선천성 TTP (Upshaw-Schulman 증후군): ADAMTS13 유전자 돌연변이로 인해 발생합니다. 전체 증례의 약 5%를 차지합니다. NCBI ClinVar 데이터베이스에는 260개 이상의 돌연변이 부위가 확인되었으며, 약 60%가 미스센스 돌연변이, 약 20%가 작은 단편 결실 또는 삽입입니다6).
후천성 TTP: ADAMTS13에 대한 자가항체가 원인이며, 전체 증례의 약 95%를 차지합니다3).
QTTP의 안과적 징후는 얼마나 자주 발생합니까?
A
안과적 징후는 증례의 14~20%에서 보고됩니다. 망막 출혈, 혈관 폐쇄, 장액성 망막 박리, 유두 부종 등이 포함됩니다. 안구 증상이 전신 증상보다 먼저 나타날 수 있으므로 안과 의사가 TTP를 먼저 의심할 수 있습니다.
Bilateral proliferative retinopathy and ischemic optic neuropathy in a patient with atypical hemolytic-uremic syndrome: A case report. Medicine (Baltimore). 2019 Sep 27; 98(39):e17232. Figure 4. PMCID: PMC6775429. License: CC BY.
수술 후 오른쪽 눈의 안저 컬러 사진. 시신경 유두 주변에 출혈이 보이지만 망막은 잘 부착되어 있습니다.
백신: COVID-19 백신 접종 후 발병이 보고되었으며, BNT162b2 접종 후가 가장 많습니다(문헌상 10예 중 7예)5).
외과 수술: 심장 수술(판막 치환술, TAVR) 후 발병 사례가 있습니다4).
HIV 감염7).
QTTP는 유전되나요?
A
선천성 TTP(Upshaw-Schulman 증후군)는 ADAMTS13 유전자의 돌연변이로 인해 발생하는 유전 질환입니다. NCBI ClinVar 데이터베이스에는 260개 이상의 돌연변이 부위가 등록되어 있으며, 복합 이형접합 돌연변이 형태를 취하는 경우가 많습니다. 그러나 전체 TTP의 약 95%는 후천성이며, ADAMTS13에 대한 자가항체가 원인입니다.
난치/재발 예:빈크리스틴 황산염, 시클로포스파미드 등의 면역억제제, 비장절제술도 고려됩니다.
망막 허혈에 대한 안과적 치료:광응고술을 시행합니다. 신생혈관에 대한 대응으로 이루어집니다.
QTTP에서 혈소판 수혈이 금기인 이유는 무엇인가요?
A
TTP에서는 혈소판이 풍부한 미세혈전이 전신의 미세혈관에 형성됩니다. 이 상태에서 혈소판 수혈을 하면 추가적인 미세혈전 형성을 촉진하여 병태를 악화시킬 위험이 있습니다. 치료의 첫 번째 선택은 혈장교환술이며, 혈소판 수혈은 생명을 위협하는 긴급 출혈이 있는 경우를 제외하고는 시행해서는 안 됩니다.
Q안과적 합병증에 대한 치료는 어떻게 이루어지나요?
A
망막 허혈이 발생한 경우 광응고술을 시행합니다. 망막 허혈에 이차적으로 발생한 신생혈관에 대한 대응으로 이루어집니다. 유두부종은 두개내압 항진이나 악성 고혈압에 의한 경우가 있으며, 원질환(TTP)의 치료와 병행하여 관리해야 합니다.
vWF는 혈관 내피나 거핵구에서 분비되는 단백질이며, 정상적으로는 ADAMTS13에 의해 절단·분해됩니다. 후천성 TTP에서는 ADAMTS13에 대한 자가항체가 형성되고, 선천성에서는 ADAMTS13 유전자 자리의 돌연변이가 원인이 됩니다.
ADAMTS13의 결핍 또는 활성 저하로 인해 혈장 내 분해 효소에 저항성이 있는 고분자량 vWF(초고분자량 vWF 다량체)가 혈류에 축적됩니다. 이들이 혈소판과 결합하여 혈소판이 풍부한 미세혈전을 형성하고 전신의 미세혈관을 폐쇄합니다. 기계적 용혈에 의한 빈혈(미세혈관병성 용혈성 빈혈)도 동시에 발생합니다.
Galindo-Calvillo 등(2021)은 COVID-19 팬데믹 기간 동안 혈장교환 없이 저용량 리툭시맙(100 mg/주×4회)과 프레드니손(1 mg/kg)만으로 완전한 혈액학적 관해를 달성한 재발성 TTP 사례를 보고했습니다2). 장기 손상이 없는 안정적인 재발성 TTP 환자의 하위 집단에서는 혈장교환이 필요하지 않은 치료 전략의 가능성이 시사됩니다.
Zhu H, Liu J-Y. Thrombotic thrombocytopenic purpura with neurological impairment: A Review. Medicine. 2022;101(49):e31851.
Galindo-Calvillo CD, Torres-Villalobos G, Higuera-Calleja J, et al. Treating thrombotic thrombocytopenic purpura without plasma exchange during the COVID-19 pandemic. Transfus Apher Sci. 2021;60:103107.
Xu J, Cai H, Xu J, et al. Case report of thrombotic thrombocytopenic purpura during pregnancy with a review of the relevant research. Medicine. 2024;103(20):e38112.
Shao X, Hao P, Dong X, et al. Thrombotic Thrombocytopenia Purpura (TTP) following emergent aortic valve replacement after a complicated TAVR procedure. J Cardiothorac Surg. 2024;19:545.
Hammami E, Mdhaffar M, Jamoussi K, et al. Acquired Thrombotic Thrombocytopenic Purpura After BNT162b2 COVID-19 Vaccine: Case Report and Literature Review. Lab Med. 2022.
Li P, Lv T, Chen S, et al. An ADAMTS13 mutation that causes hereditary thrombotic thrombocytopenic purpura: a case report and literature review. BMC Med Genomics. 2021;14:252.
Lin HC, Chen PC, Chen YF, et al. Concurrence of immune thrombocytopenic purpura and thrombotic thrombocytopenic purpura: a case report and review of the literature. J Med Case Rep. 2023;17:38.
Wang Z, Xu H, Peng B, et al. Flavorubredoxin, a Candidate Trigger Related to Thrombotic Thrombocytopenic Purpura. Front Cell Infect Microbiol. 2022;12:864087.