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角膜与外眼

Lisch角膜营养不良

1. 什么是Lisch角膜营养不良(LCD)?

Section titled “1. 什么是Lisch角膜营养不良(LCD)?”

Lisch角膜营养不良(LCD,近年也称为Lisch上皮性角膜营养不良:LECD)是一种罕见的浅层角膜营养不良,表现为角膜上皮出现灰色、漩涡状或羽毛状的微囊肿。1992年Lisch等人在《美国眼科学杂志》上首次报道,描述了一个德国家系中5名成员的新发角膜上皮营养不良1)

IC3D分类中的定位变迁:

  • 在国际角膜营养不良分类委员会(IC3D)第2版(2015年)之前,本病被归类为第2类(已定位到染色体位点但致病基因未鉴定)。
  • 在2024年第3版中,因MCOLN1的鉴定而升级为第1类(致病基因和蛋白质均已鉴定的明确角膜营养不良4)

遗传方式:传统上被认为是X连锁显性遗传,2000年Lisch等人的家系研究通过LOD评分4.59(θ=0)证明了与Xp22.3的连锁2)。男性间无传递也支持X连锁遗传。2024年Patterson等人的大规模研究揭示,致病基因为MCOLN1(编码mucolipin-1),杂合性功能丧失突变导致发病3)。MCOLN1通常位于19p13.2,但可能通过连锁区域(Xp22.3)的假基因、假常染色体区域或其他调控机制发挥作用,目前仍有争议。此外,MCOLN1的双等位基因(纯合或复合杂合)突变会导致另一种疾病——黏脂贮积症IV型(MLIV)3)

LCD的发病被认为始于儿童期,但大多数报告病例为成人。病变进展缓慢,许多患者直到成年才出现临床表现。就诊年龄从20多岁到70多岁不等。Patterson等人的报告中,27例LECD患者中有23例(约85%)检测到MCOLN1的杂合性罕见变异3)

主诉为眼镜无法矫正的无痛性进行性视物模糊1)。偶有单眼复视的报告。若病变未累及视轴,可无症状,偶然发现。通常无角膜上皮糜烂,不伴眼痛,这是与Meesmann角膜营养不良的临床鉴别要点1,2)

裂隙灯显微镜所见

灰色微囊:可见带状或棍棒状角膜上皮内病变。

漩涡状图案:病变可呈漩涡状排列。

羽毛状图案:可呈蓬松的羽毛状外观。

染色所见荧光素和玫瑰红染色阴性。

特殊检查所见

彻照法:可清晰观察到透明上皮内微囊的密集聚集。

眼前节光学相干断层扫描OCT角膜厚度正常,无基质受累,可见上皮高反射灶。

共聚焦显微镜:根据Kurbanyan等人的报告,受累上皮细胞核周细胞质呈高反射,细胞核呈低反射,并确认了角膜缘区域的受累9)

角膜地形图:可能显示正常表现

据报道单眼发病更为常见,但双眼受累也可能发生。即使双眼都有病变,如果仅单眼的视轴受累,则可能仅表现为单眼视力障碍。

致病基因(2024年鉴定)

  • 2024年,Patterson等人对27例LECD患者(17个家系)进行了大规模分析,确定MCOLN1的杂合功能丧失突变是病因3)
  • 27例中有23例(约85%,13个家系)检测到9种罕见的杂合变异,其中7种为截断突变3)
  • MCOLN1编码溶酶体膜阳离子通道mucolipin-1。单倍体不足被认为是病理本质3)
  • 同一基因的双等位基因突变(纯合或复合杂合)会导致严重的全身性溶酶体贮积症——粘脂贮积症IV型(MLIV)3)

遗传方式

  • 家系研究显示X连锁显性遗传模式,已证明与Xp22.3连锁2)
  • 无男性传男性现象支持X连锁遗传2)
  • 然而,MCOLN1原本位于19p13.2,家系内表达模式与分子遗传学发现之间的关系有待进一步研究3,4)
  • 单纯散发病例也很多;Patterson等人的报告中14例为散发病例3)

风险因素

  • 家族史(阳性时风险增加)

未观察到一致的全身并发症,也未发现提示机械机制的身体因素。有证据表明导致上皮缺损的异常细胞来源于角膜缘9)

LCD的诊断基于特征性裂隙灯显微镜表现和组织病理学表现的结合。

诊断要点:

  • 裂隙灯显微镜下可见羽毛状角膜微囊
  • 后照法确认透明上皮内囊肿的密集聚集
  • 组织病理学上可见广泛的细胞质空泡化

辅助检查:

  • 共聚焦显微镜检查9)
  • 高分辨率眼前节OCT
  • MCOLN1基因分析:自2024年起,被视为确诊手段3)。在临床诊断不明确或出于家族咨询目的时考虑。
  • 代谢检查(用于排除法布里病等)

鉴别诊断

鉴别疾病鉴别要点
Meesmann角膜营养不良常染色体显性遗传,对称性弥漫性,伴有眼痛
法布里病始终双侧对称,漩涡状角膜
隐形眼镜诱发的上皮缺损停戴隐形眼镜后改善

Meesmann角膜营养不良的鉴别最为重要。Meesmann是由KRT3/KRT12基因突变引起的常染色体显性遗传病,病变为双侧对称性弥漫性。LCD表现为不对称的密集病变,通常不伴有眼痛,可据此鉴别1,2)。Lisch等人(2000年)通过连锁分析确定Meesmann(17q12和12q13上的KRT12/KRT3)与LCD(Xp22.3)在遗传学上是不同的疾病2)

Q 与Meesmann角膜营养不良的区别是什么?
A

Meesmann角膜营养不良常染色体显性遗传(KRT3/KRT12基因突变),而LCD是X连锁显性遗传(Xp22.3)。Meesmann的病变为双眼性、左右对称且弥漫性,而LCD表现为不对称的密集聚集。此外,Meesmann常因角膜上皮糜烂而出现眼痛,而LCD通常不伴有眼痛

LCD极为罕见,所有治疗方法均基于病例报告。

保守治疗

隐形眼镜:使用硬性和软性隐形眼镜已被报道可减少病变并改善视力1)。但停用后病变可能恶化。

观察:如果病变未累及视轴或视力障碍轻微,则进行观察。

手术治疗

上皮清创术:微创的一线选择。至少6个月内病变可消退,但复发率高。

上皮切除术+角膜缘烧灼:Tuteja & Lockington(2025年)报道了一种确定性治疗,即分步角膜上皮切除联合靶向角膜缘小范围切除和烧灼7)

PRK+丝裂霉素C:Wessel等人(2011年)报道了PRK联合0.02%丝裂霉素C的良好结果。适用于同时希望进行屈光矫正的患者6)

局部5-氟尿嘧啶(5-FU):Amer等人(2023年)报道了复发患者使用5-FU滴眼液后病变消退8)

自体角膜缘移植:适用于对其他治疗抵抗的病例。已有成功预防复发的报道5)

治疗选择的逐步方法

  1. 首先尝试佩戴隐形眼镜。
  2. 效果不佳时考虑上皮清创术。
  3. 反复复发时考虑上皮切除术+角膜缘烧灼。
  4. 难治性病例考虑自体角膜缘移植(因侵袭性高,作为最后手段)。
Q 使用隐形眼镜能改善吗?
A

多个病例报告显示,使用硬性和软性隐形眼镜可减少病变并改善视力。然而,停止使用隐形眼镜后病变会再次恶化,因此并非根本性治疗。也有日常使用隐形眼镜的患者发生LCD的报道,保护效果并不完全。

Q 手术后还会复发吗?
A

上皮清创术的复发率相对较高。上皮切除联合角膜缘烧灼术有两年无复发的报道,自体角膜缘移植也有成功预防复发的报道,但均基于少数病例。关于长期预防复发的效果尚无足够数据,定期随访很重要。

LCD病理的本质是角膜上皮细胞的广泛胞质空泡化。

组织病理学表现

  • 光学显微镜下,翼状细胞层可见最显著的胞质空泡化 1)
  • 空泡化见于整个角膜上皮层的细胞,受累区域与未受累区域界限清晰
  • PAS染色结果报告不一致(有阳性和阴性两种报告)
  • 可被淀粉酶消化,Luxol固蓝染色和苏丹黑染色均为阴性 1)

电镜表现

  • 胞质内空泡呈空泡状
  • 空泡倾向于相互融合,使胞质呈现透明、无结构的外观

角膜缘的关系

  • 有证据表明,导致上皮缺损的异常细胞来源于角膜缘
  • 共聚焦显微镜已证实角膜缘区域受累 9)
  • 角膜缘烧灼和自体角膜缘移植治疗有效,也支持了角膜缘起源的病理机制 5,7)

MCOLN1 单倍体不足与空泡形成:MCOLN1 编码的 mucolipin-1 是一种溶酶体膜阳离子通道(TRPML1),参与溶酶体功能、自噬和内体运输。在 LECD 中,杂合功能丧失导致的单倍体不足被认为会引起角膜上皮细胞的部分溶酶体功能障碍和空泡化 3)。另一方面,双等位基因突变会导致更严重的全身表型 MLIV,提示存在剂量依赖性分子病理机制 3)

自1992年首次描述以来,由于病例数量少,LCD/LECD 的研究一直有限,但在2020年代取得了重要进展。

致病基因的鉴定(2024年):Patterson 等人通过对多中心、多国队列(27例/17个家系)进行全外显子组和全基因组分析,将 MCOLN1 杂合功能丧失突变 确定为 LECD 的主要原因 3)。因此,在 IC3D 第3版(2024年)中,该病被重新归类为第1类(已知基因/蛋白)4)

治疗进展

  • Wessel 等人(2011年)报道了 PRK 联合丝裂霉素 C 0.02% 6)
  • Amer 等人(2023年)尝试对复发病例使用 5-FU 滴眼液,观察到病变消退 8)
  • Tuteja 和 Lockington(2025年)提出了分期上皮切除加靶向角膜缘烧灼的根治性治疗 7)
  • 所有这些均基于少数病例报告,因此长期有效性和安全性仍有待验证。

未来挑战

  • 阐明 MCOLN1 单倍体不足如何产生角膜上皮特异性表型的分子机制
  • 量化杂合携带者的临床外显率和表达模式
  • 通过更大规模的病例积累评估治疗效果
  • 积累关于预防复发的长期随访数据
  1. Lisch W, Steuhl KP, Lisch C, Weidle EG, Emmig CT, Cohen KL, Perry HD. A new, band-shaped and whorled microcystic dystrophy of the corneal epithelium. Am J Ophthalmol. 1992;114(1):35-44. PMID: 1621784.

  2. Lisch W, Büttner A, Oeffner F, Böddeker I, Engel H, Lisch C, Ziegler A, Grzeschik KH. Lisch corneal dystrophy is genetically distinct from Meesmann corneal dystrophy and maps to xp22.3. Am J Ophthalmol. 2000;130(4):461-468. PMID: 11024418.

  3. Patterson K, Chong JX, Chung DD, Lisch W, Karp CL, Dreisler E, Lockington D, Rohrbach JM, Garczarczyk-Asim D, Müller T, Tuft SJ, Skalicka P, Wilnai Y, Samra NN, Ibrahim A, Mandel H, Davidson AE, Liskova P, Aldave AJ, Bamshad MJ, Janecke AR. Lisch Epithelial Corneal Dystrophy Is Caused by Heterozygous Loss-of-Function Variants in MCOLN1. Am J Ophthalmol. 2024;258:183-195. PMID: 37972748.

  4. Weiss JS, Rapuano CJ, Seitz B, Busin M, Kivelä TT, et al. IC3D Classification of Corneal Dystrophies—Edition 3. Cornea. 2024;43(4):466-527. PMID: 38359414.

  5. Alvarez-Fischer M, Alvarez de Toledo J, Barraquer RI. Lisch corneal dystrophy. Cornea. 2005;24(4):494-495. PMID: 15829814.

  6. Wessel MM, Sarkar JS, Jakobiec FA, Dang N, Bhat P, Michaud N, Starr CE. Treatment of Lisch corneal dystrophy with photorefractive keratectomy and mitomycin C. Cornea. 2011;30(4):481-485. PMID: 21045666.

  7. Tuteja SY, Lockington D. Definitive Treatment of Lisch Epithelial Corneal Dystrophy via Staged Keratectomy and Targeted Minor Limbal Excision With Cautery. Cornea. 2025;44(3):383-386. PMID: 39774538.

  8. Amer MM, Arze K, Galor A, Sayegh Y, Dubovy SS, Karp CL. Recurrent Lisch Epithelial Corneal Dystrophy Treated With 5-Fluorouracil: A Case Report and Review of the Literature. Cornea. 2023;42(5):645-647. PMID: 36533990.

  9. Kurbanyan K, Sejpal KD, Aldave AJ, Deng SX. In vivo confocal microscopic findings in Lisch corneal dystrophy. Cornea. 2012;31(4):437-441. PMID: 22222997.

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