FAF
眼底自发荧光(FAF):萎缩区域显示低自发荧光。有助于直观了解RPE损伤范围。
旋状视乳头周围脉络膜视网膜变性(HPCD)是一种罕见的遗传性脉络膜、视网膜色素上皮(RPE)和视网膜变性疾病。其特征是以视盘为中心的螺旋状或“舌状”萎缩,萎缩不沿视网膜血管走行,且无炎症表现。
1939年冰岛眼科医生Sveinsson首次报告了4例患者(包括一对母子),因此也称为Sveinsson脉络膜视网膜萎缩。此后,冰岛家系中持续发现病例,其他地区如塞尔维亚家系(TEAD1 p.Tyr421Asn)也有报告1。发病率未量化,是一种非常罕见的疾病。
遗传方式为常染色体显性遗传。致病基因为TEAD1(染色体11p15),已鉴定出Y421H突变(酪氨酸被组氨酸取代)2。尚未确认纯合子,也未报告全身并发症。
由于呈常染色体显性遗传,患病父母有50%的概率将疾病传给子女。男女均可发病,尚未报告纯合子(从父母双方继承突变)的情况。
自觉症状因人而异。
眼底检查特征性地观察到视乳头周围的螺旋状脉络膜视网膜萎缩。萎缩可呈“舌状”向中心凹延伸,分布与视网膜血管走行不一致3。视乳头可能看起来稍小4。
FAF
眼底自发荧光(FAF):萎缩区域显示低自发荧光。有助于直观了解RPE损伤范围。
FA
全视野视网膜电图
全视野视网膜电图:暗适应(视杆系统)和明适应(视锥系统)反应均降低。降低程度从正常范围到重度不等。
视野检查可确认与萎缩区域一致的视野缺损。
HPCD的原因是TEAD1基因(染色体11p15)的Y421H突变2。TEAD1编码转录增强因子(TEA结构域家族成员1),参与细胞增殖和分化调控。Y421H突变位点对应于YAP65(Yes相关蛋白65)的结合区域,该结合受损导致视网膜结构基因转录功能异常。
发病始于儿童早期,萎缩在整个生命过程中缓慢进展。尚无已知的环境风险因素报道。
由于是常染色体显性遗传,从患病父母遗传到突变基因后,理论发病率为100%。但症状程度(表现度)存在个体差异,部分患者可能长期无症状或症状轻微。
HPCD的诊断通过特征性眼底表现和基因检测相结合来确认。
主要检查方法及所见如下所示。
| 检查 | 所见 | 意义 |
|---|---|---|
| 眼底检查 | 螺旋状萎缩 | 临床诊断基础 |
| FAF | 低自发荧光 | 确认RPE损伤 |
| 基因检测 | TEAD1突变 | 确诊 |
与具有相似眼底表现的疾病进行鉴别很重要。
| 疾病名称 | 萎缩分布 | 遗传方式 |
|---|---|---|
| HPCD | 视乳头周围螺旋状 | 常染色体显性 |
| 中心性晕轮状脉络膜营养不良 | 黄斑中心 | 常染色体显性/隐性 |
| 视乳头周围脉络膜营养不良 | 视乳头周围弥漫性 | 常染色体隐性遗传 |
HPCD的特征是视乳头周围的螺旋状萎缩和无炎症表现的非进行性病程。怀疑时,TEAD1基因检测有助于确诊。中心性晕轮状脉络膜营养不良可通过以黄斑为中心的萎缩、不累及视乳头周围来鉴别。
目前尚无针对HPCD的确立治疗方法。治疗核心是定期随访和处理并发症。
定期评估萎缩进展速度及黄斑受累情况。建议定期进行视野检查、FAF和光学相干断层扫描(OCT)监测。
视力预后取决于黄斑萎缩的范围。如果萎缩未累及中心凹,良好视力可能长期保持;但如果扩展到黄斑部,可能导致显著视力下降。
如果萎缩未累及黄斑部(中心凹),良好视力可能得以维持。但若萎缩扩展到中心凹,视力可能降至指数水平。个体差异很大,需要定期随访。
目前尚无抑制HPCD本身进展的既定治疗方法。当合并脉络膜新生血管时,抗VEGF药物是一种选择,并有使其静息的报道。定期眼科随访是基础。
HPCD的组织病理学改变在萎缩区和移行带表现不同。
萎缩区
移行带
选择性损伤:仅RPE和感光细胞外节受累4。
疾病主要部位:移行带的表现提示疾病进展阶段,被认为是活动性变性的区域。
分子机制
TEAD1-YAP65结合障碍:Y421H突变导致TEAD1与YAP65的结合受损。
转录异常:RPE和感光细胞发育及维持所需基因的转录无法正常进行,导致进行性变性。
TEAD1与Hippo信号通路下游效应因子YAP65相互作用,作为调控细胞增殖、存活和分化的转录因子。Y421H突变直接影响与YAP65的结合位点,损害RPE和感光细胞正常发育和维持所必需的基因程序2。这一分子机制与儿童早期发病和终生缓慢进展的临床特征相符。
Grubisa I, Jankovic M, Nikolic N, et al. Novel TEAD1 gene variant in a Serbian family with Sveinsson’s chorioretinal atrophy. Exp Eye Res. 2021;207:108580. PMID: 33864784 ↩
Fossdal R, Jonasson F, Kristjansdottir GT, et al. A novel TEAD1 mutation is the causative allele in Sveinsson’s chorioretinal atrophy (helicoid peripapillary chorioretinal degeneration). Hum Mol Genet. 2004;13(9):975-981. PMID: 15016762 ↩ ↩2 ↩3
Kumar V, Trehan H, Goel N. Sveinsson Chorioretinal Atrophy: Helicoid Peripapillary Chorioretinal Degeneration. JAMA Ophthalmol. 2017;135(12):e173656. PMID: 29049677 ↩
Jonasson F, Hardarson S, Olafsson BM, Klintworth GK. Sveinsson chorioretinal atrophy/helicoid peripapillary chorioretinal degeneration: first histopathology report. Ophthalmology. 2007;114(8):1541-1546. PMID: 17339054 ↩ ↩2 ↩3
Triantafylla M, Panos GD, Dardabounis D, Nanos P, Konstantinidis A. Helicoid peripapillary chorioretinal degeneration complicated by choroidal neovascularization. Eur J Ophthalmol. 2016;26(3):e63-e66. PMID: 26541114 ↩