جراحی زجاجیه رنگی (chromovitrectomy) اصطلاحی کلی برای روشهایی است که در جراحی زجاجیه از طریق پارس پلانا (PPV) از رنگهای زیستی (vital dyes) برای قابل مشاهده کردن بافتهای نیمهشفاف داخل چشم مانند غشای محدود کننده داخلی (ILM)، زجاجیه و غشای پیششبکیه (ERM) استفاده میکند.
بافتهای اصلی که در حین جراحی نیاز به رنگآمیزی دارند عبارتند از سه مورد زیر:
غشای محدود کننده داخلی (ILM): غشای پایه سلولهای مولر. ضخامت حدود 2 میکرومتر، شفاف و دارای ساختار چندلایه. حداقل 50% از سفتی شبکیه را تأمین میکند3). در اطراف ماکولا، در فاصله حدود 1000 میکرومتری از حفره مرکزی ضخیمترین است3).
زجاجیه: از کلاژن، اسید هیالورونیک و آب تشکیل شده است. حجم آن حدود 5 میلیلیتر و اساساً شفاف است.
غشای پیششبکیه (ERM): یک غشای فیبری نیمهشفاف که روی سطح شبکیه تشکیل میشود. باعث کاهش بینایی و دگرگونیبینی میشود.
روش تزریق تحت جایگزینی مایع: پاشیدن ماده رنگآمیز در حین پر شدن با BSS.
روش تزریق تحت جایگزینی هوا: پس از جایگزینی مایع با هوا، قطرهای در ناحیه قطب خلفی چکانده میشود. این روش امکان رنگآمیزی متمرکز ناحیه مورد نظر را فراهم کرده و از تماس با نواحی اطراف جلوگیری میکند.
روش تزریق تحت پرفلوروکربن مایع (PFCL): چکاندن مقدار کمی ماده رنگآمیز در زیر PFCL.
Qچرا در جراحی ویتره از ماده رنگآمیز استفاده میشود؟
A
غشای محدود کننده داخلی (ILM) و غشای اپیرتینال بافتهای نیمه شفافی با ضخامت چند میکرومتر هستند که بدون رنگآمیزی در زیر میکروسکوپ جراحی به سختی قابل تشخیص میباشند. استفاده از ماده رنگآمیز مرزهای بافت را مشخص کرده و دقت و ایمنی جداسازی را افزایش میدهد.
اثربخشی برداشتن ILM در جراحی سوراخ ماکولا در چندین مطالعه اثبات شده است.
در مطالعه FILMS، نرخ بسته شدن آناتومیک در گروه برداشتن ILM 84% و در گروه بدون برداشتن 48% بود که تفاوت معنیداری را نشان داد (P<0.001)3). از آنجا که ILM به عنوان داربستی برای تکثیر سلولی عمل میکند، در صورت عدم برداشتن، ممکن است تکثیر سلولی دوباره آغاز شود2).
یک متاآنالیز روی 5480 مورد نشان داد که برداشتن ILM به طور معنیداری بازگشایی سوراخ ماکولا را کاهش میدهد2). نرخ عود در جراحی همراه با برداشتن ILM پایینتر است1). همچنین 5 کارآزمایی بالینی تصادفی شده دامنه برداشتن ILM را بررسی کردهاند3) و تحقیقات در مورد بهینهسازی دامنه برداشتن در حال پیشرفت است.
تکنیک استاندارد لایهبرداری پس از رنگآمیزی، روش «نیشگون و جدا کردن» (pinch and peel) است 3). با استفاده از فورسپس ظریف، ILM را گرفته و به صورت دایرهای جدا کنید. زمان رنگآمیزی ۵ تا ۱۰ ثانیه کافی است 3) و تماس بیش از حد خطر سمیت را افزایش میدهد.
Qکدام روش ایمنتر است: روش جایگزینی هوا یا روش پر کردن مایع؟
A
روش جایگزینی هوا میتواند ماده رنگآمیز را به ناحیه خلفی محدود کرده و از تماس غیرضروری با نواحی محیطی جلوگیری کند که از نظر ایمنی برتری دارد. با این حال، در هر دو روش، محدود کردن زمان رنگآمیزی به حدود ۵ تا ۱۰ ثانیه و اجتناب از تماس بیش از حد مهم است 3).
Liyan Ye; Luyun Liang; Xiaolan Liu; Xiaohua Zhu; ZhongPing Chen; Yiqin Duan. A technique of TA-assisted ILM peeling for myopic foveoschisis. BMC Surg. 2025 Dec 11; 26:33 Figure 1. PMCID: PMC12802189. License: CC BY.
a دانههای TA به طور یکنواخت روی سطح شبکیه ناحیه ماکولا با یک سوزن 27G در ناحیهای دایرهای به قطر حدود ۲ PD متمرکز بر حفره ماکولا پاشیده شد. b با فورسپس ILM، فلپ در ربع تمپورال ناحیه مشخص شده با TA گرفته شد و ILM به صورت دایرههای کوچک متعدد جدا شد. c یک قطر دیسک بینایی از ILM در حفره حفظ شد. لبه اضافی ILM با نوک ویترکتومی ترمیم شد.
BBG (بریلیانت بلو G): تمایل انتخابی به ILM دارد 3). غشای اپیرتینال و زجاجیه تقریباً رنگ نمیگیرند. بدون سمیت شبکیه. اثر محافظت عصبی نیز پیشنهاد شده است.
ICG (ایندوسیانین گرین): تمایل بالایی به کلاژن نوع IV و لامینین ILM دارد 3). اولین رنگ ILM مورد استفاده 3). نگرانیهایی در مورد سمیت وجود دارد.
رنگآمیز غشای پیششبکیه
TB (تریپان بلو): میل ترکیبی بالایی برای رنگآمیزی غشای پیششبکیه دارد. سلولهای گلیال در غشای پیششبکیه را به طور انتخابی رنگ میکند. میل ترکیبی به ILM و زجاجیه کم است. در غلظت بالا سمیت اندوتلیال قرنیه دارد.
تجسم زجاجیه
TA (تریامسینولون استونید): به صورت کریستالهای سفید در زجاجیه رسوب کرده و زجاجیه را قابل مشاهده میکند3). این ماده یک رنگآمیز نیست، بلکه به صورت کریستالهای سفید روی ILM برای ایجاد کنتراست استفاده میشود. همچنین دارای اثر ضدالتهابی است.
سوسپانسیون آبی کریستالی سفید (40 میلیگرم/میلیلیتر) که 0.1 تا 0.3 میلیلیتر تزریق میشود. زجاجیه و قشر خلفی زجاجیه را به رنگ سفید قابل مشاهده میکند. برخلاف رنگآمیزها، با رسوب کریستالهای سفید روی ILM کنتراست ایجاد میکند3). همچنین دارای اثر ضدالتهابی است و به کاهش التهاب داخل چشمی پس از جراحی کمک میکند. نیمهعمر آن در چشمهای بدون ویترکتومی حدود 18 روز و در چشمهای ویترکتومی شده حدود 3 روز تخمین زده میشود. عوارض جانبی شامل پیشرفت آب مروارید و افزایش فشار چشم است. در ژاپن، MacuAid (تریامسینولون استونید 40 میلیگرم/میلیلیتر) تأیید شده است.
رنگآمیز مشتق از رنگ خوراکی آبی که میل ترکیبی انتخابی به ILM دارد3). غشای پیششبکیه و زجاجیه را رنگ نمیکند، بنابراین فقط در هنگام جداسازی ILM استفاده میشود. غلظت مصرفی محلول ایزوتونیک 0.025% (0.25 میلیگرم/میلیلیتر) است. مطالعات in vitro و in vivo سمیت شبکیهای نشان ندادهاند و اثر محافظت عصبی پیشنهاد شده است. TB و BBG رنگآمیزهایی هستند که پس از ICG توسعه یافتهاند و پروفایل ایمنی بهتری دارند3).
روش تهیه در ژاپن: 0.1 گرم پودر در 400 میلیلیتر BSS حل کرده و در دمای 115 درجه سانتیگراد به مدت 30 دقیقه اتوکلاو استریل میشود. تاریخ انقضا 3 ماه پس از تهیه است.
رنگ آلی آبی با میل ترکیبی بالا برای ERM. از غشای سلولی آسیبدیده سلولهای مرده عبور کرده و اجزای سلولی ERM را رنگ میکند، بنابراین برای جراحی جداسازی ERM مناسب است. میل ترکیبی به ILM و زجاجیه کم است. غلظت مصرفی 0.15% است و با تبدیل به محلول با وزن مخصوص بالا (مخلوط TB با گلوکز 10% به نسبت 3:1) تمرکز در قطب خلفی آسانتر میشود. در غلظت بالا سمیت اندوتلیال قرنیه گزارش شده است و همچنین تراتوژنیک است، بنابراین در بارداری و کودکان باید از مصرف آن خودداری کرد.
رنگ سبز که میل ترکیبی بالایی با کلاژن نوع IV و لامینین تشکیلدهنده ILM دارد 3). اولین رنگی بود که برای رنگآمیزی ILM استفاده شد 3). همچنین اثر «جداسازی» جزئی ILM (اثر شبهجداسازی) گزارش شده است 3). با این حال، نگرانیهایی در مورد سمیت برای شبکیه داخلی، عصب بینایی و نقص میدان بینایی وجود دارد 3) و در حال حاضر استفاده با غلظت کم، حداقل زمان تماس و حداقل نور توصیه میشود 3). برای رقیقسازی اولیه به آب مقطر نیاز است (در سالین رسوب ایجاد میکند) و سپس با BSS و غیره به غلظت نهایی تنظیم میشود. FDA فقط تزریق وریدی را تأیید کرده است و استفاده داخل چشمی خارج از برچسب است.
Qکدام یک از رنگها در ژاپن قابل استفاده است؟
A
TA به عنوان MacuAid در ژاپن تأیید شده است. BBG و ICG محصول تأیید شده رسمی برای استفاده داخل چشمی در ژاپن ندارند و به صورت تهیه شخصی یا استفاده خارج از برچسب هستند. TB نیز اغلب به صورت خارج از برچسب استفاده میشود. هنگام استفاده باید مقررات مدیریت دارویی مؤسسه را بررسی کرد.
ICG: به کلاژن نوع IV متصل میشود و در اثر قرار گرفتن در معرض نور، سفتی و خواص فیزیکی ILM تغییر میکند. این امر باعث اثر شبهجداسازی میشود و در عین حال عامل سمیت نوری است.
TB: به طور انتخابی از غشای سلولی آسیبدیده عبور میکند و سلولهای مرده و اجزای گلیال را در ERM رنگ میکند. به سختی توسط سلولهای زنده جذب میشود و گزینشپذیری بالایی دارد.
BBG: به طور انتخابی به ILM متصل میشود. مکانیسم اتصال در سطح مولکولی به طور کامل شناخته نشده است، اما میل ترکیبی بالایی با کلاژن دارد.
TA: کریستالهای نامحلول در آب در حفره زجاجیه رسوب کرده و با چسبیدن به الیاف زجاجیه قابل مشاهده میشوند. این یک واکنش رنگی نیست، بلکه یک چسبندگی فیزیکی است.
از نظر اسمولاریته، در محیط هیپواسموتیک احتمال آسیب شبکیه به دلیل ورود Ca²⁺ وجود دارد. از سوی دیگر، هیپراسموتیک باعث انقباض شبکیه میشود. یکی از عوامل سمیت ICG تزریق در شرایط هیپواسموتیک در نظر گرفته شده است3) و تهیه آن با محلول ایزوتونیک مهم است.
در مورد مشکل مواد نگهدارنده، گزارش شده است که میریستیل-γ-پیکولینیوم کلرید باعث سمیت شدید میشود و انتخاب فرآورده بدون مواد نگهدارنده ترجیح داده میشود. دادههای مربوط به بنزیل الکل در حال حاضر نامشخص است.
DONFL (لایه فیبر عصبی شبکیه جدا شده): نواحی تیره گرد یا بیضی شکل که ۲ تا ۳ ماه پس از برداشتن ILM ظاهر میشوند3). با خودفلورسانس فوندوس (FAF) یا OCT قابل مشاهده هستند. اغلب با گذشت زمان بهبود مییابند.
SANFL (تغییرات لایه فیبر عصبی شبکیه در محل گرفتن با فورسپس): آسیب RNFL مطابق با محل گرفتن با فورسپس3). با بهبود دقت تکنیک برداشتن قابل پیشگیری است.
Qعلت سمیت شبکیه در ICG چیست؟
A
سمیت ICG به عوامل متعددی مربوط میشود. از جمله میتوان به ورود Ca²⁺ به دلیل تزریق با فشار اسمزی پایین، واکنش اکسیداسیون نوری (سمیت نوری) در اثر قرار گرفتن در معرض نور، و نقش ید موجود در آن اشاره کرد3). برای کاهش این خطرات، استفاده از غلظت پایین، زمان تماس کوتاه، حداقل نوردهی و تهیه با محلول ایزوتونیک توصیه میشود3).
7. تحقیقات جدید و چشماندازهای آینده (گزارشهای مرحله تحقیقاتی)
این روش شامل برگرداندن بخشی از ILM به جای برداشتن کامل آن برای تسهیل بسته شدن سوراخ ماکولا است3). برای سوراخهای بزرگ ماکولا و موارد مقاوم در نظر گرفته میشود. تجسم ILM با رنگ به بهبود دقت این روش کمک میکند.
برای ارزیابی رنگها و روشهای جدید، استفاده از چارچوبهای ارزیابی نوآوری جراحی مرحلهای مانند IDEAL framework ضروری است. ارزیابی سیستماتیک ایمنی و اثربخشی یک چالش آینده است.
Qعامل رنگآمیزی جدید امیدوارکننده چیست؟
A
بروموفنول بلو یک عامل رنگآمیزی کاندید است که میتواند هر دو غشای محدود کننده داخلی (ILM) و غشای اپیرتینال (ERM) را رنگآمیزی کند و نسبت به ICG سمیت کمتری دارد. همچنین IFCG (مشتق بدون یدید سدیم) با حذف جزء ید که به سمیت ICG نسبت داده میشود، در حال تحقیق است. هر دو در حال حاضر در مرحله کارآزمایی بالینی هستند و به استفاده استاندارد نرسیدهاند.
American Academy of Ophthalmology Retina/Vitreous Panel. Idiopathic epiretinal membrane and vitreomacular traction preferred practice pattern. Ophthalmology. 2020;127(2):P145-P183.
American Academy of Ophthalmology Retina/Vitreous Panel. Idiopathic macular hole preferred practice pattern. Ophthalmology. 2020;127(1):P184-P222.
Royal College of Ophthalmologists. Clinical guideline on idiopathic full-thickness macular holes. London: RCOphth; 2024.
متن مقاله را کپی کنید و در دستیار هوش مصنوعی دلخواه خود بچسبانید.
مقاله در کلیپبورد کپی شد
یکی از دستیارهای هوش مصنوعی زیر را باز کنید و متن کپیشده را در کادر گفتگو بچسبانید.