La dystrophie cornéenne de Lisch (LCD, également appelée récemment Lisch epithelial corneal dystrophy: LECD) est une dystrophie cornéenne épithéliale rare caractérisée par l’apparition de microkystes gris, tourbillonnants ou plumeux dans l’épithélium cornéen. Elle a été décrite pour la première fois en 1992 par Lisch et al. dans l’American Journal of Ophthalmology comme une nouvelle dystrophie épithéliale cornéenne dans une famille allemande de cinq membres1).
Évolution de la classification IC3D :
Jusqu’à l’édition 2 (2015) de la classification internationale des dystrophies cornéennes (IC3D), cette maladie était classée en catégorie 2 (localisée sur un chromosome mais gène causal non identifié).
Dans l’édition 3 de 2024, suite à l’identification de MCOLN1, elle a été reclassée en catégorie 1 (dystrophie cornéenne bien établie avec gène et protéine identifiés)4).
Mode de transmission : Traditionnellement considéré comme lié à l’X dominant, la liaison à Xp22.3 a été démontrée en 2000 par une étude familiale de Lisch et al. avec un LOD score de 4,59 (θ=0)2). L’absence de transmission de père à fils confirme également la transmission liée à l’X. En 2024, une vaste étude de Patterson et al. a révélé que le gène causal est MCOLN1 (codant pour la mucolipine-1) et que des mutations hétérozygotes perte de fonction entraînent la maladie3). MCOLN1 est normalement situé en 19p13.2, mais on discute la possibilité qu’il agisse via un pseudogène, une région pseudo-autosomique ou un autre mécanisme de régulation dans la région de liaison (Xp22.3). Les mutations bialléliques (homozygotes ou hétérozygotes composites) de MCOLN1 provoquent une autre maladie, la mucolipidose de type IV (MLIV)3).
L’apparition de la LCD est considérée comme survenant dans l’enfance, mais la plupart des cas rapportés concernent des adultes. Les lésions progressent lentement et ne deviennent cliniquement évidentes qu’à l’âge adulte chez de nombreux patients. L’âge au moment de la consultation varie de la vingtaine à la soixantaine-dizaine d’années. Dans l’étude de Patterson et al., des variants rares hétérozygotes de MCOLN1 ont été identifiés chez 23 des 27 patients (environ 85 %) diagnostiqués avec une LECD3).
Le principal symptôme est une vision floue progressive et indolore non corrigeable par des lunettes1). Une diplopie monoculaire peut également être rapportée. Si les lésions n’affectent pas l’axe visuel, le patient peut être asymptomatique et la découverte est fortuite. Les érosions épithéliales cornéennes sont généralement absentes, et l’absence de douleur oculaire est caractéristique, ce qui permet de la distinguer cliniquement de la dystrophie cornéenne de Meesmann1,2).
Microscopie confocale : selon Kurbanyan et al., on observe une hyperréflectivité cytoplasmique périnucléaire et une hyporéflectivité nucléaire dans les cellules épithéliales affectées, avec une atteinte de la région limbique également confirmée9)
L’atteinte unilatérale est rapportée comme plus fréquente, mais une atteinte bilatérale est possible. Même si les deux yeux sont touchés, si l’axe visuel n’est impliqué que d’un seul côté, seule une baisse d’acuité visuelle unilatérale se manifeste.
En 2024, Patterson et al. ont mené une analyse à grande échelle de 27 patients LECD (17 familles) et ont identifié des mutations hétérozygotes perte de fonction de MCOLN1 comme cause3).
23 des 27 cas (environ 85 %, 13 familles) présentaient 9 variants hétérozygotes rares, dont 7 étaient des mutations tronquantes3).
MCOLN1 code pour le canal cationique lysosomal mucolipin-1. L’haploinsuffisance est considérée comme l’essence de la pathologie3).
Les mutations bialléliques (homozygotes/hétérozygotes composites) du même gène provoquent la mucolipidose de type IV (MLIV), une maladie sévère de surcharge lysosomale systémique3).
Mode de transmission :
Les études familiales montrent un mode de transmission dominant lié à l’X, avec une liaison à Xp22.3 démontrée2).
L’absence de transmission homme à homme confirme le lien avec l’X2).
Cependant, MCOLN1 est normalement situé en 19p13.2, et la relation entre le mode d’expression familial et les résultats moléculaires nécessite des études supplémentaires3,4).
Les cas sporadiques simples sont fréquents ; dans le rapport de Patterson et al., 14 cas étaient sporadiques3).
Facteurs de risque :
Antécédents familiaux (le risque augmente en cas de positivité)
Il n’y a pas de complications systémiques constamment observées, et aucun facteur physique suggérant un mécanisme mécanique n’est reconnu. Des preuves suggèrent que les cellules anormales responsables des défauts épithéliaux proviennent du limbe9).
Analyse du gène MCOLN1 : depuis 2024, considérée comme un moyen de diagnostic définitif 3). Envisagée en cas de doute diagnostique ou pour un conseil génétique familial.
Tests métaboliques (pour exclure la maladie de Fabry, etc.)
Autosomique dominant, symétrique diffus, douleur oculaire présente
Maladie de Fabry
Toujours bilatéral symétrique, cornée verticillée
Dé-épithélialisation induite par lentilles de contact
Amélioration après arrêt des lentilles de contact
Le diagnostic différentiel le plus important est avec la dystrophie cornéenne de Meesmann. Meesmann est une maladie autosomique dominante due à des mutations des gènes KRT3/KRT12, et les lésions sont bilatérales symétriques et diffuses. La LCD se présente avec des lésions asymétriques et denses, et ne s’accompagne généralement pas de douleur oculaire, ce qui permet de la distinguer1,2). Lisch et al. (2000) ont établi par analyse de liaison que Meesmann (KRT12/KRT3 sur 17q12 et 12q13) et LCD (Xp22.3) sont des maladies génétiquement distinctes2).
QQuelle est la différence avec la dystrophie cornéenne de Meesmann ?
A
La dystrophie cornéenne de Meesmann est autosomique dominante (mutations des gènes KRT3/KRT12), tandis que la LCD est liée à l’X dominant (Xp22.3). Les lésions de Meesmann sont bilatérales, symétriques et diffuses, alors que la LCD présente des agrégats asymétriques et denses. De plus, dans Meesmann, des douleurs oculaires dues à des érosions épithéliales cornéennes sont fréquentes, alors que la LCD ne s’accompagne généralement pas de douleur oculaire.
La LCD est extrêmement rare et tous les traitements sont basés sur des rapports de cas.
Traitement conservateur
Lentilles de contact : L’utilisation de lentilles de contact rigides et souples a montré une réduction des lésions et une amélioration de l’acuité visuelle1). Cependant, l’arrêt du port peut aggraver les lésions.
Surveillance : Si la lésion n’affecte pas l’axe visuel ou si la déficience visuelle est légère, une simple surveillance est recommandée.
Traitement chirurgical
Débridement épithélial : Option de première ligne peu invasive. Permet une disparition des lésions pendant au moins 6 mois, mais le taux de récidive est élevé.
Épithéliectomie avec cautérisation limbique : Tuteja & Lockington (2025) ont rapporté un traitement définitif combinant une épithéliectomie cornéenne progressive avec une résection ciblée et cautérisation limbique7).
PRK + mitomycine C : Wessel et al. (2011) ont rapporté de bons résultats avec la PRK associée à de la mitomycine C à 0,02 %. Convient aux patients souhaitant également une correction réfractive6).
5-fluorouracile (5-FU) en collyre : Amer et al. (2023) ont rapporté une régression des lésions avec des gouttes de 5-FU dans les cas de récidive8).
Autogreffe limbique : Indiquée dans les cas résistants aux autres traitements. Des rapports font état de succès dans la prévention des récidives5).
Approche progressive du choix thérapeutique :
Essayer d’abord le port de lentilles de contact.
Si l’effet est insuffisant, envisager un débridement épithélial.
En cas de récidives fréquentes, envisager une épithéliectomie avec cautérisation limbique.
Pour les cas réfractaires, envisager une autogreffe limbique (dernier recours en raison de son caractère invasif).
QLes lentilles de contact peuvent-elles améliorer la condition ?
A
L’utilisation de lentilles de contact rigides et souples a été rapportée dans plusieurs cas comme réduisant les lésions et améliorant la vision. Cependant, l’arrêt de l’utilisation des lentilles de contact entraîne une aggravation des lésions, ce n’est donc pas un traitement curatif. Des cas de LCD ont été rapportés même chez des patients utilisant quotidiennement des lentilles de contact, l’effet protecteur n’est donc pas complet.
QLa chirurgie peut-elle entraîner une récidive ?
A
Le débridement épithélial est associé à un taux de récidive relativement élevé. L’association d’une excision épithéliale et d’une cautérisation limbique a montré une absence de récidive à 2 ans dans certains rapports, et une autogreffe limbique a également réussi à prévenir la récidive dans certains cas, mais ces données reposent sur un petit nombre de cas. Les données sur la prévention à long terme des récidives sont encore insuffisantes, et un suivi régulier est important.
L’essence de la pathologie de la LCD est une vacuolisation cytoplasmique étendue des cellules épithéliales cornéennes.
Résultats histopathologiques :
En microscopie optique, on observe une vacuolisation cytoplasmique la plus marquée dans la couche des cellules alaires1)
La vacuolisation est observée dans toutes les cellules de la couche épithéliale cornéenne, avec une frontière nette entre les zones touchées et non touchées
Les résultats de la coloration PAS sont variables selon les rapports (positifs et négatifs ont été rapportés)
Elle est sensible à la diastase, et les colorations Luxol fast blue et Sudan black sont négatives1)
Résultats en microscopie électronique :
Les vacuoles intracellulaires apparaissent vides
Les vacuoles ont tendance à fusionner entre elles, donnant au cytoplasme un aspect transparent et sans structure
Relation avec le limbe :
Il existe des preuves suggérant que les cellules anormales responsables de la perte épithéliale proviennent du limbe.
La microscopie confocale a confirmé l’implication de la région limbique9).
L’efficacité de la cautérisation limbique et de l’autogreffe limbique dans le traitement soutient également l’origine limbique de la pathologie5,7).
Haploinsuffisance de MCOLN1 et formation de vacuoles : La mucolipine-1 codée par MCOLN1 est un canal cationique membranaire lysosomal (TRPML1) impliqué dans la fonction lysosomale, l’autophagie et le trafic endosomal. Dans la LECD, on estime que l’haploinsuffisance due à une perte de fonction hétérozygote provoque une diminution partielle de la fonction lysosomale et une vacuolisation dans les cellules épithéliales cornéennes3). En revanche, les mutations bialléliques entraînent un phénotype systémique plus sévère, la MLIV, suggérant une pathologie moléculaire dose-dépendante3).
Depuis la première description de la LCD/LECD en 1992, les recherches ont été limitées en raison du faible nombre de cas, mais des progrès importants ont été réalisés dans les années 2020.
Identification du gène causal (2024) : Patterson et al., par séquençage de l’exome et du génome entier d’une cohorte multicentrique multinationale (27 cas / 17 familles), ont identifié des mutations hétérozygotes avec perte de fonction de MCOLN1 comme cause principale de la LECD3). Cela a conduit à la reclassification de cette maladie en catégorie 1 (gène et protéine connus) dans l’IC3D Edition 3 (2024)4).
Développement des traitements :
Wessel et al. (2011) ont rapporté la PRK avec mitomycine C à 0,02%6).
Amer et al. (2023) ont testé des gouttes oculaires de 5-FU sur un cas récurrent et ont confirmé la régression des lésions8).
Tuteja & Lockington (2025) ont proposé un traitement définitif par ablation épithéliale progressive et cautérisation limbique ciblée7).
Tous ces traitements reposent sur un petit nombre de rapports de cas, donc l’évaluation de leur efficacité et sécurité à long terme reste un défi.
Défis futurs :
Élucider le mécanisme moléculaire par lequel l’haploinsuffisance de MCOLN1 produit un phénotype spécifique à l’épithélium cornéen.
Quantifier la pénétrance clinique et les schémas d’expression chez les porteurs hétérozygotes.
Évaluation des résultats du traitement par accumulation de cas à plus grande échelle
Accumulation de données de suivi à long terme sur la prévention des récidives
Lisch W, Steuhl KP, Lisch C, Weidle EG, Emmig CT, Cohen KL, Perry HD. A new, band-shaped and whorled microcystic dystrophy of the corneal epithelium. Am J Ophthalmol. 1992;114(1):35-44. PMID: 1621784.
Lisch W, Büttner A, Oeffner F, Böddeker I, Engel H, Lisch C, Ziegler A, Grzeschik KH. Lisch corneal dystrophy is genetically distinct from Meesmann corneal dystrophy and maps to xp22.3. Am J Ophthalmol. 2000;130(4):461-468. PMID: 11024418.
Patterson K, Chong JX, Chung DD, Lisch W, Karp CL, Dreisler E, Lockington D, Rohrbach JM, Garczarczyk-Asim D, Müller T, Tuft SJ, Skalicka P, Wilnai Y, Samra NN, Ibrahim A, Mandel H, Davidson AE, Liskova P, Aldave AJ, Bamshad MJ, Janecke AR. Lisch Epithelial Corneal Dystrophy Is Caused by Heterozygous Loss-of-Function Variants in MCOLN1. Am J Ophthalmol. 2024;258:183-195. PMID: 37972748.
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Wessel MM, Sarkar JS, Jakobiec FA, Dang N, Bhat P, Michaud N, Starr CE. Treatment of Lisch corneal dystrophy with photorefractive keratectomy and mitomycin C. Cornea. 2011;30(4):481-485. PMID: 21045666.
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Amer MM, Arze K, Galor A, Sayegh Y, Dubovy SS, Karp CL. Recurrent Lisch Epithelial Corneal Dystrophy Treated With 5-Fluorouracil: A Case Report and Review of the Literature. Cornea. 2023;42(5):645-647. PMID: 36533990.
Kurbanyan K, Sejpal KD, Aldave AJ, Deng SX. In vivo confocal microscopic findings in Lisch corneal dystrophy. Cornea. 2012;31(4):437-441. PMID: 22222997.
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