العلاج الجيني باستخدام النواقل الفيروسية هو تقنية لاستكمال أو إصلاح الجينات المعطلة. تمتلك العين ثلاث خصائص تجعلها عضوًا مناسبًا بشكل خاص للعلاج الجيني: الامتياز المناعي، والحاجز الدموي الشبكي، والخلايا متمايزة نهائيًا.
الامتياز المناعي هو آلية تحد بها العين من الاستجابة الالتهابية للحفاظ على الوظيفة البصرية. تثبط الجزيئات المناعية الخلايا الالتهابية وتقلل الاستجابة المناعية ضد الجين المُدخل. الحاجز الدموي الشبكي يحد من التعرض الجهازي للدواء ويقلل الآثار الجانبية. نظرًا لأن العين تتكون من خلايا متمايزة نهائيًا (الخلايا المستقبلة للضوء وخلايا RPE)، فإن خطر إدماج الجين في الكروموسومات أو إحداث طفرات إدراجية يكون منخفضًا بطبيعته.
تم اكتشاف أكثر من 270 طفرة جينية تسبب أمراض الشبكية الوراثية (IRD)، وتظهر الطفرات بشكل رئيسي في الخلايا المستقبلة للضوء أو خلايا RPE. معظم أمراض IRD هي أمراض أحادية الجين، مما يجعلها أهدافًا مثالية للعلاج الجيني البديل.
في ديسمبر 2017، وافقت إدارة الغذاء والدواء الأمريكية على فوريتيجين نيبارفوفيك (الاسم التجاري: لوكستورنا) الذي طورته شركة Spark Therapeutics. كما وافقت عليه وكالة الأدوية الأوروبية (EMA) في عام 2018 5). وهو أول منتج علاج جيني للعين في العالم يستهدف أمراض الشبكية الوراثية (LCA2 والتهاب الشبكية الصباغي) المرتبطة بالطفرات في أليلَي جين RPE65.
Qلماذا تقدم العلاج الجيني للعين أكثر من الأعضاء الأخرى؟
A
تمتلك العين خصائص الامتياز المناعي، والحاجز الدموي الشبكي، والمساحة المغلقة، مما يسمح بتوصيل كمية صغيرة من الناقل بكفاءة إلى الخلايا المستهدفة. بالإضافة إلى ذلك، تتكون الشبكية من خلايا متمايزة نهائيًا غير منقسمة، مما يضمن تعبيرًا جينيًا مستقرًا وطويل الأمد. هذه العوامل تسرع العلاج الجيني في مجال العيون.
AAV هو فيروس DNA أحادي السلسلة غير مغلف ينتمي إلى عائلة الفيروسات الصغيرة. وهو حاليًا الناقل الأكثر استخدامًا في العلاج الجيني للشبكية5).
مزايا AAV هي كما يلي5):
غير ممرض: لا يسبب أمراضًا لدى البشر
خطر منخفض للطفرات الإدراجية: الجينوم موجود كإبيزوم
غير قادر على التكاثر: لا يتكاثر بدون فيروس مساعد
نقل جيني إلى خلايا عصبية غير منقسمة متنوعة: يمكن أن يصيب العصي والمخاريط والظهارة الصباغية للشبكية
تعبير مستمر بعد جرعة واحدة: يعبر بشكل مستقر لفترة طويلة في الخلايا غير المنقسمة
تم تحديد 13 نمطًا مصليًا متميزًا، وتستخدم AAV2 وAAV4 وAAV5 وAAV8 بشكل رئيسي في طب العيون. نجح AAV2 في إصابة الطبقات الداخلية للشبكية من خلال الجسم الزجاجي، لكن وصوله إلى الطبقات الخارجية محدود. يُظهر الحقن تحت الشبكية لـ AAV2 وAAV8 إدخالًا فعالًا إلى الظهارة الصباغية للشبكية والخلايا المستقبلة للضوء على التوالي.
حوالي 70% من عامة السكان لديهم أجسام مضادة موجودة مسبقًا ضد AAV2، و38% لديهم أجسام مضادة ضد AAV8. ترتبط هذه الأجسام المضادة المعادلة بانخفاض التعبير الجيني، لذلك قد تكون النواقل القائمة على AAV8 أكثر فعالية من AAV2.
تبلغ سعة التعبئة حوالي 4.7-4.8 كيلو قاعدة، مما يحد من قدرتها على استيعاب الجينات الكبيرة مثل ABCA4 (مرض ستارغاردت) وMYO7A (متلازمة آشر) 5).
فيروس DNA مزدوج الشريط بدون غلاف، يمكنه حمل جينات يصل حجمها إلى 37 كيلو قاعدة. يتميز ببدء التعبير خلال 48 ساعة من الحقن. ومع ذلك، فإنه يسبب استجابة مناعية قوية، وقد تم الإبلاغ عن آثار جانبية خطيرة مثل الحمى وتلف الكبد والعدوى الجهازية والوفاة، لذلك يُستخدم حالياً في طب العيون فقط في تجربة واحدة لسرطان الشبكية5).
فيروس ارتجاعي RNA أحادي الشريط مشتق من فيروس نقص المناعة البشرية (HIV) وفيروس فقر الدم الخيلي المعدي (EIAV) وغيرها. يمكنه حمل جينات بحجم 8-10 كيلو قاعدة، وهو فعال في إدخال الجينات إلى خلايا الظهارة الصباغية للشبكية (RPE) لكنه لا يستهدف الخلايا المستقبلة للضوء بشكل فعال. يختلف عن AAV والفيروس الغدي في أنه يدمج الحمض النووي المتمم في الكروموسوم، مما يشكل خطر الطفرات الإدراجية 5). تُستخدم نواقل EIAV في التجارب السريرية لمرض ستارغاردت ومتلازمة آشر (USH1B).
Qما الذي تؤثر عليه حدود سعة تعبئة AAV؟
A
نظراً لأن سعة AAV محدودة بحوالي 4.7-4.8 كيلو قاعدة، فإن الأمراض التي تتطلب جينات كبيرة تتجاوز هذا الحجم، مثل ABCA4 (مرض ستارغاردت) وMYO7A (متلازمة آشر) وEYS، لا يمكن معالجتها باستخدام AAV 5). في هذه الحالة، تكون نواقل الفيروس البطيء خياراً، لكنها تنطوي على خطر الإدماج الكروموسومي.
هناك ثلاث طرق رئيسية لإعطاء العلاج الجيني الفيروسي للعين. فيما يلي خصائص كل طريقة ومؤشراتها.
الحقن داخل الزجاجي
الاجتياحية: الأقل اجتياحاً. يمكن إجراؤه في العيادة الخارجية تحت التخدير الموضعي
المنطقة المستهدفة: بشكل رئيسي الشبكية الداخلية. يشكل الغشاء الحدودي الداخلي (ILM) حاجزاً كبيراً للوصول إلى الشبكية الخارجية (RPE والخلايا المستقبلة للضوء) 5)
الاستجابة المناعية: قد تحدث استجابة مناعية خلطية قوية. يمكن أن يؤدي إنتاج الأجسام المضادة المعادلة إلى التأثير على إعطاء نفس الناقل للعين المقابلة
الموقع المستهدف: وصول مباشر إلى الطبقة الخارجية للشبكية (الظهارة الصباغية للشبكية والخلايا المستقبلة للضوء). يُعطى فوريتيجين نيبارفوفيك عبر هذا المسار5)
الاستجابة المناعية: استجابة مناعية خلطية ضئيلة. التهاب أقل من الحقن داخل الزجاجي5)
الحقن فوق المشيمية (suprachoroidal) هو مسار جديد نسبيًا يمكنه استهداف الظهارة الصباغية للشبكية والمشيمية المحيطية على نطاق واسع، وقد يتجنب التلاعب المباشر بالبقعة5).
تُجرى في غرفة العمليات تحت التخدير خلف المقلة (أو التخدير العام). بعد تطهير سطح العين باليود، يُجرى استئصال الزجاجية عبر الجسم الهدبي المسطح باستخدام أدوات قياس 23 أو 25. ثم تُوضع إبرة 41 قياس في الحيز تحت الشبكية، ويُحقن محلول الري داخل العين (BSS) لتشكيل فقاعة، ثم يُعطى الناقل الفيروسي. يُعد التصوير المقطعي التوافقي البصري أثناء الجراحة مفيدًا لتحديد الموقع وتحسين دقة الحقن.
بعد الجراحة، يُطلب من المريض الاستلقاء على الظهر لمدة 2-24 ساعة للاحتفاظ بالسائل في القطب الخلفي. يُعطى بريدنيزون فمويًا لمدة 21-61 يومًا بعد الجراحة، مع تقليل الجرعة تدريجيًا بعد الأسبوعين الأولين. تشمل متابعة المتابعة تقييم حدة البصر، مجال الرؤية، قياس الحساسية الدقيق، تخطيط كهربية الشبكية، التصوير المقطعي التوافقي البصري، تصوير قاع العين، والتصوير الذاتي التألق.
فورتيجين نيبارفوفيك (Luxturna) هو منتج علاج جيني عيني فيروسي معتمد من FDA (2017) وEMA (2018) لعلاج IRDs المرتبطة بالطفرات ثنائية الأليل في جين RPE655). يتم دمج الجين المنقول RPE65 في AAV2 ويتم توصيله إلى خلايا RPE الحية عن طريق الحقن تحت الشبكية.
في المرحلة الثالثة من التجارب، شارك 29 مريضًا تتراوح أعمارهم بين 3 سنوات وما فوق مع حدة بصر 20/60 أو أقل، وأظهرت النتائج تحسنًا في الرؤية الوظيفية باستخدام اختبار التنقل متعدد الإضاءة (MLMT) (لوحظ التهاب خفيف في مريضين ولكن بدون مضاعفات خطيرة).
معايير الأهلية هي كما يلي:
تأكيد الطفرات الممرضة ثنائية الأليل في جين RPE65
العمر 3 سنوات أو أكثر
حدة بصر 20/60 أو أقل، أو تضيق المجال البصري أقل من 20 درجة
حاليًا، هناك أكثر من 30 تجربة سريرية للعلاج ببدائل الجينات في طب العيون قيد التنفيذ.
Qأي المرضى يمكنهم تلقي لوكستورنا (فوريتيجين نيبارفوفيك)؟
A
المرضى الذين لديهم طفرات ممرضة ثنائية الأليل في جين RPE65 والذين لا يزال لديهم خلايا شبكية قابلة للحياة يمكن علاجها هم المؤهلون للعلاج 5). في حالات العمى الكامل حيث تكون الوظيفة البصرية قريبة من الصفر، يكون العلاج أقل فعالية، لذا من المهم العلاج في الوقت الذي لا تزال فيه الوظيفة البصرية المتبقية موجودة.
RPE65 (ريتينويد إيزوميروهيدرولاز) هو إنزيم يُعبر عنه بشكل كبير في خلايا RPE، ويلعب دورًا في تحويل إسترات الريتينيل من النوع all-trans إلى 11-cis-ريتينول في دورة الرؤية. يؤدي نقص RPE65 إلى نقص 11-cis-ريتينال (مشتق فيتامين أ الذي يعتبر مادة خام لأصباغ مستقبلات الضوء في الخلايا المستقبلة للضوء)، مما يعطل عملية التحويل الضوئي في المستقبلات الضوئية.
يتكون كابسيد AAV من بنية بيتا برميل وحلقات سطحية مكشوفة، وتحدد الحلقات السطحية الانتحاء النسيجي (tropism) 5). نظرًا لاختلاف الخلايا التي يتلامس معها الكابسيد حسب طريق الإعطاء، فإن الخلايا التي يتم نقلها إليها تحدد بمزيج من طريق الإعطاء والكابسيد.
انتحاء الخلايا الصبغية للشبكية (RPE) والخلايا المستقبلة للضوء حسب النمط المصلي هو كما يلي:
أولوية RPE: AAV1، AAV4، AAV6
أولوية الخلايا المستقبلة للضوء: AAV5، AAV8
الخلايا العقدية للشبكية (الحقن داخل الزجاجي): AAV2 (النوع الطبيعي)
من المعروف أن البروتينات الأجنبية والحمض النووي الأجنبي هي عوامل محفزة للالتهاب، ويمكن أن تسبب التهابًا حتى في البيئة العينية المحصنة مناعيًا. في الحقن داخل الزجاجي، ينتشر الناقل في جميع أنحاء التجويف الزجاجي مما يسهل حدوث استجابة مناعية خلطية. في المقابل، يوفر الحقن تحت الشبكية حماية أفضل للناقل من الجهاز المناعي، وبالتالي تكون التفاعلات الالتهابية أقل 5).
يسبب الكابسيد التهابًا داخل الزجاجي بشكل خاص، بينما تشارك المادة الوراثية في التهاب كل من الجزء الأمامي والخلفي للعين. وقد تم التأكد من أن الكابسيدات الفارغة تسبب أيضًا التهاب الزجاجي بعد الحقن داخل الزجاجي.
لم يتم فهم آلية CRA بعد علاج VN بشكل كامل، ولكن يُعتقد أن عدة عوامل تشارك في ذلك.
نظرية فرط التمثيل الغذائي: يؤدي فرط نشاط RPE65 بعد إنقاذ المستقبلات الضوئية إلى زيادة مفاجئة في التمثيل الغذائي للخلايا المستقبلة للضوء التي كانت في حالة تراجع، مما يسبب تلفًا خلويًا 2,3). تدعم هذه النظرية ملاحظة أن CRA يبدأ في المنطقة التي كان فيها تحسن المجال البصري أكثر وضوحًا.
التفاعل المناعي: في المرضى الذين تلقوا علاجًا سابقًا بناقل مختلف، يحدث تحسس مناعي مما قد يزيد من معدل حدوث CRA 2).
العوامل الجراحية: قد يلعب ارتفاع ضغط الحقن وسرعة الحقن والصدمة الميكانيكية دورًا.
7. أحدث الأبحاث والتوقعات المستقبلية (تقارير المرحلة البحثية)
أبلغ كوليسنيكوفا وآخرون (2022) عن متابعة لمدة 8 سنوات لمريض تلقى علاج VN في سن 11 عامًا وأصيب بضمور المشيمية والشبكية في سن 19 عامًا4). قبل العلاج، كانت autofluorescence قد اختفت تقريبًا، ولكن في متابعة 6 و8 سنوات، تم الكشف عن autofluorescence في المنطقة المجاورة للنقرة، مما يشير إلى استمرار وظيفة الدورة البصرية. بعد 8 سنوات، عادت حدة البصر في كلتا العينين إلى القيم الأساسية قبل العلاج، وكان المرض مستقرًا.
أبلغ ميرل وآخرون (2025) عن النتائج قصيرة المدى لعلاج VN في 4 أطفال (6-12 عامًا) مصابين بـ RPE65-IRD الخفيف3). تم تأكيد تأثير إنقاذ العصي في جميع الحالات من خلال تحسن FST (عتبة تحفيز المجال الكلي). لوحظ CRA في موقع شق الشبكية في 3 حالات، لكن لم يلاحظ توسع تدريجي. إذا أمكن التدخل في مرحلة مبكرة مع تنكس شبكي أقل، فقد يؤدي ذلك إلى تقليل خطر CRA سريع التوسع.
أبلغ كو وآخرون (2024) عن 4 حالات (العلاج الأولي في سن 6-11 عامًا، وإعطاء VN في سن 12-21 عامًا) حيث تم إعطاء VN لاحقًا للعين المقابلة التي عولجت سابقًا بناقل AAV مختلف (rAAV2-CB-hRPE65)2). حدث CRA في عيون VN في 3 من 4 حالات (5-22 شهرًا حتى الظهور). على الرغم من تأكيد تحسن FST في جميع الحالات، كان معدل حدوث CRA أعلى بكثير من المعتاد (15-75٪). اقترح المؤلفون آلية مشتركة للتحفيز المناعي والتمثيل الغذائي الزائد. يجب النظر بعناية عند إعطاء نواقل مختلفة لعيون مختلفة.
التطور الموجه (directed evolution): من خلال التحسين الاصطناعي لكابسيد AAV، يجري تطوير نواقل يمكنها عبور الغشاء الداخلي السميك للرئيسيات والوصول إلى الشبكية الخارجية5). قد يتيح ذلك توصيل الجينات إلى الشبكية الخارجية حتى عند الحقن داخل الجسم الزجاجي.
RdCVF (عامل بقاء المخاريط المشتق من العصي): يتم دراسته كاستراتيجية حماية عصبية لتعزيز بقاء المخاريط5). يمكن أن يكون علاجًا مشتركًا للأنواع الفرعية الجينية المتعددة.
تحرير الجينات (CRISPR/Cas9): تتقدم الأبحاث قبل السريرية للجراحة الجينومية بوساطة AAV، خاصة لتطبيقات في الضمور البقعي المرتبط بالعمر والأمراض الناجمة عن الطفرات السائدة5).
الحقن في الفضاء فوق المشيمية: يجري البحث كطريق جديد يمكن من خلاله علاج مساحات واسعة من RPE المحيطي والمشيمية5).
Qإذا حدث ضمور المشيمية والشبكية بعد العلاج، فماذا يحدث لحدة البصر؟
A
تشير العديد من التقارير إلى أن حدة البصر (BCVA) تظل مستقرة حتى في العيون التي تعاني من ضمور المشيمية الشبكية (CRA)، كما أن تحسن اختبار حساسية التباين (FST) يستمر عادةً 4). ومع ذلك، إذا امتد الضمور إلى النقرة، فهناك قلق بشأن تأثيره على الرؤية. يختلف نمط نمو الضمور بشكل كبير بين الأفراد، مما يستلزم مراقبة تصويرية طويلة الأمد.
Lidder AK, Choi S, Modi YS, Brodie SE, Davis JL, Gregori NZ, Lam BL. Bilateral exudative retinal detachments after subretinal gene therapy with voretigene neparvovec-rzyl for RPE65 Leber Congenital Amaurosis. Am J Ophthalmol Case Rep. 2023;32:101879.
Ku CA, Igelman AD, Huang SJ, Bailey ST, Lauer AK, Duncan JL, Weleber RG, Yang P, Pennesi ME. Perimacular atrophy following voretigene neparvovec-rzyl treatment in the setting of previous contralateral eye treatment with a different viral vector. Transl Vis Sci Technol. 2024;13(6):11.
Merle DA, Hertens L, Dimopoulos S, et al. Short-term outcomes of pediatric patients with mild autosomal recessive RPE65-associated retinal dystrophy treated with voretigene neparvovec. Transl Vis Sci Technol. 2025;14(8):8.
Kolesnikova M, Lima de Carvalho JR Jr, Parmann R, Kim AH, Mahajan VB, Tsang SH, Sparrow JR. Chorioretinal atrophy following voretigene neparvovec despite the presence of fundus autofluorescence. Mol Genet Genomic Med. 2022;10:e2038.
Botto C, Rucli M, Bucher K, et al. Early and late stage gene therapy interventions for inherited retinal degenerations. Prog Retin Eye Res. 2022;86:100975.
انسخ نص المقال والصقه في مساعد الذكاء الاصطناعي الذي تفضله.
تم نسخ المقال إلى الحافظة
افتح أحد مساعدي الذكاء الاصطناعي أدناه والصق النص المنسوخ في مربع المحادثة.