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角膜與外眼

Lisch角膜失養症

1. 什麼是Lisch角膜營養不良(LCD)?

Section titled “1. 什麼是Lisch角膜營養不良(LCD)?”

Lisch角膜營養不良(LCD,近年也稱為Lisch上皮性角膜營養不良:LECD)是一種罕見的表層角膜營養不良,特徵為角膜上皮出現灰色、漩渦狀或羽毛狀的微囊腫。1992年Lisch等人在《美國眼科學雜誌》上首次報導,描述了一個德國家系中5名成員的新發角膜上皮營養不良1)

IC3D分類中的定位變遷:

  • 在國際角膜營養不良分類委員會(IC3D)第2版(2015年)之前,本病被歸類為類別2(已定位到染色體位點但致病基因未鑑定)。
  • 在2024年第3版中,因MCOLN1的鑑定而升級為類別1(致病基因和蛋白質均已鑑定的明確角膜營養不良)4)

遺傳模式:傳統上認為是X染色體顯性遺傳,2000年Lisch等人的家族研究以LOD score 4.59(θ=0)證實與Xp22.3的連鎖2)。男性間無傳遞也支持X連鎖遺傳。2024年Patterson等人的大規模研究揭示,致病基因是MCOLN1(編碼mucolipin-1),雜合性功能喪失突變導致發病3)。MCOLN1通常位於19p13.2,但可能透過連鎖區域(Xp22.3)的偽基因、偽體染色體區域或其他調控機制發揮作用,目前仍有爭議。此外,MCOLN1的雙等位基因(純合或複合雜合)突變會導致另一種疾病——黏脂儲積症IV型(MLIV)3)

LCD的發病被認為始於兒童期,但大多數報告病例為成人。病變進展緩慢,許多患者直到成年才出現臨床表現。就診年齡從20多歲到70多歲不等。Patterson等人的報告中,27例LECD患者中有23例(約85%)檢測到MCOLN1的雜合性罕見變異3)

主訴為眼鏡無法矯正的無痛性進行性視力模糊1)。偶有單眼複視的報告。若病變未累及視軸,可無症狀,偶然發現。通常無角膜上皮糜爛,不伴眼痛,這是與Meesmann角膜營養不良的臨床鑑別要點1,2)

裂隙燈顯微鏡所見

灰色微囊:可見帶狀或棍棒狀角膜上皮內病變。

漩渦狀圖案:病變可呈漩渦狀排列。

羽毛狀圖案:可呈蓬鬆的羽毛狀外觀。

染色所見螢光素和玫瑰紅染色陰性。

特殊檢查所見

徹照法:可清晰觀察到透明上皮內微囊的密集聚集。

眼前段光學相干斷層掃描(OCT角膜厚度正常,無基質受累,可見上皮高反射灶。

共聚焦顯微鏡:根據Kurbanyan等人的報告,受累上皮細胞核周細胞質呈高反射,細胞核呈低反射,並確認了角膜緣區域的受累9)

角膜地形圖:可能顯示正常表現

據報導單眼發病較為常見,但雙眼受累也可能發生。即使雙眼都有病變,如果僅單眼的視軸受累,則可能僅表現為單眼視力障礙。

致病基因(2024年鑑定)

  • 2024年,Patterson等人對27例LECD患者(17個家系)進行了大規模分析,確定MCOLN1的雜合功能喪失突變是病因3)
  • 27例中有23例(約85%,13個家系)檢測到9種罕見的雜合變異,其中7種為截斷突變3)
  • MCOLN1編碼溶酶體膜陽離子通道mucolipin-1。單倍體不足被認為是病理本質3)
  • 同一基因的雙等位基因突變(純合或複合雜合)會導致嚴重的全身性溶酶體儲積症——黏脂儲積症IV型(MLIV)3)

遺傳方式

  • 家系研究顯示X連鎖顯性遺傳模式,已證明與Xp22.3連鎖2)
  • 無男性傳男性現象支持X連鎖遺傳2)
  • 然而,MCOLN1原本位於19p13.2,家系內表現模式與分子遺傳學發現之間的關係有待進一步研究3,4)
  • 單純散發病例也很多;Patterson等人的報告中14例為散發病例3)

風險因素

  • 家族史(陽性時風險增加)

未觀察到一致的全身併發症,也未發現提示機械機制的身體因素。有證據表明導致上皮缺損的異常細胞來源於角膜緣9)

LCD的診斷基於特徵性裂隙燈顯微鏡表現和組織病理學表現的結合。

診斷要點:

  • 裂隙燈顯微鏡下可見羽毛狀角膜微囊
  • 後照法確認透明上皮內囊腫的密集聚集
  • 組織病理學上可見廣泛的細胞質空泡化

輔助檢查:

  • 共聚焦顯微鏡檢查9)
  • 高解析度眼前節OCT
  • MCOLN1基因分析:自2024年起,被視為確診手段3)。在臨床診斷不明確或出於家族諮詢目的時考慮。
  • 代謝檢查(用於排除法布瑞氏症等)

鑑別診斷

鑑別疾病鑑別要點
Meesmann角膜失養症體染色體顯性遺傳,對稱性瀰漫性,伴有眼痛
法布瑞氏症始終雙側對稱,漩渦狀角膜
隱形眼鏡誘發之上皮缺損停戴隱形眼鏡後改善

與Meesmann角膜失養症的鑑別最為重要。Meesmann是由KRT3/KRT12基因突變引起的體染色體顯性遺傳病,病變為雙側對稱性瀰漫性。LCD表現為不對稱的密集病變,通常不伴有眼痛,可據此鑑別1,2)。Lisch等人(2000年)通過連鎖分析確定Meesmann(17q12和12q13上的KRT12/KRT3)與LCD(Xp22.3)在遺傳學上是不同的疾病2)

Q 與Meesmann角膜失養症的區別是什麼?
A

Meesmann角膜失養症體染色體顯性遺傳(KRT3/KRT12基因突變),而LCD是X連鎖顯性遺傳(Xp22.3)。Meesmann的病變為雙眼性、左右對稱且瀰漫性,而LCD表現為不對稱的密集聚集。此外,Meesmann常因角膜上皮糜爛而出現眼痛,而LCD通常不伴有眼痛

LCD極為罕見,所有治療方法均基於病例報告。

保守治療

隱形眼鏡:使用硬式和軟式隱形眼鏡已被報告可減少病變並改善視力1)。但停用後病變可能惡化。

觀察:如果病變未涉及視軸或視力障礙輕微,則進行觀察。

手術治療

上皮清創術:微創的一線選擇。至少6個月內病變可消退,但復發率高。

上皮切除術+角膜緣燒灼:Tuteja & Lockington(2025年)報告了一種確定性治療,即分步角膜上皮切除聯合標靶角膜緣小範圍切除和燒灼7)

PRK+絲裂黴素C:Wessel等人(2011年)報告了PRK聯合0.02%絲裂黴素C的良好結果。適用於同時希望進行屈光矯正的患者6)

局部5-氟尿嘧啶(5-FU):Amer等人(2023年)報告了復發患者使用5-FU眼藥水後病變消退8)

自體角膜緣移植:適用於對其他治療抵抗的病例。已有成功預防復發的報告5)

治療選擇的逐步方法

  1. 首先嘗試佩戴隱形眼鏡。
  2. 效果不佳時考慮上皮清創術。
  3. 反覆復發時考慮上皮切除術+角膜緣燒灼。
  4. 難治性病例考慮自體角膜緣移植(因侵襲性高,作為最後手段)。
Q 使用隱形眼鏡可以改善嗎?
A

多個病例報告顯示,使用硬式和軟式隱形眼鏡可減少病變並改善視力。然而,停止使用隱形眼鏡後病變會再次惡化,因此並非根本性治療。也有日常使用隱形眼鏡的患者發生LCD的報告,保護效果並不完整。

Q 手術後還會復發嗎?
A

上皮清創術的復發率相對較高。上皮切除合併角膜緣燒灼術有兩年無復發的報告,自體角膜緣移植也有成功預防復發的報告,但均基於少數病例。關於長期預防復發的效果尚無足夠數據,定期追蹤很重要。

LCD病理的本質是角膜上皮細胞的廣泛胞質空泡化。

組織病理學表現

  • 光學顯微鏡下,翼狀細胞層可見最顯著的胞質空泡化 1)
  • 空泡化見於整個角膜上皮層的細胞,受累區域與未受累區域界限清晰
  • PAS染色結果報告不一致(有陽性和陰性兩種報告)
  • 可被澱粉酶消化,Luxol固藍染色和蘇丹黑染色均為陰性 1)

電鏡表現

  • 胞質內空泡呈空泡狀
  • 空泡傾向於相互融合,使胞質呈現透明、無結構的外觀

角膜緣的關係

  • 有證據顯示,導致上皮缺損的異常細胞源自輪部。
  • 共軛焦顯微鏡已確認輪部區域的參與 9)
  • 輪部燒灼和自體輪部移植治療有效,也支持了輪部起源的病理機轉 5,7)

MCOLN1 單套不足與空泡形成:MCOLN1 編碼的 mucolipin-1 是一種溶酶體膜陽離子通道(TRPML1),參與溶酶體功能、自噬和內體運輸。在 LECD 中,雜合功能喪失導致的單套不足被認為會引起角膜上皮細胞的部分溶酶體功能障礙和空泡化 3)。另一方面,雙等位基因突變會導致更嚴重的全身表型 MLIV,提示存在劑量依賴性分子病理機轉 3)

自1992年首次描述以來,由於病例數量少,LCD/LECD 的研究一直有限,但在2020年代取得了重要進展。

致病基因的鑑定(2024年):Patterson 等人透過多中心、多國隊列(27例/17個家系)進行全外顯子組和全基因組分析,將 MCOLN1 雜合功能喪失突變 確定為 LECD 的主要原因 3)。因此,在 IC3D 第3版(2024年)中,該病被重新歸類為第1類(已知基因/蛋白)4)

治療進展

  • Wessel 等人(2011年)報導了 PRK 合併絲裂黴素 C 0.02% 6)
  • Amer 等人(2023年)嘗試對復發病例使用 5-FU 眼藥水,觀察到病變消退 8)
  • Tuteja 和 Lockington(2025年)提出了分期上皮切除加標靶輪部燒灼的根治性治療 7)
  • 所有這些均基於少數病例報告,因此長期有效性和安全性仍有待驗證。

未來挑戰

  • 闡明 MCOLN1 單套不足如何產生角膜上皮特異性表型的分子機制
  • 量化雜合攜帶者的臨床外顯率和表達模式
  • 透過更大規模的病例累積評估治療成效
  • 累積關於預防復發的長期追蹤數據
  1. Lisch W, Steuhl KP, Lisch C, Weidle EG, Emmig CT, Cohen KL, Perry HD. A new, band-shaped and whorled microcystic dystrophy of the corneal epithelium. Am J Ophthalmol. 1992;114(1):35-44. PMID: 1621784.

  2. Lisch W, Büttner A, Oeffner F, Böddeker I, Engel H, Lisch C, Ziegler A, Grzeschik KH. Lisch corneal dystrophy is genetically distinct from Meesmann corneal dystrophy and maps to xp22.3. Am J Ophthalmol. 2000;130(4):461-468. PMID: 11024418.

  3. Patterson K, Chong JX, Chung DD, Lisch W, Karp CL, Dreisler E, Lockington D, Rohrbach JM, Garczarczyk-Asim D, Müller T, Tuft SJ, Skalicka P, Wilnai Y, Samra NN, Ibrahim A, Mandel H, Davidson AE, Liskova P, Aldave AJ, Bamshad MJ, Janecke AR. Lisch Epithelial Corneal Dystrophy Is Caused by Heterozygous Loss-of-Function Variants in MCOLN1. Am J Ophthalmol. 2024;258:183-195. PMID: 37972748.

  4. Weiss JS, Rapuano CJ, Seitz B, Busin M, Kivelä TT, et al. IC3D Classification of Corneal Dystrophies—Edition 3. Cornea. 2024;43(4):466-527. PMID: 38359414.

  5. Alvarez-Fischer M, Alvarez de Toledo J, Barraquer RI. Lisch corneal dystrophy. Cornea. 2005;24(4):494-495. PMID: 15829814.

  6. Wessel MM, Sarkar JS, Jakobiec FA, Dang N, Bhat P, Michaud N, Starr CE. Treatment of Lisch corneal dystrophy with photorefractive keratectomy and mitomycin C. Cornea. 2011;30(4):481-485. PMID: 21045666.

  7. Tuteja SY, Lockington D. Definitive Treatment of Lisch Epithelial Corneal Dystrophy via Staged Keratectomy and Targeted Minor Limbal Excision With Cautery. Cornea. 2025;44(3):383-386. PMID: 39774538.

  8. Amer MM, Arze K, Galor A, Sayegh Y, Dubovy SS, Karp CL. Recurrent Lisch Epithelial Corneal Dystrophy Treated With 5-Fluorouracil: A Case Report and Review of the Literature. Cornea. 2023;42(5):645-647. PMID: 36533990.

  9. Kurbanyan K, Sejpal KD, Aldave AJ, Deng SX. In vivo confocal microscopic findings in Lisch corneal dystrophy. Cornea. 2012;31(4):437-441. PMID: 22222997.

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