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視網膜與玻璃體

淋巴球性脈絡叢腦膜炎病毒感染

1. 什麼是淋巴球性脈絡叢腦膜炎病毒感染?

Section titled “1. 什麼是淋巴球性脈絡叢腦膜炎病毒感染?”

淋巴球性脈絡叢腦膜炎病毒(LCMV)是一種單股RNA病毒,屬於沙狀病毒科哺乳動物沙狀病毒屬。1933年,Armstrong和Lillie在調查聖路易斯腦炎流行期間,首次從患者的腦脊髓液中分離出該病毒1)。1935年,Traub將家鼠(Mus musculus)鑑定為其自然宿主1)

發現後不久,LCMV就被認為是無菌性腦膜炎的主要病原病毒之一。1953年至1958年的一項美國調查顯示,在713例神經侵襲性疾病中,有58例檢測到LCMV1)。隨後,德國(1968-1971年,47例)和美國(1973-1974年,181例)發生了大規模群聚感染1)

近年來,臨床病例的報告頻率有所下降,但存在漏診的可能性。芬蘭的一項調查(2013-2014年)發現,5.0%的神經侵襲性疾病患者檢測出LCMV IgG抗體1)。伊拉克南部的一項調查(2012-2013年)在5.1%的腦脊液中鑑定出LCMV RNA1)。一般人群的血清陽性率因地區而異,範圍從0.2%到37.5%不等1)

先天性LCMV感染於1955年在英國首次報告,全球已記錄超過82例1)。三大主要發現是腦積水、腦室周圍鈣化和脈絡膜視網膜炎,使其成為TORCH症候群的重要鑑別診斷。

Q LCMV有多常見?
A

一般人群的血清陽性率根據調查地區不同,報告範圍為0.2%至37.5%。許多感染無症狀或症狀輕微,因此被忽視,實際感染人數估計遠高於報告數。

後天感染與先天性感染的症狀差異很大。

約三分之一的感染無症狀1)。出現症狀時,通常在暴露後6-20天發病,典型病程呈雙相性1)

  • 第1相(初期相):出現發燒、頭痛、疲倦、肌肉酸痛、食慾不振、噁心、嘔吐等非特異性症狀。
  • 第2相(神經相):短暫改善後出現無菌性腦膜炎症狀(頭痛、畏光、嘔吐、頸部僵硬)1)

Caron等人(2023)報告了一例LCMV Armstrong株經皮暴露的病例。暴露後7天開始出現頭痛、劇烈眼痛、頭暈、噁心、下肢麻木,持續約10天。未觀察到發燒和嘔吐3)

整個臨床病程通常為1至3週,可恢復。

神經和眼科症狀突出。表現為小頭畸形、巨頭畸形、腦室擴大、癲癇、精神運動發育遲緩及脈絡膜視網膜炎。

後天性感染

腦脊液所見:明顯的細胞數增多(比其他病毒性腦膜炎更嚴重)。伴有腦脊液糖降低和蛋白輕度升高1)

血液檢查異常:初期可見白血球減少、血小板減少、肝酵素輕度升高1)2)

影像檢查:MRI常無異常發現2)3)

先天性感染

眼底所見:周邊部及黃斑部脈絡膜視網膜疤痕。可能伴有視神經萎縮

頭部CT/MRI:腦室周圍鈣化、水腦症、腦室擴大、小腦發育不全、胼胝體缺損、腦萎縮等1)

伴隨所見:也有報告指出眼球震顫斜視小眼球症白內障

水腦症、腦室周圍鈣化及脈絡膜視網膜炎三聯徵見於87.5%的先天性LCMV感染1)

Q 先天性LCMV的眼部表現為何?
A

主要表現為周邊部及黃斑部脈絡膜視網膜疤痕。可能伴隨視神經萎縮眼球震顫斜視,罕見病例有小眼症及白內障的報告。僅在脈絡膜視網膜疤痕患者中出現視神經萎縮斜視

LCMV的自然宿主為家鼠(Mus musculus)。在子宮內感染的小鼠獲得免疫耐受,終生無症狀地透過唾液、尿液、糞便、精液及母乳持續排出病毒1)

人類的主要傳播途徑如下:

  • 氣溶膠吸入:吸入被囓齒類動物排泄物污染的氣溶膠。這是最常見的途徑。
  • 直接接觸/咬傷:與感染齧齒動物或其排泄物直接接觸。匈牙利的一例病例中,倉鼠咬傷是感染源2)
  • 經胎盤感染:孕婦病毒血症導致胎兒垂直感染。妊娠第一期有流產風險,第二至第三期有先天異常風險。
  • 器官移植:有報告指出,捐贈者來源的感染導致多位受贈者死亡1)

寵物倉鼠和天竺鼠也可能成為感染源。大多數感染發生在秋季到冬季,此時老鼠會進入室內。

風險因子詳細資訊
齧齒類動物飼養倉鼠、小鼠
農村居住飼料儲存處有齧齒類動物聚集
研究設施工作處理實驗動物

美國囓齒動物繁殖設施員工中,8%至47%的LCMV血清學檢測呈陽性1)

Q 寵物倉鼠也會傳染嗎?
A

寵物倉鼠可能成為感染源。過去有多起群聚感染事件與接觸倉鼠有關。孕婦尤其需要注意。

血清學檢查是確診LCMV最常用的方法。透過ELISA法和間接螢光抗體法(IFA)檢測IgM和IgG抗體1)

  • IgM抗體:急性期指標。暴露後28天或更晚可能檢測到3)
  • IgG抗體:恢復期升高。建議在暴露後30天和60天進行檢測以確認血清轉換3)
  • 檢查僅限於部分專業機構1)

透過RT-PCR法從血液和腦脊髓液中檢測LCMV RNA。在疾病急性期有效,針對GPC基因和N基因1)。檢測極限因病毒株而異,為1~10 PFU/mL1)

Pankovics等人(2023)在匈牙利對12年間74例中樞神經系統感染患者的腦脊髓液進行檢測,透過RT-PCR在2例(2.7%)中檢測到LCMV RNA。這是匈牙利首次分子生物學確認的病例2)

可在BHK-21細胞、Vero細胞等中培養。新生小鼠腦內接種後5~7天內可誘發特徵性痙攣性疾病1)

出生時病毒往往已被清除。需要檢測母體和新生兒血清中的IgM和IgG。需考慮經胎盤轉移的母體IgG的影響1)

先天性LCMV的鑑別診斷中,以下TORCH病原體很重要。

鑑別疾病與LCMV的區別
巨細胞病毒肝脾腫大常見(LCMV罕見)
弓漿蟲散在性腦內鈣化(LCMV為腦室周圍)
德國麻疹心臟病、白內障、椒鹽狀視網膜病變

先天性弓形蟲症表現為瀰漫性腦內鈣化,而LCMV的特徵是腦室周圍鈣化1)。巨細胞病毒感染時肝脾腫大明顯,但LCMV全身感染徵象不明顯,神經學表現佔優勢1)

尚無確切的抗病毒藥物1)2)。治療以症狀支持為主,大多數免疫功能正常者可在1~3週內痊癒,不留後遺症1)。死亡率低於1%1)

移植後LCMV感染的死亡率高達71%1)。靜脈注射利巴韋林合併減量免疫抑制劑治療已有存活病例報告1)。但亦有未使用利巴韋林而存活的病例,其療效證據有限1)

先天性LCMV尚無確立的治療方法。需要包括眼科醫師、神經科醫師、物理治療師和職能治療師在內的多專科團隊進行長期追蹤。

LCMV是一種直徑110-130 nm的套膜病毒,基因組由兩條雙義RNA片段(S和L)組成1)。S片段編碼核蛋白(NP)和套膜醣蛋白前驅物(GPC),L片段編碼基質鋅結合蛋白(Z)和RNA依賴性RNA聚合酶(RdRp)1)。病毒顆粒內部含有沙粒狀的核糖體樣顆粒,這是「沙粒病毒」(arena = 沙)名稱的由來1)

病毒以氣溶膠形式吸入,沉積於肺實質後經由血流擴散至全身。LCMV對神經母細胞有親和性,在腦膜、脈絡叢和腦室室管膜中增殖。組織損傷並非由病毒直接引起,而是宿主以T細胞為主的免疫反應導致的發炎所致。

母體病毒血症經胎盤傳播給胎兒1)。胎兒腦的腦室周圍區域存在大量分裂活躍的神經母細胞,LCMV對該區域有強親和性。這解釋了腦室周圍鈣化的分布1)。此外,LCMV感染會損害神經細胞遷移,導致腦回形成異常1)

巨頭症是由於中腦導水管發炎導致腦室系統阻塞所致,而小頭症則是免疫媒介和病毒媒介的腦組織破壞的結果。

根據系統發育分析,LCMV可分為四個遺傳譜系(譜系I–IV)1)。譜系I包括美國的經典Armstrong株和WE株,以及法國、德國和斯洛伐克的毒株。譜系II僅由歐洲毒株組成1)。2020年在匈牙利檢測到的兩株病毒分別屬於譜系I和譜系II,排除了共同感染源2)

Q 病毒的遺傳譜系與致病性有關嗎?
A

譜系I–III均與人類重症疾病相關。Armstrong株和Clone-13變異株僅相差5個核苷酸(3個胺基酸),卻導致完全不同的病程——急性感染與慢性感染1)


目前,正在研究多種現有藥物的再利用1)

法匹拉韋(T-705)是一種RdRp抑制劑,在小鼠模型中對急性播散性LCMV感染顯示出優異效果。對感染低劑量LCMV-Clone 13的NZB小鼠早期給藥後,死亡率為0%,大多數器官中病毒低於檢測極限1)

烏米非諾韋(阿比多爾)是一種用於治療流感的吲哚羧酸,在體外抑制了包括LCMV在內的多種沙粒病毒的複製1)

Wan等人(2020)篩選了63種FDA批准的藥物,確認了五種藥物對LCMV的抑制作用:鹽酸貝尼地平(進入抑制)、黴酚酸、拉帕替尼、達拉非尼(複製抑制)和氯法齊明(兩種機制)1)

一些拉薩病毒特異性人類單株抗體在體外被證實與LCMV醣蛋白複合物發生交叉反應。基於在猴子模型中顯示對拉薩熱100%保護效果的研究結果,LCMV特異性抗體療法的開發備受期待1)

基因工程改造的重組LCMV(rLCMV)作為候選疫苗載體正在研究中。源自Clone 13的非複製型rLCMV載體在免疫缺陷小鼠中安全地誘導了多功能CD8+ T細胞,並在7天內被清除1)。此外,表達HPV-16腫瘤蛋白E7E6的基於LCMV的治療性癌症疫苗在小鼠模型中顯示出腫瘤控制效果1)


  1. Vilibic-Cavlek T, Savic V, Ferenc T, Mrzljak A, Barbic L, Bogdanic M, Stevanovic V, Tabain I, Ferencak I, Zidovec-Lepej S. Lymphocytic Choriomeningitis-Emerging Trends of a Neglected Virus: A Narrative Review. Trop Med Infect Dis. 2021;6(2):88.
  2. Pankovics P, Nagy A, Nyul Z, Juhász A, Takáts K, Boros Á, Reuter G. Human cases of lymphocytic choriomeningitis virus (LCMV) infections in Hungary. Arch Virol. 2023;168:275.
  3. Caron L, Delisle JS, Strong JE, Deschambault Y, Lombard-Vadnais F, Labbé AC, Lesage S. Armstrong strain lymphocytic choriomeningitis virus infection after accidental laboratory exposure. Virol J. 2023;20:294.

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