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视网膜与玻璃体

淋巴细胞性脉络丛脑膜炎病毒感染

1. 什么是淋巴细胞脉络丛脑膜炎病毒感染?

Section titled “1. 什么是淋巴细胞脉络丛脑膜炎病毒感染?”

淋巴细胞脉络丛脑膜炎病毒(LCMV)是一种单链RNA病毒,属于沙粒病毒科哺乳动物沙粒病毒属。1933年,Armstrong和Lillie在调查圣路易斯脑炎流行期间,首次从患者的脑脊液中分离出该病毒1)。1935年,Traub将家鼠(Mus musculus)鉴定为其自然宿主1)

发现后不久,LCMV就被认为是无菌性脑膜炎的主要病原病毒之一。1953年至1958年的一项美国调查显示,在713例神经侵袭性疾病中,有58例检测到LCMV1)。随后,德国(1968-1971年,47例)和美国(1973-1974年,181例)发生了大规模暴发1)

近年来,临床病例的报告频率有所下降,但存在漏诊的可能性。芬兰的一项调查(2013-2014年)发现,5.0%的神经侵袭性疾病患者检测出LCMV IgG抗体1)。伊拉克南部的一项调查(2012-2013年)在5.1%的脑脊液中鉴定出LCMV RNA1)。一般人群的血清阳性率因地区而异,范围从0.2%到37.5%不等1)

先天性LCMV感染于1955年在英国首次报道,全球已记录超过82例1)。三大主要发现是脑积水、脑室周围钙化和脉络膜视网膜炎,使其成为TORCH综合征的重要鉴别诊断。

Q LCMV有多常见?
A

一般人群的血清阳性率根据调查地区不同,报告范围为0.2%至37.5%。许多感染无症状或症状轻微,因此被忽视,实际感染人数估计远高于报告数。

后天感染和先天性感染的症状差异很大。

约三分之一的感染无症状1)。出现症状时,通常在暴露后6-20天发病,典型病程呈双相性1)

  • 第1相(初期相):出现发热、头痛、乏力、肌肉酸痛、食欲不振、恶心、呕吐等非特异性症状。
  • 第2相(神经相):短暂改善后出现无菌性脑膜炎症状(头痛、畏光、呕吐、颈项强直)1)

Caron等人(2023)报告了一例LCMV Armstrong株经皮暴露的病例。暴露后7天开始出现头痛、剧烈眼痛、头晕、恶心、下肢麻木,持续约10天。未观察到发热和呕吐3)

整个临床病程通常为1至3周,可恢复。

神经和眼科症状突出。表现为小头畸形、巨头畸形、脑室扩大、癫痫、精神运动发育迟缓和脉络膜视网膜炎。

后天性感染

脑脊液所见:明显的细胞数增多(比其他病毒性脑膜炎更严重)。伴有脑脊液糖降低和蛋白轻度升高1)

血液检查异常:初期可见白细胞减少、血小板减少、肝酶轻度升高1)2)

影像学检查:MRI常无异常发现2)3)

先天性感染

眼底表现:周边部和黄斑区的脉络膜视网膜瘢痕。可能伴有视神经萎缩

头部CT/MRI:脑室周围钙化、脑积水、脑室扩大、小脑发育不全、胼胝体缺如、脑萎缩等1)

伴随表现:也有报道出现眼球震颤斜视、小眼球、白内障

脑积水、脑室周围钙化和脉络膜视网膜炎三联征见于87.5%的先天性LCMV感染1)

Q 先天性LCMV的眼部表现有哪些?
A

主要表现是周边部和黄斑部脉络膜视网膜瘢痕。可伴有视神经萎缩眼球震颤斜视,罕见情况下也有小眼球和白内障的报道。仅在脉络膜视网膜瘢痕患者中出现视神经萎缩斜视

LCMV的自然宿主是家鼠(Mus musculus)。在子宫内感染的小鼠获得免疫耐受,终生无症状地通过唾液、尿液、粪便、精液和母乳持续排出病毒1)

人类的主要传播途径如下:

  • 气溶胶吸入:吸入被啮齿动物排泄物污染的气溶胶。这是最常见的途径。
  • 直接接触/咬伤:与感染啮齿动物或其排泄物直接接触。匈牙利的一例病例中,仓鼠咬伤是感染源2)
  • 经胎盘感染:孕妇病毒血症导致胎儿垂直感染。妊娠早期有流产风险,妊娠中晚期有先天畸形风险。
  • 器官移植:有报告称,供体来源的感染导致多名受者死亡1)

宠物仓鼠和豚鼠也可能成为感染源。大多数感染发生在秋季到冬季,此时老鼠会进入室内。

风险因素详细信息
啮齿类动物饲养仓鼠、小鼠
农村居住饲料储存处有啮齿类动物聚集
研究设施工作处理实验动物

美国啮齿动物繁殖设施员工中,8%至47%的LCMV血清学检测呈阳性1)

Q 宠物仓鼠也会传染吗?
A

宠物仓鼠可能成为感染源。过去有多起疫情报告与接触仓鼠有关。孕妇尤其需要注意。

血清学检查是确诊LCMV最常用的方法。通过ELISA法和间接荧光抗体法(IFA)检测IgM和IgG抗体1)

  • IgM抗体:急性期指标。暴露后28天或更晚可能检测到3)
  • IgG抗体:恢复期升高。建议在暴露后30天和60天进行检测以确认血清转换3)
  • 检查仅限于部分专业机构1)

通过RT-PCR法从血液和脑脊液中检测LCMV RNA。在疾病急性期有效,靶向GPC基因和N基因1)。检测限因病毒株而异,为1~10 PFU/mL1)

Pankovics等人(2023)在匈牙利对12年间74例中枢神经系统感染患者的脑脊液进行了检测,通过RT-PCR在2例(2.7%)中检测到LCMV RNA。这是匈牙利首次分子生物学确认的病例2)

可在BHK-21细胞、Vero细胞等中培养。新生小鼠脑内接种后5~7天内可诱发特征性痉挛性疾病1)

出生时病毒往往已被清除。需要检测母体和新生儿血清中的IgM和IgG。需考虑经胎盘转移的母体IgG的影响1)

先天性LCMV的鉴别诊断中,以下TORCH病原体很重要。

鉴别疾病与LCMV的区别
巨细胞病毒肝脾肿大常见(LCMV罕见)
弓形虫散在性脑内钙化(LCMV为脑室周围)
风疹心脏病、白内障、椒盐状视网膜病变

先天性弓形虫病表现为弥漫性脑内钙化,而LCMV的特征是脑室周围钙化1)。巨细胞病毒感染时肝脾肿大突出,但LCMV全身感染征象不明显,神经系统表现占优势1)

尚无确切的抗病毒药物1)2)。治疗以对症支持为主,大多数免疫功能正常者可在1~3周内痊愈,不留后遗症1)。死亡率低于1%1)

移植后LCMV感染的死亡率高达71%1)。静脉注射利巴韦林联合减量免疫抑制剂治疗已有存活病例报道1)。但亦有未使用利巴韦林而存活的病例,其疗效证据有限1)

先天性LCMV尚无确定的治疗方法。需要包括眼科医生、神经科医生、物理治疗师和职业治疗师在内的多学科团队进行长期随访。

LCMV是一种直径110-130 nm的有包膜病毒,基因组由两条双义RNA片段(S和L)组成1)。S片段编码核蛋白(NP)和包膜糖蛋白前体(GPC),L片段编码基质锌结合蛋白(Z)和RNA依赖性RNA聚合酶(RdRp)1)。病毒颗粒内部含有沙粒状的核糖体样颗粒,这是“沙粒病毒”(arena = 沙)名称的由来1)

病毒以气溶胶形式吸入,沉积于肺实质后通过血流扩散至全身。LCMV对神经母细胞有亲和性,在脑膜、脉络丛和脑室室管膜中增殖。组织损伤并非由病毒直接引起,而是宿主以T细胞为主的免疫应答导致的炎症所致。

母体病毒血症经胎盘传播给胎儿1)。胎儿脑的脑室周围区域存在大量分裂活跃的神经母细胞,LCMV对该区域有强亲和性。这解释了脑室周围钙化的分布1)。此外,LCMV感染会损害神经细胞迁移,导致脑回形成异常1)

巨头症是由于中脑水管炎症导致脑室系统阻塞所致,而小头症则是免疫介导和病毒介导的脑组织破坏的结果。

根据系统发育分析,LCMV可分为四个遗传谱系(谱系I–IV)1)。谱系I包括美国的经典Armstrong株和WE株,以及法国、德国和斯洛伐克的毒株。谱系II仅由欧洲毒株组成1)。2020年在匈牙利检测到的两株病毒分别属于谱系I和谱系II,排除了共同感染源2)

Q 病毒的遗传谱系与致病性有关吗?
A

谱系I–III均与人类重症疾病相关。Armstrong株和Clone-13变异株仅相差5个核苷酸(3个氨基酸),却导致完全不同的病程——急性感染与慢性感染1)


目前,正在研究多种现有药物的再利用1)

法匹拉韦(T-705)是一种RdRp抑制剂,在小鼠模型中对急性播散性LCMV感染显示出优异的效果。对感染低剂量LCMV-Clone 13的NZB小鼠早期给药后,死亡率为0%,大多数器官中病毒低于检测限1)

乌米非诺韦(阿比多尔)是一种用于治疗流感的吲哚羧酸,在体外抑制了包括LCMV在内的多种沙粒病毒的复制1)

Wan等人(2020)筛选了63种FDA批准的药物,确认了五种药物对LCMV的抑制作用:盐酸贝尼地平(进入抑制)、霉酚酸、拉帕替尼、达拉非尼(复制抑制)和氯法齐明(两种机制)1)

一些拉沙病毒特异性人单克隆抗体在体外被证实与LCMV糖蛋白复合物发生交叉反应。基于在猴模型中显示对拉沙热100%保护效果的研究结果,LCMV特异性抗体疗法的开发备受期待1)

基因工程改造的重组LCMV(rLCMV)作为候选疫苗载体正在研究中。源自Clone 13的非复制型rLCMV载体在免疫缺陷小鼠中安全地诱导了多功能CD8+ T细胞,并在7天内被清除1)。此外,表达HPV-16肿瘤蛋白E7E6的基于LCMV的治疗性癌症疫苗在小鼠模型中显示出肿瘤控制效果1)


  1. Vilibic-Cavlek T, Savic V, Ferenc T, Mrzljak A, Barbic L, Bogdanic M, Stevanovic V, Tabain I, Ferencak I, Zidovec-Lepej S. Lymphocytic Choriomeningitis-Emerging Trends of a Neglected Virus: A Narrative Review. Trop Med Infect Dis. 2021;6(2):88.
  2. Pankovics P, Nagy A, Nyul Z, Juhász A, Takáts K, Boros Á, Reuter G. Human cases of lymphocytic choriomeningitis virus (LCMV) infections in Hungary. Arch Virol. 2023;168:275.
  3. Caron L, Delisle JS, Strong JE, Deschambault Y, Lombard-Vadnais F, Labbé AC, Lesage S. Armstrong strain lymphocytic choriomeningitis virus infection after accidental laboratory exposure. Virol J. 2023;20:294.

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