellen, Flare und Hypopyon in der Vorderkammer
  • Stadium IIIa : Ausbreitung in den Glaskörper. Fundus einsehbar
  • Stadium IIIb : Starke Glaskörpertrübung, Fundus nicht einsehbar

Im Gegensatz zu anderen intraokularen Operationen besteht bei der filtrierenden Chirurgie nicht nur in der frühen postoperativen Phase, sondern auch langfristig das Risiko einer Filterkisseninfektion. In einer multizentrischen prospektiven Studie (Collaborative Bleb-Related Infection Incidence and Treatment Study) zur Trabekulektomie mit Mitomycin C betrug die kumulative Inzidenz von Filterkisseninfektionen nach 5 Jahren 2,2 %, davon 1,1 % für BAE5). Diese Studie wurde von der Japanischen Glaukomgesellschaft als landesweite prospektive Erhebung durchgeführt und liefert zuverlässige Daten. Die Häufigkeit von Filterkissen-assoziierten Infektionen nach dem ersten postoperativen Monat wird mit 0,97 bis 5 % angegeben4), was im Vergleich zu Spätinfektionen nach anderen intraokularen Eingriffen höher ist. Filterkisseninfektionen nach Glaukomoperationen treten oft mehrere Jahre nach dem Eingriff auf und haben eine höhere Inzidenz als nach Kataraktoperationen.

Nach dem Zeitpunkt des Auftretens wird zwischen frühen Formen (innerhalb des ersten Monats) und späten Formen (nach dem ersten Monat) unterschieden1). Frühe Formen werden häufig durch niedrigvirulente Bakterien (koagulase-negative Staphylokokken) verursacht, während späte Formen durch hochvirulente Bakterien (Streptokokken, Haemophilus influenzae) bedingt sind und eine schlechtere Prognose haben1). Die Häufigkeit früher postoperativer Filterkisseninfektionen liegt bei 0,1–0,2 % und ist damit niedriger als bei späten Infektionen4). Patienten, die sich einer filtrierenden Operation unterzogen haben, sollten ausreichend über das Risiko einer Spätinfektion aufgeklärt werden und angewiesen werden, bei Symptomen wie Rötung, Tränenfluss, verschwommenem Sehen oder Augenschmerzen sofort die Klinik aufzusuchen4).

Q Was ist der Unterschied zwischen Blebitis und Filterkissen-assoziierter Endophthalmitis?
A

Die Blebitis ist eine auf das Filterkissen begrenzte Infektion, bei der mit geeigneter lokaler Behandlung eine gute visuelle Prognose zu erwarten ist. Die Filterkissen-assoziierte Endophthalmitis (BAE) hingegen ist eine Infektion, die sich bis in den Glaskörper ausbreitet, und selbst bei aggressiver Behandlung ist die visuelle Prognose oft schlecht. Bei Vorliegen von Hypopyon und eindeutiger Filterkisseninfektion sollte, sofern keine andere Ursache nachgewiesen wird, wie eine Endophthalmitis behandelt werden1).

Gelblich-weiß getrübtes infiziertes Filterkissen (White-on-Red)

J Ophthalmol. 2015;2015:923857. Figure 1. PMCID: PMC4606135. License: CC BY.
Auf hyperämischer Bindehaut hebt sich ein gelblich-weiß getrübtes Filterkissen ab, der charakteristische „White-on-Red“-Befund einer Filterkisseninfektion. Entspricht der äußeren Beurteilung der Stadien I–II im Abschnitt „2. Hauptsymptome und klinische Befunde“.

  • Augenschmerzen : plötzlicher Beginn. Bei BAE stärker ausgeprägt
  • Rötung : vom Bereich um das Filterkissen bis zur gesamten Bindehaut
  • Sehverschlechterung : bei Blebitis leicht, bei BAE ausgeprägt
  • Photophobie (Lichtempfindlichkeit) : verbunden mit Entzündung der Vorderkammer
  • Augenausfluss und Tränenfluss : können von eitrigem Sekret begleitet sein
  • Prodromalsymptome : Blepharitis, Augenbrauenschmerz, Kopfschmerz, äußere Augenentzündung treten bei 35 % der Patienten Tage bis Wochen vorher auf1)

Stadium I (Blebitis)

„Weiß auf Rot (white-on-red)“ : eine gelb-weiß getrübte Filterkissen auf hyperämischer Bindehaut ist charakteristisch.

Trübung des Filterkissens : wird gelb-weiß und undurchsichtig.

Leichte Vorderkammerreaktion : kann mit oder ohne Hypopyon auftreten.

Stadium II-III (BAE)

Ausgeprägte konjunktivale Hyperämie : ausgedehnter und stärker als im Stadium I.

Hypopyon : mit Fibrinausfällung.

Glaskörpertrübung : tritt im Stadium III auf. Im Stadium IIIb ist der Fundus nicht einsehbar.

Bei Hypopyon und eindeutiger Filterkisseninfektion als Endophthalmitis behandeln, sofern keine andere Ursache nachgewiesen wird1). Ein Filterkissenleck wird häufig festgestellt, aber entzündlicher Debris kann die Leckstelle vorübergehend verschließen.

Zur Vorhersage der Filterfunktion nach einer filtrierenden Operation und zur Früherkennung von Komplikationen muss das Sickerkissen bei jeder Untersuchung sorgfältig beobachtet werden. Mit der Spaltlampenmikroskopie werden die folgenden fünf Punkte überprüft.

  • Ausdehnung (Verbreitung) : Diffuse Sickerkissen haben eine bessere drucksenkende Wirkung als lokalisierte. Ein überhängendes Sickerkissen, das zur Hornhautseite hin hängt, kann das Sehen beeinträchtigen.
  • Höhe : Ein niedriges, flaches Sickerkissen deutet auf eine verminderte Filterfunktion hin.
  • Wanddicke : Bei gleichzeitiger Anwendung von Antimetaboliten kommt es häufig zu einer Verdünnung der Sickerkissenwand. Ein verdünntes Sickerkissen hat oft eine gute drucksenkende Wirkung, neigt aber zu Kammerwasserleckagen. Ein verkapseltes Sickerkissen, das von einer dicken Membran umgeben ist, führt oft zu einer schlechten drucksenkenden Wirkung.
  • Gefäßverteilung : Ein ischämisches Sickerkissen ohne Gefäßverteilung hat ein hohes Risiko für Kammerwasserleckagen.
  • Seidel-Test : Die Oberfläche des Sickerkissens mit einem Fluoreszein-Teststreifen anfärben, um das Vorhandensein einer Kammerwasserleckage zu überprüfen. Einzelheiten finden Sie im Abschnitt „Diagnose und Untersuchungsmethoden“.
  • Sickerkissenleckage (größter Risikofaktor) : Erhöht das Infektionsrisiko um das 26-fache 1). Die Kammerwasserleckage aus dem Sickerkissen ist der Hauptrisikofaktor 4)7), wobei späte Leckagen ein höheres Risiko darstellen als frühe Leckagen 1). Bei einem Sickern (oozing) von Kammerwasser kann unter Beachtung der Infektionsgefahr abgewartet werden, aber ein eindeutiges Leck erfordert grundsätzlich eine Behandlung.
  • Verwendung von Antimetaboliten (MMC, 5-FU) : Führt zu einer Abnahme der Becherzellen und einer verminderten Mucinproduktion, wodurch die Schutzbarriere der Bindehaut geschwächt wird. Fördert die allgemeine Verdünnung und Avaskularität der Sickerkissenwand. Bei Verwendung von Mitomycin C erreicht das Leckagerisiko nach 5 Jahren 15 % 11).
  • Verdünnung und Avaskularität der Sickerkissenwand : Häufig bei Trabekulektomie mit Antimetaboliten. Ein Sickerkissen mit verdünnter Wand neigt zu Kammerwasserleckagen, und die Leckage ist ein Risikofaktor für eine Sickerkisseninfektion.
  • Unteres Sickerkissen : Die Exposition gegenüber dem Tränensee und das Fehlen des Schutzes durch das Oberlid erhöhen die Infektionsrate. Im Vergleich zu oberen Sickerkissen (1,3 %/Patientenjahr) beträgt die Rate bei unteren 7,8 %/Patientenjahr 1).
  • Limbusbasierter Bindehautschnitt : Höhere Infektionsrate im Vergleich zum fornixbasierten Schnitt (8 % vs. 0 %) 1). Avaskuläre Sickerkissen treten häufiger bei der limbusbasierten Schnitttechnik auf.
  • Sonstige : Konjunktivitis, Blepharitis, Infektionen der oberen Atemwege, junges Alter, axiale Myopie, chronische Anwendung von Antibiotika.

Die Erreger variieren je nach Zeitpunkt des Auftretens. In der Literatur wurden über 100 krankheitserregende Mikroorganismen berichtet 1).

Zeitpunkt des AuftretensHaupterregerMerkmale
Frühes AuftretenKoagulase-negative StaphylokokkenNiedrige Virulenz, relativ gute Prognose
Spätes AuftretenStreptokokken, H. influenzaeHohe Virulenz, schlechte Prognose

Grampositive Kokken sind am häufigsten, hauptsächlich die Gattungen Streptococcus (etwa 385 Isolate) und Staphylococcus (etwa 296 Isolate). Bei gramnegativen Bakterien sind die Gattungen Moraxella (etwa 79 Fälle) und Haemophilus (etwa 63 Fälle) häufig 1). Selten wurden auch Zoonosen wie Capnocytophaga canimorsus berichtet 2). Eine schwedische retrospektive Studie berichtete eine Inzidenz von Endophthalmitis und schwerer Blebitis nach Trabekulektomie von 7,2 pro 1000 Operationen 12).

Q Was ist der größte Risikofaktor für eine Infektion des Filterbläschens?
A

Das Austreten von Kammerwasser aus dem Filterbläschen ist der größte Risikofaktor und erhöht das Infektionsrisiko um das 26-fache 1). Die Verwendung von Antimetaboliten führt zu einer Ausdünnung und Avaskularität der Bläschenwand, was das Leckagerisiko erhöht. Besonders ischämische Bläschen mit dünner Wand und geringer Vaskularisation neigen zu Leckagen. Bei jeder Untersuchung ist es wichtig, mittels Seidel-Test das Vorliegen einer Leckage zu überprüfen.

Die Beobachtung des Erscheinungsbildes des Bläschens ist grundlegend; überprüfen Sie die zuvor genannten 5 Punkte (Ausdehnung, Höhe, Wanddicke, Vaskularisation, Seidel-Test).

Dies ist eine grundlegende Untersuchung zur Bestätigung des Kammerwasseraustritts aus dem Filterbläschen.

  • Tragen Sie einen mit topischem Anästhetikum getränkten Fluoreszein-Streifen vorsichtig auf die Oberfläche des Bläschens auf.
  • Beobachten Sie das gesamte Bläschen unter Blaufilter.
  • Bei Kammerwasseraustritt ist das durch Kammerwasser verdünnte Fluoreszein als Fluss sichtbar (Seidel-Test positiv).
  • Lassen Sie die Lider einmal schließen und beobachten Sie das gesamte Bläschen unmittelbar nach dem Öffnen für einige Sekunden, um die Beurteilung zu erleichtern.
  • Auch die Bestätigung des Ortes und des Ausmaßes der Leckage ist wichtig.

Die folgenden repräsentativen Methoden zur Klassifikation von Bläschen nach ihrem Aussehen sind gebräuchlich.

  • Moorfields-Bleb-Graduierungssystem (MBGS) : Klassifikationsmethode zur standardisierten Beurteilung der Bleb-Morphologie8)
  • Indiana-Bleb-Erscheinungsgraduierungsskala (IBAGS) : Klassifikationsmethode zur systematischen Graduierung des Bleb-Erscheinungsbildes9)

Beide sind nützlich zur Beurteilung der Filterfunktion und zur Vorhersage des Infektionsrisikos. Durch die Kombination mit der Vorderabschnitts-OCT können die innere Struktur des Blebs und die Dicke der Bleb-Wand objektiver beurteilt werden10).

  • Konjunktivaler Abstrich und Kultur : Probenentnahme aus eitrigem Sekret und Beimpfung von Blutagar, Schokoladenagar, Thioglykolatmedium usw.1)
  • Vorderkammer- und Glaskörperpunktion : ab Stadium II obligatorisch. Gleichzeitige intravitreale Antibiotikainjektion mit der Kultur.
  • PCR : Da die Negativrate der Kultur mit 21–86 % hoch ist, ist die Ergänzung durch PCR nützlich. Es gibt Berichte über eine Verbesserung der Nachweisrate von 47,6 % auf 95,3 %1).
  • B-Scan-Ultraschall : Bei nicht einsehbarem Fundus im Stadium IIIb Bestätigung von Glaskörpertrübung und Aderhautverdickung1).
  • Vorderabschnitts-OCT : Nützlich zur Beurteilung der inneren Bleb-Struktur. Ermöglicht die Beobachtung der Skleralappenöffnung, des Bleb-Lumens, von Mikrozysten usw.10).
  • Endophthalmitis nach Kataraktoperation : Zeitpunkt des Auftretens und Operationsverfahren unterscheiden sich. Die Endophthalmitis nach Kataraktoperation tritt in der Regel früh (etwa eine Woche) nach der Operation auf, während die filtrazionsbläschenassoziierte Infektion oft Jahre nach der Operation auftritt. Die Differenzierung erfolgt anhand des Vorhandenseins oder Fehlens von Infektionszeichen am Bleb.
  • Akute anteriore Uveitis : Das Vorhandensein einer Bleb-Trübung und einer deutlichen peripheren Rötung (White-on-Red) ist entscheidend für die Differenzierung. Bei nichtinfektiöser Uveitis tritt keine Trübung des Bleb selbst auf.
  • Eingekapseltes Bleb (encapsulated bleb) : Nichtinfektiöse Komplikation, die einige Wochen nach der Operation auftritt. Das Bleb-Lumen ist von einer dicken Membran umgeben, was zu einem unzureichenden Augeninnendruckabfall führt, jedoch ohne Infektionszeichen (White-on-Red).

Bei fehlender Beteiligung des Glaskörpers wird eine aggressive lokale Antibiotikatherapie durchgeführt. Bleibt die Infektion auf das Filterkissen und die Vorderkammer beschränkt, kann sie mit lokalen und systemischen Antibiotika behandelt werden.

  • Verstärktes Augentropfen-Regime: Vancomycin (25–50 mg/mL) oder Cefazolin (50 mg/mL) und Tobramycin (14 mg/mL) im Wechsel alle 30 Minuten. Nach 48 Stunden je nach Besserung schrittweise reduzieren.
  • Alternatives Regime: Fluorchinolon der 4. Generation (z. B. Moxifloxacin) stündlich.
  • Subkonjunktivale Injektion: Je nach Stadium der Filterkisseninfektion können subkonjunktivale oder intrakamerale Antibiotikainjektionen erfolgen.

24 Stunden nach klinischer Besserung kann der Zusatz von topischen Steroiden erwogen werden, jedoch aufgrund von Berichten über eine Verschlechterung der Prognose mit Vorsicht. Antibiotika basierend auf Kulturergebnissen anpassen und das Therapieansprechen sorgfältig überwachen. Steroide erst beginnen, wenn die Infektion unter Kontrolle bestätigt ist.

Behandlung der filterkissenassoziierten Endophthalmitis (BAE)

Abschnitt betitelt „Behandlung der filterkissenassoziierten Endophthalmitis (BAE)“

Glaskörperpunktion zur Probenentnahme und gleichzeitige intravitreale Antibiotikainjektion durchführen.

MedikamentDosisAnmerkungen
Vancomycin1 mg/0,1 mLAbdeckung grampositiver Bakterien
Ceftazidim2,25 mg/0,1 mLAbdeckung gramnegativer Bakterien
Dexamethason0,4 mg/0,1 mlAdjuvant (Entzündungshemmung)

Wenn sich die Infektion auf die Glaskörperhöhle ausbreitet, ist häufig eine Vitrektomie erforderlich. Einige Berichte zeigen, dass die Vitrektomie (PPV) eine bessere Sehprognose bietet als die intravitreale Injektion, während neuere Daten eine vergleichbare Sehprognose beider Methoden nahelegen. Da die Sehprognose sehr schlecht ist, wenn die Infektion die Glaskörperhöhle erreicht, ist ein schnelles Eingreifen erforderlich. Die Endophthalmitis Vitrectomy Study (EVS) untersuchte Endophthalmitis nach Kataraktoperationen, deren Patientenprofil, Erreger und Entstehungsmechanismus sich von BRI/BAE unterscheiden; daher ist eine direkte Übertragung der EVS-Ergebnisse nicht angemessen. Insbesondere bei BAE treten häufig späte Manifestationen und hochvirulente Bakterien auf, sodass eine großzügigere Indikation zur Vitrektomie erwogen werden sollte.

In der Leitlinie zur Glaukombehandlung (5. Auflage) wird in CQ6 Folgendes zur Antibiotikaanwendung nach Trabekulektomie empfohlen 4).

Eine prophylaktische Antibiotikagabe wird empfohlen, jedoch besteht kein Konsens über das Medikament, die Methode oder die Dauer 4). Die an der Studie teilnehmenden Spezialisten verwendeten in der Regel für 1–3 Monate nach der Operation kontinuierlich antibiotische Augentropfen, und da in diesem Zeitraum keine postoperativen Infektionen auftraten, wird die kontinuierliche Anwendung von Antibiotika für 1–3 Monate nach der Operation stark empfohlen (Empfehlungsstärke: starke Empfehlung für „durchführen“, Evidenzstärke: C) 4).

Eine landesweite Untersuchung von Filterkisseninfektionen (104 Augen) verglich eine Gruppe mit langfristiger Antibiotikaanwendung mit einer Gruppe ohne Anwendung und zeigte, dass die langfristige Anwendung das Auftreten einer Filterkisseninfektion signifikant verzögerte 6).

  • Gruppe ohne Anwendung: Medianes Auftreten der Infektion: 3,9 Jahre
  • Gruppe mit langfristiger Anwendung: Medianes Auftreten der Infektion: 6,4 Jahre
  • Gruppe mit Augensalbe: Medianes Auftreten der Infektion: 10,5 Jahre

Wenn die Filterkissenwand dünn ist und beim Anheben des Oberlids Kammerwasser austritt oder subjektive Symptome wie Tränenansammlung beim Aufwachen bestehen, sollte die Anwendung einer Neu-Chinolon-Antibiotika-Augensalbe vor dem Schlafengehen aktiv in Betracht gezogen werden 4).

In 9 von 26 Augen der Gruppe mit langfristiger Anwendung wurden resistente Bakterien nachgewiesen, aber 6 dieser 9 waren Staphylococcus epidermidis, der seltener zu einer schweren Endophthalmitis führt 4). Eine unnötige Antibiotikaanwendung sollte auch aus gesundheitsökonomischer Sicht vermieden werden.

Wenn eine Leckage festgestellt wird, die der größte Risikofaktor für eine Sickerkisseninfektion ist, ist ein angemessenes Management erforderlich.

  • Konservative Behandlung: Verbandskontaktlinsen, Kompressionsnaht, Cyanacrylat-Gewebekleber, Kompressionsaugenverband
  • Eigenblutinjektion: Injektion von Eigenblut in und um das Sickerkissen. Kann einen plötzlichen Anstieg des Augeninnendrucks verursachen.
  • Chirurgische Behandlung: Konjunktivalvorverlagerung (Erfolgsrate 100 %), Amnionmembrantransplantation (Erfolgsrate 45 %). Bei hohem Infektionsrisiko oder anhaltender Hypotonie ist eine Sickerkissenrekonstruktion mit freiem Konjunktivaltransplantat oder gestieltem Konjunktivallappen von oben indiziert. Langfristig müssen eine Neubewertung der Sickerkissenmorphologie und das Augeninnendruckmanagement parallel durchgeführt werden 11)
Q Wie lange sollten nach einer Glaukomoperation Antibiotika verwendet werden?
A

Die Glaukom-Leitlinie (5. Auflage) empfiehlt dringend die Fortsetzung der Antibiotika für 1–3 Monate postoperativ (Evidenzstärke C) 4). Danach sollte je nach Infektionsrisiko, z. B. Vorliegen einer Sickerkissenleckage, die langfristige Anwendung einer Neochinolon-Augensalbe vor dem Schlafengehen in Betracht gezogen werden. Es wurde berichtet, dass die langfristige Anwendung den medianen Zeitpunkt des Infektionsbeginns von 3,9 Jahren in der Nichtanwendergruppe auf 10,5 Jahre in der Salbengruppe signifikant verzögert 6). Eine wahllose Anwendung sollte jedoch vermieden werden, und die Entscheidung zur Fortsetzung sollte in Absprache mit dem behandelnden Arzt getroffen werden.

Die Pathologie der Sickerkissen-assoziierten Infektion beruht darauf, dass das durch die Glaukomfiltrationchirurgie gebildete Sickerkissen als Eintrittspforte (Portal) für die Infektion dient.

Bei der Trabekulektomie wird Kammerwasser unter dem Skleralappen in den subkonjunktivalen Raum geleitet, um ein Filterkissen zu bilden. Wenn die Wand dieses Filterkissens dünn wird oder undicht wird, können Tränenflüssigkeit oder periorbitale Kommensalbakterien in das Auge eindringen.

Die Verwendung von Antimetaboliten (MMC, 5-FU) erhöht das Infektionsrisiko durch mehrere kombinierte Mechanismen.

  • Reduziert die Anzahl der Becherzellen in der Konjunktiva, verringert die Mucinproduktion und beeinträchtigt die Schutzfunktion des Tränenfilms.
  • Fördert die allgemeine Ausdünnung und Avaskularisierung der Konjunktiva, wodurch die mechanische Festigkeit der Kissenwand verringert wird.
  • Schwächt die physikalischen und immunologischen Abwehrbarrieren, wodurch das Eindringen von Bakterien von der Konjunktivaoberfläche in das Auge erleichtert wird.
  • Hemmt die Proliferation von Fibroblasten, verzögert die Wundheilung und verringert die Reparaturfähigkeit des Konjunktivaepithels.

Antimetaboliten sind in der heutigen Trabekulektomie zur Narbenhemmung unverzichtbar, aber das mit ihrer Verwendung verbundene erhöhte langfristige Infektionsrisiko muss stets berücksichtigt werden.

Die Morphologie des Filterkissens ändert sich im Laufe der Zeit. Nach einer Trabekulektomie bildet sich im subkonjunktivalen Gewebe während des Wundheilungsprozesses eine Narbe. Die gleichzeitige Anwendung von Mitomycin C (MMC) unterdrückt die frühe überschießende Gewebereaktion und erhöht die Wahrscheinlichkeit, das Filterkissen langfristig zu erhalten. In den ersten postoperativen Monaten, in denen die Narbenbildung rasch fortschreitet, ändern sich der Abflusswiderstand des Skleralappens und die Kissenmorphologie ständig. Wenn in dieser Zeit keine angemessene Behandlung erfolgt, schreitet die Ausdünnung der Kissenwand leicht voran.

Avaskuläre ischämische Filterkissen haben ein besonders hohes Risiko für Kammerwasserleckagen. Avaskuläre Kissen treten häufiger bei der limbusbasierten Konjunktivalinzisionstechnik auf, was auch mit der höheren Infektionsrate der limbusbasierten Inzision (8 % vs. 0 % bei fornixbasierter Inzision) 1) zusammenhängt. Die allmähliche Ausdünnung der Kissenwand mit Kammerwasseraustritt (Oozing) oder das Eindringen von Bakterien in das Kissen (Filterkisseninfektion) sind langfristige Komplikationen, die beachtet werden müssen. Bei Oozing wird unter Infektionsvorsicht beobachtet, während ein eindeutiges Leck eine Behandlungsindikation darstellt.

Zusammenhang zwischen Erregern und Krankheitsstadium

Abschnitt betitelt „Zusammenhang zwischen Erregern und Krankheitsstadium“

Die Virulenz der Erreger korreliert mit dem Zeitpunkt des Auftretens 1). Frühmanifestationen werden hauptsächlich durch niedrigvirulente Bakterien (koagulasenegative Staphylokokken) verursacht, ähnlich wie bei Endophthalmitis nach Kataraktoperationen, die aus der kommensalen Flora von Tränenflüssigkeit und Augenlidern stammen. Diese Bakterien produzieren keine Exotoxine, und eine angemessene Behandlung führt zu einer guten Prognose.

Spätmanifestationen hingegen betreffen virulentere Bakterien wie Streptokokken (S. pneumoniae, S. viridans-Gruppe), Haemophilus influenzae und Serratia spp. 1). Sie zeichnen sich durch Exotoxinproduktion und hohes Gewebeinvasionsvermögen aus, was zu einem raschen klinischen Verlauf und einer schlechten Sehprognose führt.

Kandarakis et al. (2022) haben die in der Literatur berichteten BRI-Erreger umfassend überprüft und mehr als 100 Mikroorganismen identifiziert. Bei den grampositiven Kokken waren Streptococcus (ca. 385 Isolate) und Staphylococcus (ca. 296 Isolate) mit Abstand am häufigsten, während bei den gramnegativen Bakterien Moraxella (ca. 79 Fälle) und Haemophilus (ca. 63 Fälle) die wichtigsten waren1).

Yang et al. (2021) berichteten über einen 81-jährigen Mann, der 10 Jahre nach einer Trabekulektomie eine Blebitis durch Capnocytophaga canimorsus entwickelte. Der Patient ließ sich täglich von seinem Hund das Gesicht lecken, und es wurde angenommen, dass die im Maul des Hundes vorkommenden Bakterien über das Filterbläschen infizierten. Durch eine Rekonstruktion der Trabekulektomie wurde eine gute Sehprognose (20/70) erzielt2).


7. Aktuelle Forschung und Zukunftsaussichten (Berichte aus der Forschungsphase)

Abschnitt betitelt „7. Aktuelle Forschung und Zukunftsaussichten (Berichte aus der Forschungsphase)“

Die Übersichtsarbeit von Kandarakis et al. (2022) weist auf das Problem der hohen Negativrate von 21–86 % bei der konventionellen Kultur hin. Die Echtzeit-PCR verbessert die Bakteriennachweisrate von 47,6 % auf 95,3 %. Darüber hinaus wird die Metagenomik (Hochdurchsatz-DNA-Sequenzierung) zur umfassenden Mikroorganismenidentifikation als nächste Generation von Diagnosemethoden erwartet1).

Reduzierung des Infektionsrisikos durch minimalinvasive Glaukomchirurgie (MIGS)

Abschnitt betitelt „Reduzierung des Infektionsrisikos durch minimalinvasive Glaukomchirurgie (MIGS)“

Übersichtsarbeiten zu MIGS zeigen, dass diese im Vergleich zur konventionellen Filterchirurgie weniger invasiv ist und schwere postoperative Komplikationen reduzieren soll. Allerdings gibt es auch Verfahren, die ein Filterbläschen bildende Implantate verwenden, sodass das Infektionsrisiko für jede Operationsart separat bewertet werden muss3).

Der Bericht von Yang et al. (2021) über eine Capnocytophaga canimorsus-Blebitis zeigte, dass der Kontakt mit Haustieren ein neuer Risikofaktor für Infektionen in Augen mit vorheriger Filterchirurgie sein kann. Die DNA-Sequenzierung ermöglicht nun die Identifizierung von Erregern, die zuvor schwer zu kultivieren waren2).

Zukünftige Herausforderungen bei der postoperativen Antibiotikaanwendung

Abschnitt betitelt „Zukünftige Herausforderungen bei der postoperativen Antibiotikaanwendung“

Die Glaukom-Leitlinie (5. Auflage) gibt an, dass die langfristige Anwendung postoperativer Antibiotika den Infektionsbeginn signifikant verzögert, jedoch kein Konsens über das Medikament, die Methode und die Dauer besteht, und dass Studien mit hohem Evidenzgrad abgewartet werden4). Zusammen mit den Problemen der Veränderung der Konjunktivalflora und dem Auftreten resistenter Bakterien ist die Durchführung langfristiger randomisierter kontrollierter Studien eine wichtige zukünftige Aufgabe.


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  2. Yang MC, Ling J, Mosaed S. Capnocytophaga canimorsus blebitis: case report and review of literature. BMC Ophthalmol. 2021;21:59.
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